Manejo de Cama en Pollos de Engorde: Humedad y Amoníaco

El manejo de cama en pollos de engorde comprende mantener un sustrato higroscópico de 12 a 15 cm a 32 °C durante la recepción. Su control sanitario exige aplicar bisulfato de sodio a 250 g/m² para reducir el amoníaco o sanitizar mediante apilamiento profundo a más de 55 °C durante 72 horas. [2][1][20][43][15][34][45][44]

Preparación del Galpón, Encasetamiento de Aves y Selección del Sustrato

La preparación del galpón y el encasetamiento de aves requieren acondicionar una cama avícola higroscópica de 12 a 15 cm a una temperatura mínima de 32°C, garantizando confort térmico y suministro temprano de alimento. [1][2]

Comparativa de materiales de sustrato y criterios de manejo inicial en cama avícola

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Selección del Sustrato para la Cama Avícola

El material seleccionado para la cama avícola debe cumplir funciones biológicas y zootécnicas insustituibles, actuando como un sustrato higroscópico, libre de hongos, de fácil manejo y con baja conductividad térmica, lo cual resulta indispensable para absorber la humedad, aislar a los animales del frío del piso y retener adecuadamente las excretas. Entre las alternativas empleadas en las granjas, la viruta de madera se distingue por brindar un entorno notablemente más seco y estable en comparación con la cascarilla de arroz; esta última, aunque proporciona una superficie suave y cómoda para las aves, exhibe una marcada tendencia a retener mayor humedad y a formar costras rápidamente. Asimismo, la viruta de madera seca aísla eficientemente y absorbe la humedad con gran eficacia, no obstante, debe cuidarse rigurosamente su sanidad, ya que si se introduce húmeda o contaminada puede actuar como fuente de brotes de aspergilosis. [2][4]

Al momento de seleccionar los materiales de cobertura, es indispensable considerar la etapa productiva del lote: en los pollitos durante sus primeras tres semanas de vida, el aserrín debe evitarse taxativamente debido a que su polvillo fino resulta sumamente perjudicial para la salud respiratoria. A la par del sustrato, el acondicionamiento ambiental del galpón previene el deterioro temprano del lecho por condensaciones térmicas. En este aspecto, en ensayos desarrollados en galpones avícolas en Argentina, se demostró que la instalación de un aislamiento térmico a base de membrana de polietileno con doble cara de aluminio de 10 mm redujo la temperatura radiante de la chapa hasta en 24°C, lo que a su vez permitió disminuir el uso de ventilación forzada en un 35% y facilitó la conservación adecuada del ambiente. [5][8]

Manejo del Encasetamiento de Aves y Confort

Los protocolos aplicados durante la recepción del lote deben mitigar las limitaciones fisiológicas iniciales de los animales para asegurar su bienestar. Durante el pre-alojamiento de los pollitos, resulta obligatorio garantizar una cama con un espesor estricto de 12 a 15 cm y asegurar una temperatura uniforme de 32°C al ingreso, ya que las aves jóvenes son poiquilotermas y dependen de esta condición térmica para mantener su homeostasis. Para facilitar un arranque vigoroso en esta etapa crítica, se sugiere recibir a los pollitos sobre papel extendido en el suelo con el propósito de estimular un consumo rápido, suministrando alimento fresco entre 6 y 8 veces al día, complementado con platos suplementarios y un nivel de iluminación no inferior a 20 lux. [1]

La verificación del comportamiento y la ingesta tras el ingreso de las aves permite validar la eficacia del ambiente ofrecido. Para evaluar objetivamente el confort zootécnico luego del encasetamiento, el operario debe comprobar que al menos el 95% de los buches se encuentren llenos, inspeccionando múltiples sectores dentro de la nave y registrando las observaciones en planillas de control continuo. Asimismo, el uso de papel en el área de cría debe ser gestionado con precisión, ya que un manejo inadecuado o prolongado de este insumo favorece la aparición de vicios como el picaje y el escarbado excesivo de la cama, situaciones que incrementan significativamente el desperdicio de alimento y elevan los índices de mortalidad. [1][9]

El dimensionamiento del espacio asignado en los primeros días ejerce una influencia determinante sobre la evolución física del sustrato. Cuando no se realiza una apertura y expansión progresiva del área destinada a los pollitos a medida que ganan peso, la excesiva concentración de animales genera una cama húmeda de origen en al menos un tercio de la nave. Esta falla de manejo compacta irreversiblemente el lecho inicial y compromete la calidad sanitaria del sustrato, impidiendo que mantenga sus propiedades absorbentes durante las fases subsiguientes del engorde. [10]

• Parámetros de pre-alojamiento: Garantizar cama de 12 a 15 cm de altura, temperatura de cama de 32°C, 20 lux de iluminación mínima y reposición de alimento en papel de 6 a 8 veces diarias. [1]
• Verificación del buche: Revisar la homogeneidad en varios sectores del galpón constatando que el 95% de los pollitos presenten buches llenos post-alojamiento. [1]
• Expansión del espacio: Abrir de manera gradual el área inicial de los pollitos para evitar camas húmedas de origen en al menos un tercio del galpón. [10]
• Prevención en pollitos jóvenes: Evitar el aserrín durante las primeras 3 semanas por riesgos derivados del polvillo, y regular el uso de papel para que no fomente escarbado o picaje de la cama. [5][9]

"La cama tiene como objetivo evitar el contacto directo de los animales con el piso, absorber humedad, almacenar excretas, aislar térmicamente y proporcionar una superficie suave para las aves." — Juliana Calvera Durán [2]

