El manejo de cama en pollos de engorde es el control zootécnico del sustrato para regular la humedad y la biocarga en galpones avícolas. Se implementa mediante aireación mecánica, calitrización y acidificación, manteniendo umbrales de humedad del 20% al 35% y amoníaco por debajo de 20 ppm, lo que previene la pododermatitis y optimiza la conversión alimenticia [21].
- Desafío Técnico y Causa Primaria: El manejo de cama en pollos de engorde enfrenta la degradación por alta humedad, volatilización de amoníaco y proliferación de patógenos en el sustrato.
- Impacto Cuantitativo: Mermas del 8% al 15% en ganancia diaria de peso, hasta 12% de decomiso por pododermatitis y caída de 15 puntos en el Índice de Eficiencia Europea (IEE).
- Protocolo de Intervención Verificado: Mantenimiento de humedad al 20-35%, desinfección con cal viva (600 g/m²), acidificación con bisulfato de sodio (40-50 g/m²) y fermentación a 55-60 °C.
La preparación adecuada de la cama avícola determina la transferencia térmica basal y la colonización microbiana entérica durante los primeros siete días de vida del pollito. El lecho del galpón no solo actúa como un aislante físico contra la temperatura del suelo, sino que conforma la interfase donde la ave deposita excrementos, libera agua metabólica y desarrolla su comportamiento natural de rascado [27]. La selección del sustrato y el acondicionamiento térmico previo a la llegada del lote previenen la hipotermia neonatal, estimulan el consumo temprano de alimento y evitan la proliferación prematura de enterobacterias patógenas [19].

Un espesor inicial de cama de 10 a 15 cm garantiza una capacidad higroscópica suficiente para absorber hasta 1.5 litros de agua por kilogramo de material seco. La cascarilla de arroz y la viruta de madera blanca destacan por su alta porosidad y baja velocidad de compactación, mientras que el aserrín fino presenta el riesgo de formar plástrores o tortas superficiales al saturarse con un 30% de humedad [34]. La densidad del sustrato debe situarse entre 80 y 120 kg/m³ para evitar la compactación excesiva por el tránsito de los operarios y el peso acumulado de las aves [28].
"Mantener una profundidad de cama de al menos 15 cm asegura un aislamiento térmico efectivo con el suelo de concreto o tierra, favoreciendo el desarrollo metabólico e inmunitario en las primeras etapas de crianza." — Ing. Matías Irisarri, Especialista en Manejo Avícola [27]
| Material de Cama | Capacidad de Absorción (L H2O/kg) | Conductividad Térmica (W/m·K) | Riesgo de Compactación | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|
| Viruta de Madera Blanca | 1.8 a 2.1 | 0.05 a 0.07 | Bajo | [24] |
| Cascarilla de Arroz | 1.2 a 1.4 | 0.06 a 0.08 | Moderado | [31] |
| Aserrín Fino de pino | 2.2 a 2.5 | 0.04 a 0.06 | Alto | [33] |
| Paja de Trigo Picada (3-5 cm) | 1.5 a 1.7 | 0.05 a 0.07 | Alto | [14] |
El precalentamiento de la cama debe iniciarse entre 24 y 48 horas antes de la recepción, alcanzando una temperatura homogénea en la superficie de 32 °C a 33 °C. Un lecho frío (menos de 28 °C) induce vasoconstricción periférica en el pollito, ralentiza la absorción del saco vitelino y fuerza al ave a perder calor por conducción directamente hacia el suelo [19]. La medición de la temperatura del piso mediante termometría de infrarrojos debe realizarse a una profundidad de 5 cm dentro de la cama para verificar que no existan gradientes térmicos negativos que desvíen a los pollitos de las líneas de comederos y bebederos [5].
La conservación del rango de humedad entre el 20% y el 35% constituye el factor determinante para evitar lesiones ulcerativas en los cojinetes plantares y descartes en planta de faena. Cuando la humedad supera el 35%, la resistencia física del sustrato disminuye, creándose una masa plástica adherente rica en enzimas proteolíticas de origen fecal que disuelven la queratina epidérmica de la pata del ave [22]. Por el contrario, humedades inferiores al 20% generan suspensión de partículas de polvo, irritación de la mucosa respiratoria superior y mayor predisposición a brotes de aerosolitis bacterial [21].