Control de Humedad en la Cama y Factores Nutricionales

El control de humedad en la cama de aves exige diferenciar causas digestivas de renales y regular la nutrición, así como la temperatura y la calidad del agua de bebida. [11][10][2]

Factores nutricionales y de manejo asociados al desarrollo de cama húmeda en aves

Impacto de la Dieta y Electrolitos en la Cama de Aves

El Prof. Gonzalo González Mateos destaca la necesidad de diferenciar con precisión si el origen del problema es renal o digestivo, dado que las medidas correctivas resultan totalmente distintas según el caso. Cuando el cuadro es renal, suele obedecer a un exceso de electrolitos como el sodio o el potasio, mientras que un origen digestivo se asocia frecuentemente a deficiencias en el procesamiento del alimento, como ocurre con la soja mal desactivada. Asimismo, al evaluar el balance iónico de la ración, el Prof. Gonzalo González Mateos señala que los sulfatos y el magnesio representan los electrolitos que más contribuyen a la generación de humedad en la cama de aves, rebatiendo el concepto tradicional al demostrarse que el sodio es en realidad el elemento menos perjudicial de este grupo. [11]

En cuanto a la proteína bruta del alimento, un suministro excesivo eleva drásticamente la humedad del galpón, debido a que el organismo de las aves se ve obligado a excretar todo el nitrógeno sobrante por vía urinaria, lo cual arrastra consigo un alto volumen de agua. Para mitigar esta pérdida hídrica, se recomienda balancear minuciosamente la fórmula controlando el perfil de aminoácidos digestibles como la isoleucina. Esta formulación orientada a reducir el nivel de proteína total permite disminuir la presencia de nitrógeno ureico y potasio, reduciendo notablemente la retención de agua en los tejidos y promoviendo heces más consistentes que conservan la cama seca. Paralelamente, una relación calcio-fósforo excesivamente amplia propicia alteraciones en las eyecciones; por ello, reducir el tenor de calcio en la dieta mejora el sustrato y optimiza la eficacia catalítica de las enzimas fitasas para asegurar la digestibilidad y absorción del fósforo. [11][10]

Efecto del Formato del Pienso y la Fibra Insoluble

La presentación física del alimento balanceado influye de forma directa en el consumo de líquidos y la posterior consistencia fecal. El pienso peleteado genera camas más húmedas en comparación con la ración suministrada en harina, un fenómeno que se explica porque los animales llegan a beber el doble de agua en relación con la masa de alimento que ingieren. Para contrarrestar esta acumulación de humedad fecal, la adición de concentrados de fibra cruda insoluble, tales como Arbocel al 0.8% en programas basados en maíz y soya, resulta altamente beneficiosa. Este ingrediente acelera la velocidad del tránsito intestinal, mejora la retención de agua dentro del tracto digestivo y, a nivel físico dentro del galpón, la fibra dietética contribuye activamente a absorber líquidos excedentes y reforzar la estructura general de la cama. [12][13]

La naturaleza de los lípidos añadidos a la ración constituye otro punto crítico de control. El empleo de materias grasas de baja calidad, entre las cuales destacan las oleínas y los subproductos tipo soapstocks, genera la formación de una película cerosa y brillante sobre la superficie del sustrato que impide por completo la evaporación normal del agua acumulada. En las rutinas de monitoreo, si el análisis de laboratorio revela que la grasa contenida en la cama excede el 8%, es un indicativo mandatorio de que debe revisarse de inmediato la calidad de las grasas empleadas en la formulación del pienso. A este factor lipídico se suma el impacto térmico de la bebida: durante épocas cálidas, un suministro de agua caliente que alcance entre 34 °C y 35 °C incita a los pollos a beber en cantidades desmedidas sin capacidad de asimilarla eficientemente, expulsando el líquido casi de inmediato y deteriorando velozmente la cama. [10][12]

Control Ambiental y Monitoreo en Cama de Pollos de Engorde

El manejo incorrecto de la altura y presión de los bebederos en sistemas abiertos o cerrados genera desperdicio y desuniformidad de agua, agravando directamente los problemas de humedad en la cama de las aves. Para evitar camas húmedas y la formación de amoníaco en pollos de engorde en climas cálidos y húmedos, se recomienda manejar densidades de 10 a 12 aves/m² o rangos controlados de 34 a 38 kg/m² siempre que se controle la ventilación y la actividad de agua (Aw inferior a 0.86-0.9). [10][14][15][2]

Para evaluar con rigor el impacto de estas pautas operativas y nutricionales, la determinación de la humedad en la cama de las aves debe ejecutarse mediante protocolos normalizados y confiables. La metodología técnica estandarizada exige la recolección sistemática de 21 submuestras distribuidas en un esquema en zig-zag a lo largo de toda la superficie del galpón, evitando sesgos de muestreo en puntos aislados. Posteriormente, en el laboratorio, se pesan fracciones de 30 gramos de material y se someten a desecación térmica en estufa calibrada a una temperatura de 105 °C (con un margen de tolerancia de ±1 °C) durante un lapso ininterrumpido de 16 horas, lo cual permite calcular de forma exacta el porcentaje final de materia seca y tomar decisiones oportunas en el manejo de la granja. [16]

• Temperatura del agua de bebida: Evitar temperaturas de 34 a 35 °C en el agua de bebida durante épocas cálidas para impedir el consumo excesivo y la subsecuente excreción líquida directa a la cama. [10]
• Ajuste de altura de bebederos: Calibrar periódicamente la línea de bebederos según edad, sexo y peso del lote; si quedan muy altos o muy bajos, se incrementa el desperdicio y goteo de agua sobre la cama. [10]
• Monitoreo de grasa en cama: Analizar periódicamente la grasa en la cama avícola: un tenor superior al 8% señala inclusión de grasas de mala calidad (como oleínas) que sellan la superficie e impiden la evaporación del agua. [12]
• Protocolo de muestreo de humedad: Recolectar 21 submuestras distribuidas en zig-zag a lo largo del galpón y secar porciones de 30 g a 105 °C durante 16 horas para cuantificar con precisión la materia seca y humedad del sustrato. [16]

"Un animal que tiene agua caliente toma más agua y hasta agua no entra para el animal como entra, sale. Entonces yo estoy en una granja argentina enero o aquí en Brasil. Enero. Un calor bárbaro a algunos lugares húmedos. Y tu lo mia, la temperatura de agua, 35 o 34 grados. Cómo nos vamos a querer cámaras o metas? No, no, no es posible." — Antônio Mário Penz Junior [10]

Amoníaco en Pollos de Engorde: Neutralización Química y Acidificación

El control del amoníaco en pollos de engorde exige modular el pH de la cama mediante acidificantes inorgánicos o buffers y reducir las emisiones para prevenir daños corrosivos en el epitelio respiratorio de las aves. [17][18][19]

Tratamientos químicos, adsorbentes y aditivos para la mitigación del amoníaco en cama avícola

Impacto Patológico del Amoníaco en Pollos de Engorde

La acumulación de este gas ejerce una severa acción corrosiva sobre las superficies mucosas y los epitelios del árbol respiratorio de las aves, lo que termina por destruir la barrera natural antimicrobiana del hospedador y facilitar el libre ingreso de agentes patógenos víricos y bacterianos. Cuando las concentraciones ambientales de amoníaco sobrepasan las 50 ppm en las camas avícolas —situación fuertemente favorecida por la combinación de altas temperaturas, humedad excesiva y un pH alcalino—, los animales experimentan graves dificultades respiratorias, queratoconjuntivitis que desemboca en ceguera y quemaduras directas sobre los tarsos, patas o garras. [17][21]

Frente a este riesgo, el empleo de bisulfato de sodio actúa eficazmente como un acidificante inorgánico caracterizado por un pKa bajo, el cual reduce rápidamente el pH del sustrato hacia condiciones ácidas que inhiben a las bacterias degradadoras del nitrógeno y frenan su volatilización a la atmósfera. En ensayos de campo, la aplicación de bisulfato de sodio al 1% disuelto en agua mediante aspersión sobre gallinaza con 70 a 80 ppm de amoníaco logró una reducción eficiente e inmediata de las emisiones, manteniendo niveles reducidos por 30 días y logrando los recuentos más bajos de bacterias mesófilas aerobias. En galpones comerciales, el acidificante PLT (bisulfato de sodio) se dosifica a razón de 250 g/m² en el área de recepción o zona de la madre y 125 g/m² cada vez que se amplía el espacio de las aves, transformando químicamente el gas volatilizado en sulfato de amonio estable. [18][20]

Aditivos Químicos y Fitogénicos para Cama Avícola

Otra alternativa química validada comprende los buffers ácidos de lenta liberación asociados con aluminosilicatos amorfos, presentes en formulaciones como Control Doble A, los cuales se distribuyen manualmente sobre el piso a dosis de 30 a 50 g/m². Esta combinación regula el pH de la cama y fija el amonio en formas moleculares de menor volatilidad, garantizando una persistencia de acción cercana a las dos semanas bajo escenarios continuos de alta carga de excretas. De manera paralela, la intervención metabólica mediante la adición de extracto de Yucca schidigera, formulado en la ración alimenticia o dosificado directamente en el agua de bebida del lote, consigue abatir las concentraciones de amoníaco ambiental dentro de las naves entre un 40% y un 50%. [22][19][23][24]

El uso estratégico de arcillas minerales constituye un soporte físico indispensable para optimizar las enmiendas químicas del galpón. La adición de bentonita sódica o cálcica eleva notablemente la tasa de absorción de agua del material, atenúa la emanación de gases nitrogenados y neutraliza micotoxinas presentes en la superficie del encamado. Asimismo, la incorporación de zeolita complementada con labores regulares de volteo mejora sustancialmente el control de la humedad en el suelo, propiciando un entorno zootécnico más seco y confortable que redunda en mayores ganancias diarias de peso vivo en las parvadas de engorde. [25][26]

Métodos de Medición del PH en Cama Avícola

El monitoreo exacto de la acidez del sustrato resulta crítico para definir la oportunidad de estas intervenciones. El protocolo normalizado TMECC 04.11-A dictamina secar la muestra a 70 °C durante 48 horas para aislar 20 g de materia seca, procesándola en una suspensión 1:5 con agua destilada bajo agitación mecánica horizontal a 180 golpes/min por 20 minutos antes de medir el electrodo. No obstante, las evaluaciones analíticas confirman que un método alternativo directo en dilución 1:5 sin desecado previo de materia seca arroja una correlación de 0.92 y una diferencia promedio de apenas 0.04 unidades de pH frente al estándar, facilitando diagnósticos rápidos y fiables a nivel de granja. [27]

• Bisulfato de sodio en aspersión: Una dilución al 1% disuelta en agua y aplicada por aspersión reduce eficazmente cargas iniciales de 70-80 ppm de amoníaco y minimiza recuentos de bacterias mesófilas aerobias. [18]
• Aplicación de PLT granulado: Se retiran champas húmedas, se calienta el galpón 24 h previas y se esparcen 250 g/m² en la zona de la madre y 125 g/m² en cada ampliación de espacio, neutralizando amoníaco a sulfato de amonio. [20]
• Buffer ácido y aluminosilicatos: Dosis de 30 a 50 g/m² aplicadas manualmente antes o durante la crianza regulan el pH de la cama, fijando amonio por reacción estequiométrica por un estimado de 15 días. [22][19][23]
• Extracto de Yucca schidigera: Administrado en el alimento o el agua de beber disminuye la excreción nitrogenada, mitigando del 40% al 50% de las concentraciones de amoníaco ambiental. [24]

"el amoníaco abre la puerta a la entrada libre de estos microorganismos al romper, por su acción corrosiva, la barrera natural antimicrobiana que son los epitelios del árbol respiratorio." — Luis Abel Buitrago Manjarrés [17]

Prevención de Pododermatitis, Lesiones y Manejo Sanitario en Cama Húmeda

El control estricto de la humedad, la evacuación inmediata de zonas apelmazadas o húmedas, la prohibición de cal cáustica y el manejo adecuado del agua previenen la pododermatitis en aves y reducen las quemaduras de pechuga y tarsos. [2][28][20]

Impacto de la Calidad del Sustrato y Pododermatitis en Aves

La mala calidad de la cama avícola constituye la causa primaria de pododermatitis y callosidades plantares en las parvadas comerciales. Cuando el lecho pierde sus propiedades de amortiguación y soporte seco, las molestias en las extremidades obligan a los animales a permanecer sentados o echados de forma prolongada, lo que desencadena quemaduras directas y lesiones severas en la pechuga por contacto continuo con el material deteriorado. [10][2]

Paralelamente, un mal manejo integral del sustrato conlleva la constante emisión de amoníaco hacia el ambiente del galpón, lo cual propicia el desarrollo de patologías respiratorias, ceguera y pododermatitis. Este ambiente adverso repercute en una menor conversión alimenticia y un evidente retraso en el crecimiento de las aves, culminando finalmente en severos decomisos de carcasas en la planta de faena que merman la rentabilidad del lote. [2]

Prácticas de Manejo Sanitario y Evacuación de Zonas Húmedas

Durante la etapa de crianza activa, está completamente contraindicado incorporar agua o aplicar cal apagada directamente sobre la cama. La cal apagada se caracteriza por un pH de 13 y posee un elevado poder corrosivo que agrava drásticamente las erosiones en la almohadilla plantar de los pollos, abriendo una vía directa para la entrada de infecciones tisulares profundas. [28]

Ante desperfectos de bebederos o cuadros entéricos, es imperativo evacuar los sectores húmedos de la cama debido a que en ellos proliferan coccidias como Eimeria acervulina, Eimeria maxima y Eimeria tenella. Lavar periódicamente el galpón con las aves adentro y moverlas constantemente es una práctica errónea que induce severo estrés y maltrato; la gestión sanitaria debe focalizarse en el volteo de cama, ventilación y control de humedad. [28][29]

Calidad del Agua y Factores Nutricionales Asociados al Picaje

Para sostener el confort digestivo e hídrico, el agua de bebida debe mantenerse dentro de un rango de pH de 4 a 7 y a una temperatura óptima de 18°C, dado que valores de pH superiores a 7 alteran la tasa de consumo hídrico, provocan episodios diarreicos, estimulan la proliferación de bacterias patógenas y favorecen la precipitación indeseada de medicamentos. Con este propósito, la dosificación de Poultry Water Treatment (PWT) —una sal inorgánica de bajo pKa aplicada habitualmente a razón de 500 a 700 g por cada 1000 L— acidifica el agua y disminuye la dureza general, previniendo eficazmente la formación de biofilm en las cañerías. Finalmente, los problemas de conducta relacionados con la cama deben diagnosticarse con precisión: mientras que el picaje y escarbado hacia el cuarto y quinto día de edad suele obedecer al rechazo de raciones con grasas deterioradas —lo que demanda auditar los niveles de ácidos grasos libres (FFA) y peróxidos—, el dietado excesivo en pollos de 6 semanas los incita a escarbar y rascar el sustrato en búsqueda de alimento de forma independiente a la calidad física de la cama, a la par que en lotes de ponedoras el uso de concentrados de fibra cruda insoluble con más de 60% de fibra y una retención de 4 a 8 g de agua por gramo previene el canibalismo y reduce el picaje del 10.8% al 2.9%. [20][30][31][13]

• Contraindicación de cal en producción: Nunca aplicar cal apagada en galpones con aves por su pH cáustico de 13, ya que destruye la barrera dérmica de los cojinetes plantares y acelera lesiones podales. [28]
• Protocolo de dosificación de PWT: Administrar 500 a 700 g de PWT por cada 1000 L de agua en etapas clave: primeros 7 a 10 días de vida, 48 a 72 horas alrededor de cambios de alimento y 48 a 72 horas pre-faena. [20]
• Control de escarbado y picaje: Para mitigar el escarbado en líneas con alta tendencia como Ross antes de los 10 días, suministrar 1 kg de sal por 1000 L de agua de bebida y fraccionar la entrega de alimento a 3 o 4 veces diarias. [32]
• Manejo físico de cama húmeda: Evacuar las áreas húmedas de la cama, mover y airear el sustrato diariamente, y mezclar o adicionar cama seca para controlar la humedad y factores ambientales asociados. [28][33]

"La adcion de cal acrecentaran las lesiones plantares debido a que la cal apagada tiene un Ph de 13, con mucho poder corrosivo." — Diego Manuel Diaz [28]

Control del Escarabajo de Cama (Alphitobius Diaperinus) y Vectores

El Alphitobius diaperinus adulto presenta un período de vida promedio de aproximadamente 400 días bajo temperaturas de 21 °C a 35 °C, iniciando las hembras su postura a los 11 días con un promedio de 3 huevos diarios y un total estimado de 1.400 huevos. [34]

Estrategias de control físico, mineral y biológico contra artrópodos vectores en camas avícolas

Impacto Sanitario del Escarabajo de Cama

Frente a este prolongado ciclo biológico, el escarabajo de cama actúa como un reservorio y vector crítico de patógenos de alta relevancia en la avicultura. En el plano viral, interviene en la transmisión de agentes de gran impacto sanitario como los virus causantes de la enfermedad de Marek, Gumboro, Newcastle e Influenza Aviar. Paralelamente, su presencia en las instalaciones favorece la dispersión de bacterias patógenas, destacando Salmonella typhimurium y Escherichia coli. Esta acción como vector se extiende también a protozoarios entéricos perjudiciales para el lote, albergando especies como Eimeria acervulina, Eimeria tenella y Eimeria necatrix, que comprometen la salud intestinal y la productividad de las aves. [34]

Los adultos de Alphitobius diaperinus miden aproximadamente medio centímetro de longitud y disponen de una notable movilidad, alcanzando desplazamientos de alrededor de 1,5 kilómetros por día. Suelen proliferar intensamente debajo de la cama apelmazada, en grietas de pisos tanto de tierra como de cemento, y especialmente en los sectores húmedos que se generan debajo de los comederos y bebederos. Para contener estas poblaciones, en el ensayo documentado por Corina Bernigaud y su equipo sobre cama de cáscara de arroz reusada con alta contaminación, la aplicación del producto Eco-Guard® a razón de 200 g/m² logró una disminución estadísticamente significativa en el número de individuos frente al grupo control (P=0,06). [34][35]

Aplicación de Tierras de Diatomeas en la Cama Avícola

Una alternativa para combatir estos artrópodos es el uso de tierras de diatomeas compuestas por sílice amorfa. Este recurso actúa mediante un mecanismo puramente físico: succiona la capa cerosa lipídica del exoesqueleto del insecto, desencadenando su muerte por deshidratación sin provocar resistencia química y sin manifestar toxicidad en animales homeotermos ni para los operarios. Dentro del manejo ambiental y el control de insectos en la cama avícola, se indica esparcir estas diatomeas a una tasa de hasta 70 g/m² por cada 10 cm de profundidad del sustrato, o bien en una proporción de hasta 5 kg por tonelada de cama. [37][36]

La implementación de las tierras de diatomeas ofrece amplias ventajas cuando se incorpora de forma dual en las instalaciones. Al respecto, su adición combinada a razón de 2 kg/t en el alimento balanceado junto con su espolvoreo directo sobre la cama avícola logró una disminución del 50% en la mortalidad de las aves. Asimismo, este manejo estratégico redujo el atraso en el crecimiento del lote al 2% (frente a un 20% inicial de referencia) y permitió suprimir tanto la presencia de moscas como la generación de olores desagradables dentro del galpón. [38]

Control Biológico de Vectores en la Cama de Aves

La proliferación de larvas de mosca doméstica señala deficiencias en la bioseguridad del galpón que requieren correcciones inmediatas. La pauta de mitigación exige retirar los focos húmedos donde las moscas depositan sus huevos y aportar una nueva cobertura seca mediante cascarilla de arroz o viruta; bajo ningún concepto debe emplearse cal apagada para este fin, ya que su pH 13 ejerce una severa acción corrosiva sobre la almohadilla plantar de las aves. Como herramienta complementaria, la aspersión de consorcios de microorganismos benéficos sobre la cama proporciona un control biológico integral, neutralizando emanaciones amoniacales y sulfurales y restringiendo los microambientes propicios para la reproducción de las moscas. [39][40]

• Dosis de aplicación de tierras de diatomeas: Se recomienda aplicar hasta 70 g/m² por cada 10 cm de grosor de cama o 5 kg por tonelada para degradar la capa cerosa de artrópodos por deshidratación mecánica y fijar nitratos. [36][37]
• Control de cascarudo con Eco-Guard®: La aspersión de 200 g/m² en camas reutilizadas genera un descenso estadísticamente significativo (P=0,06) en los recuentos poblacionales de adultos y formas larvarias intermedias del coleóptero. [35]
• Manejo cultural de larvas de moscas: Consiste en la remoción inmediata de focos empastados húmedos y reposición con material vegetal nuevo; no debe espolvorearse cal apagada por el alto riesgo de erosión química y pododermatitis. [39]

"La presencia de larvas de moscas en la cama ( esos incómodos gusanitos de color pardo ) nos indica que la bioseguridad, en lo referente al control y prevención de estos insectos, fallo." — Diego Manuel Diaz [39]

Reutilización y Tratamiento de la Cama Avícola: Fermentación y Modulación Ambiental

El tratamiento de la cama avícola durante el vacío sanitario mediante fermentación, alcalinización o modulación ambiental reduce la carga patógena y el amoníaco, permitiendo una reutilización segura y disminuyendo costos operativos. [41][1][42]

Modelos y protocolos de tratamiento de cama avícola durante el vacío sanitario

Control del Escarabajo de Cama y Sanitización Térmica

La preparación adecuada de la cama antes de iniciar cualquier tratamiento sanitario exige ejecutar una serie de labores preliminares indispensables. En primer término, se debe realizar el control de alfitobios, seguido por el quemado minucioso de las plumas mediante el uso de lanzallamas o fuego directo. Asimismo, resulta indispensable proceder a la trituración para soltar el material compactado y lograr la eliminación efectiva del exceso de humedad. Durante la fase de tratamiento térmico posterior, resulta imperativo que el material alcance una temperatura homogénea de 60 °C con el fin de inactivar los virus prevalentes en la explotación. Bajo estas condiciones térmicas, se consigue la inactivación comprobada del virus de Newcastle tras una exposición de 30 minutos a 60 °C (o alternativamente a 56 °C durante 3 horas), así como la neutralización del virus de Bronquitis Infecciosa al someterse a 56 °C durante un período de 15 minutos. [48][49][45][34]

Para el acondicionamiento fermentativo, el método tradicional de apilado demanda conformar montones de 1,5 metros de altura por 2,5 a 3 metros de ancho, los cuales deben cubrirse herméticamente con plástico durante 5 días para promover la elevación de la temperatura; posteriormente, la cama se riega y se somete a aireación continua a lo largo de 5 días adicionales para asegurar la evacuación completa del amoníaco acumulado. Por otro lado, la técnica de apilamiento profundo optimiza los tiempos operativos de la granja al sanitizar íntegramente la masa residual mediante el alcance de registros térmicos superiores a los 55 °C mantenidos de forma constante durante 72 horas. Este proceso termófilo acelerado permite acortar el período de descanso del galpón a únicamente una semana, marcando un contraste sustancial frente a los 15 días requeridos convencionalmente por el sistema de fermentación plana. [43][44]

Control de Clostridium en Aves Mediante Alcalinización

Como alternativa a los procesos biológicos y térmicos, la alcalinización química representa una vía sumamente eficaz para la higienización profunda del sustrato. Este procedimiento se implementa aplicando cal viva a razón de 600 g/m² en camas que presenten un espesor de hasta 15 cm, o bien ajustando una dosificación equivalente de 5 kg/m³. Esta incorporación química induce una elevación drástica del pH por encima de 9,5 a 10, requiriendo que las instalaciones del galpón permanezcan selladas sin ventilación durante un intervalo estricto de 7 días. Esta modificación severa del entorno fisicoquímico desestabiliza las estructuras celulares de los microorganismos indeseables, logrando la eliminación contundente de patógenos bacterianos de alto impacto sanitario y productivo como Salmonella spp. y Clostridium spp. [45]

La adopción rigurosa de estos esquemas de saneamiento desmitifica los riesgos asociados al reciclaje de sustratos, demostrando que las camas de pollo de engorde pueden reutilizarse de forma segura por dos años o más sin desencadenar problemas de tipo sanitario. Los estudios respaldan que el material alcanza su plena madurez biológica y estabilidad operativa a partir del cuarto lote consecutivo de crianza. No obstante, a medida que la cama avanza en su ciclo de vida y tras haber completado cinco o más crianzas sucesivas bajo un tratamiento sanitario adecuado, se aconseja adicionar una capa delgada de material nuevo sobre la superficie. Esta medida estratégica permite recuperar la altura indispensable de la cama y optimizar las condiciones físicas de amortiguación para el siguiente lote. [44][50]

Reducción de Amoniaco en Pollos de Engorde con Enmiendas

En la gestión activa de gases, el empleo de enmiendas acidificantes como el bisulfato de sodio a una dosis de 4 g/100 g logra disminuir el pH de la cama a valores inferiores a 4, reduciendo las emisiones de amoníaco hasta en un 87 % cuando se acompaña con labores de volteo periódico y la remoción de costras superficiales. Paralelamente, la modulación biológica ofrece excelentes resultados a través de la aplicación de Tecnología EM activado a razón de 1 litro cada 300 m² mediante boquillas de gota fina, o bien integrando consorcios microbianos con Bacillus subtilis, Pseudomonas y Trichoderma a una concentración de 1 x 10^8 UFC, los cuales aceleran la biodegradación de la materia orgánica y suprimen los olores amoniacales. Finalmente, en el manejo preventivo de camas nuevas apiladas en montones de 1 a 1,5 metros, la aspersión de 50 a 75 ml de formol y 15 g de sulfato de cobre por litro, concediendo 3 días de reposo, previene eficazmente la proliferación fúngica. [2][46][51][52][47][44]

• Parámetros térmicos de sanitización: El apilamiento profundo debe sostener más de 55 °C por 72 horas para sanitizar el sustrato, o alcanzar 60 °C para inactivar Newcastle en 30 minutos y Bronquitis Infecciosa en 15 minutos a 56 °C. [43][34]
• Protocolo de alcalinización con cal viva: Incorporar 600 g/m² de cal viva (o 5 kg/m³) en camas de hasta 15 cm de grosor tras retirar partes húmedas y quemar plumas, manteniendo el galpón cerrado y sin ventilación durante 7 días para superar un pH de 9,5. [45]
• Consorcios biorremediadores y EM: Aplicar 1 L de EM activado cada 300 m² de cama con boquilla teejet 8002, o cepas concentradas a 1 x 10^8 de Subtilin, Pseudobiol y Trichobiol para degradar materia orgánica y disminuir gases amoniacales. [46][51][52]

"Tratar camas es una particularidad muy interesante, porque disminuimos la presencia de patógenos en esta cama para que la parvada siguiente, que va a ser criada sobre esta cama, no tenga contacto con los patógenos de la parvada anterior." — Marcos Antonio Dai Prá [41]

Inocuidad Contra Salmonella y Valor Agronómico Como Fertilizante

Para asegurar la inocuidad alimentaria y maximizar el valor agronómico de la cama avícola, se requiere un tratamiento térmico previo que reduzca la carga bacteriana de Salmonella antes de incorporarla como abono agrícola para evitar contaminar cultivos y verduras frescas. [53]

Valorización agronómica y usos alternativos de la cama avícola

Bioseguridad y Salmonella

Esta problemática adquiere una dimensión crítica si se considera que diversos estudios señalan que hasta un 40% de las granjas avícolas presentan presencia de Salmonella en la cama de los pollos, lo que representa un riesgo sanitario significativo tanto para la salud aviar como para la salud pública a lo largo de la cadena alimentaria. La complejidad del control radica principalmente en el comportamiento biológico del microorganismo, dado que las cepas de Salmonella relevantes para la salud pública frecuentemente no manifiestan signología clínica en los pollos de engorde. Como consecuencia directa, las aves se transforman en portadores asintomáticos del patógeno, dificultando enormemente su detección rutinaria dentro del lote y favoreciendo la diseminación inadvertida de la bacteria en el sustrato durante todo el ciclo productivo. [53]

Frente a este escenario epidemiológico, la cama de aves no debe aplicarse de manera directa como abono agrícola en los suelos, exigiendo un tratamiento térmico previo para abatir la carga de Salmonella y evitar la contaminación cruzada en hortalizas y verduras de consumo fresco. Asimismo, la prevención contra Salmonella exige implementar una bioseguridad rigurosa sustentada en monitoreos periódicos, una limpieza exhaustiva de las instalaciones y un control estricto de todos los elementos que ingresan a la granja. Dicha disciplina operativa resulta determinante, dado que la erradicación del patógeno es sumamente compleja una vez que logra instalarse y persistir en el ambiente productivo. [53]

Valor Agronómico

Más allá de las precauciones sanitarias, el subproducto resultante encierra un notable potencial económico y nutricional para los cultivos agrícolas. La estimación del valor agronómico de la cama según estándares ASAE considera una generación de 0,053 kg de nitrógeno y 0,016 kg de fósforo por pollo engordado, valorizando comercialmente el 60% del nitrógeno por su biodisponibilidad frente a fuentes sintéticas como la urea y el superfosfato triple. Para dimensionar esta riqueza, en relevamientos de zonas productivas de Entre Ríos con 1.287 granjas y 5,5 ciclos anuales, que concentran 203.753.479 cabezas, el valor agronómico potencial de la cama representó USD 14.122.938 en fertilizantes, alcanzando un promedio de USD 10.974 por granja a precios de 2019. [54]

Por consiguiente, el uso administrado de la cama usada y excretas como abono orgánico reduce la dependencia de fertilizantes sintéticos como la urea y mitiga la huella de carbono pecuaria, donde el cultivo de granos representa entre el 60% y el 80% del impacto ambiental. De forma complementaria a la fertilización, este residuo valorizado ofrece aplicaciones zootécnicas en otras especies: en la suplementación de ganado de cría de carne, la inclusión de hasta un 20% de cama de pollos combinada con 80% de maíz forrajero en ensilaje trinchera permite obtener un forraje con 38% de materia seca y 12,3% de proteína cruda, consolidando un esquema productivo más eficiente e integrado. [56][55]

• Bioseguridad frente a patógenos asintomáticos: Implementación de monitoreos constantes, desinfección rigurosa y control de ingresos a las instalaciones para impedir la colonización de Salmonella sin manifestaciones clínicas visibles. [53]
• Sanitización térmica previa a la fertilización: Procesamiento térmico del material de cama previo a su uso en suelo agrícola para reducir la carga patógena y prevenir la transferencia bacteriana hacia cultivos de consumo humano. [53]
• Ensilaje forrajero para rumiantes: Mezcla de hasta un 20% de cama avícola con 80% de maíz forrajero en silos trinchera para elevar la materia seca al 38% y la proteína cruda al 12,3% en dietas de ganado cárnico. [55]

"La cama usada resultante de galpones con aves en piso, bien procesada es una excelente fuente de abono orgánico." — Pablo Lencioni [56]

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Qué es la cama de pollo y cuál es su espesor adecuado al recibir las aves? A: Es el sustrato que previene el contacto de las aves con el piso, absorbe humedad, almacena excretas y brinda aislamiento térmico. Al recibir los pollitos, se recomienda un espesor de 12 a 15 cm (o entre 15 y 20 cm). [2][1][3]

Q: ¿Cómo afecta el amoníaco en la cama a la sanidad respiratoria y rendimiento de los pollos? A: El amoníaco destruye corrosivamente el epitelio respiratorio, facilitando infecciones bacterianas y víricas. Concentraciones mayores a 50 ppm provocan dificultades respiratorias, ceguera y estrés, incrementando gastos veterinarios y perjudicando la ganancia de peso y el rendimiento zootécnico final. [57][17][21][18]

Q: ¿Cuál es la dosis y método de aplicación de los acidificantes para reducir el amoníaco en la cama? A: El bisulfato de sodio se aplica al 1% disuelto en agua por aspersión, o como PLT a razón de 250 g/m² en la madre y 125 g/m² al expandir. Otros buffers ácidos se aplican manualmente a 30-50 g/m². [18][20][22]

Q: ¿Cómo prevenir la pododermatitis en aves causada por la cama húmeda? A: Se previene ajustando la altura de bebederos para evitar derrames de agua, retirando inmediatamente las partes húmedas de la cama y evitando incorporar agua o cal (pH 13), cuyo efecto corrosivo agrava las lesiones en las almohadillas plantares. [10][28][2]

Q: ¿Cómo se controla el escarabajo de la cama (Alphitobius diaperinus) en los galpones? A: Se controla esparciendo en la cama productos como Eco-Guard® a 200 g/m² en galpones de parrilleros, o tierras de diatomeas a dosis de hasta 70 g/m² por cada 10 cm de profundidad (o 5 kg/t) para eliminar insectos. [35][36][34]

Q: ¿Por qué no se debe aplicar cal sobre la cama en presencia de los pollos de engorde? A: Porque la cal apagada posee un pH de 13 y un efecto corrosivo que genera erosiones en la almohadilla plantar y pododermatitis. La incorporación de cal solo debe realizarse durante el vacío sanitario en galpones cerrados. [28][45]

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Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

1. MV Emiliano Gil: Pautas de manejo inicial, en el pollo del hoy

2. Juliana Calvera Durán: La cama avícola: ¿Aliada o enemiga?

3. Diego Pantoja Estrada: LAVADO DE GALPON

4. Mario Cueto: ¿Camas de viruta o de cáscara de arroz?

5. Carlos Jaime Estrada: LAVADO DE GALPON

6. Pedro Deluchi: ¿Camas de viruta o de cáscara de arroz?

7. Roman Leonardo: ¿Camas de viruta o de cáscara de arroz?

8. Maximiliano Alvarez: Control Ambiental en Galpones de Pollos

9. Uriel Caicedo Gutiérrez: pollos de engorde que pican y escarban o raspan cama

10. Antônio Mário Penz Junior: Calidad de camas en pollos de engorde

11. Gonzalo Gonzalez Mateos: Camas húmedas y nutrición: Prof. Gonzalo Mateo

12. Gonzalo Gonzalez Mateos: Camas húmedas: ingredientes a controlar

13. Dr. Manfred Pietsch: Fibra Cruda Insoluble: Un Nuevo Enfoque para la salud y desempeño

14. Gustavo Antonio Fuentes: Manejo de cama en zona húmeda

15. Fernando Patiño: Cama sobre piso de cemento

16. Claudia Gallinger: Impacto de la cama de pollo sobre la calidad de las garras en galpones de crianza de aves con diferentes tecnologías

17. Luis Abel Buitrago Manjarrés: Los efectos del amoníaco en la producción avícola - Monitoreos regionales en Argentina - Parte 3

18. Alvaro Niebles M.: Reducción de niveles de amoníaco en camas avícolas: Ensayos de campo

19. Pablo Lencioni: Reducción de amoniaco en la cama

20. Tomas Altabe: Calidad de cama y agua: problemáticas diarias

21. Edulfeny Mosquera: Bienestar animal: Tratamiento de cama de pollos

22. Pablo Lencioni: Reducción de amoniaco en la cama

23. Pablo Lencioni: Reducción de amoniaco en la cama

24. Alfredo Loperena: Los efectos del amoníaco en la producción avícola - Monitoreos regionales en Argentina - Parte 3

25. Oswaldo Caicedo: Cama sobre piso de cemento

26. mario alcivar: Cama sobre piso de cemento

27. Maria Juliana Torti, Mariano Butti, Virginia Fain Binda, Bernardo Fabricio Iglesias, María Viviana Charriere, María José Beribe: Comparación de dos metodologías para la medición de Ph en cama de pollo

28. Diego Manuel Diaz: Terminó el beneficio de las ave, ¿Que hacer hasta el próximo encasetamiento?

29. German Gutierrez Garciia: LAVADO DE GALPON

30. Sergio Sevilla: pollos de engorde que pican y escarban o raspan cama

31. Elmer Homero: pollos de engorde que pican y escarban o raspan cama

32. Jorge Carrasco: pollos de engorde que pican y escarban o raspan cama

33. Gonzalo Scovino: Manejo de cama en zona húmeda

34. Diego Manuel Diaz. MVZ, especialista en sanidad animal, Colombia: Terminó el beneficio de las ave, ¿Que hacer hasta el próximo encasetamiento?

35. Corina Bernigaud, Daniel Medus, Claudia Gallinger, Adriana Cano: Control del Alphitobius Diaperinus en cama de pollos parrilleros con el producto Eco-Guard®

36. Javier Revilla Armesto: Tierras de Diatomea para la Sanidad Animal

37. Carlos Vargas Vargas: Tierras de Diatomea para la Sanidad Animal

38. Joaquin Fernandez Zouhar: Tierras de Diatomea para la Sanidad Animal

39. Diego Manuel Diaz: Terminó el beneficio de las ave, ¿Que hacer hasta el próximo encasetamiento?

40. Jorge Alberto Carmona Gutierrez: Control de Enfermedades Respiratorias en Aves: Microorganismos Biorremediadores

41. Marcos Antonio Dai Prá: Modulación ambiental en el manejo de camas en la producción avícola

42. Marcos Antonio Dai Prá: Modulación ambiental en el manejo de camas en la producción avícola

43. Larry Perdomo: Manejo de camas en galpones de pollos de engorde

44. Cesar Augusto Posada Rodriguez: Enemigos ocultos en las camas de pollo de engorde. Experiencias de campo

45. Emiliano Gil: Manejo de camas en galpones de pollos de engorde

46. William Alberto Rojas Vargas: 5 consejos para el manejo exitoso de los niveles de amoníaco en las casetas

47. Jorge Freire: Una herramienta en el tratamiento de camas avícolas

48. Marcos Antonio Dai Prá: Modulación ambiental en el manejo de camas en la producción avícola

49. Marcos Antonio Dai Prá: Modulación ambiental en el manejo de camas en la producción avícola

50. Ricardo Leon Rodriguez: Altura de la cama

51. Jorge Alberto Carmona Gutierrez: Control de Enfermedades Respiratorias en Aves: Microorganismos Biorremediadores

52. Jorge Alberto Carmona Gutierrez: Control de Enfermedades Respiratorias en Aves: Microorganismos Biorremediadores

53. Dante Javier Bueno: Salmonella sp. en cama de aves

54. Juan Gange y Natalia Almada: Una aproximación económica para mejorar la gestión de la cama de pollo

55. Alexis Moya: Cama de pollos como parte del silo de maiz

56. Pablo Lencioni: La reducción de los gases de efecto invernadero en la producción animal

57. Hector Motta: Reducción de amoniaco en la cama