La pododermatitis plantar inicia como una hiperqueratosis reactiva provocada por el contacto continuo con excretas húmedas saturadas de amonio y potasio. La humedad ablanda la capa córnea del pie, permitiendo que la enzima ureasa bacteriana y las sales cáusticas penetren la dermis, desencadenando necrosis focal, infección secundaria por Staphylococcus aureus y cojeras severas que restringen el acceso al alimento [22]. La erosión severa del pie reduce la ganancia diaria de peso entre un 8% y un 12% debido al dolor crónico que experimenta el broiler al desplazarse hacia la línea de comederos [6].
[Excretas Húmedas + Humedad Cama > 35%]
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[Maceración Queratinocítica de la Pata]
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[Penetración de Sales de K+ y NH4+]
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[Necrosis Focal Dermal y Ulceración]
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[Infección Secundaria por Staphylococcus aureus]
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[Pododermatitis Grado 3 y Dolor Crónico]
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[Reducción de Consumo y Decomiso en Faena]
La evaluación de la humedad mediante la prueba del puño permite un diagnóstico rápido en el galpón al presionar una muestra representativa de cama a 5 cm de profundidad. Si la cama se desmorona inmediatamente tras abrir la mano, la humedad es inferior al 20%; si forma una bola cohesiva que se disgrega con un leve toque, el contenido hídrico se halla en el rango óptimo del 25% al 30% [25]. Si la bola retiene la forma de forma permanente o exuda líquido, la humedad supera el 40%, indicando un estado de enfangamiento severo que exige remoción mecánica e incremento de la ventilación [16].

La aplicación de acondicionadores químicos ácidos detiene la volatilización del gas amoníaco (NH3) al desplazar el equilibrio químico del lecho hacia la formación de iones amonio (NH4?). El ácido úrico presente en la gallinaza es degradado hidrolíticamente por la enzima ureasa microbiana en ambientes alcalinos (pH > 7.5), produciendo carbamato de amonio que se disocia en NH3 y CO2 [30]. Al mantener el pH del sustrato por debajo de 6.0, la actividad catalítica de la ureasa se inhibe de forma irreversible y las moléculas de amoníaco libre quedan atrapadas químicamente en forma de sulfato de amonio no volátil [3].

Concentraciones atmosféricas de amoníaco superiores a 20 ppm causan parálisis del aparato mucociliar en la tráquea, pérdida de cilios en el epitelio respiratorio y vaciamiento de células caliciformes [3]. A niveles de 50 ppm, se observa queratoconjuntivitis química, disminución del consumo de alimento y un aumento sustancial de la susceptibilidad a vacunas vivas respiratorias, derivando en brotes secundarios de Escherichia coli y neumonía bacteriana [12].
| Nivel de NH3 (ppm) | Lesión Histopatológica Traqueal | Impacto en Conversión Alimenticia | Susceptibilidad a Patógenos | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|
| < 10 ppm | Epitelio traqueal íntegro, cilios activos | Sin alteración (Línea Base) | Mínima | [21] |
| 10 a 20 ppm | Desprendimiento parcial de cilios | Aumento de +0.02 a +0.04 puntos | Leve | [3] |
| 25 a 50 ppm | Deciliación severa e hiperplasia celular | Aumento de +0.08 a +0.12 puntos | Alta (E. coli, IBV) | [13] |
| > 50 ppm | Necrosis epitelial, exudo fibrinoso | Aumento de +0.15 a +0.25 puntos | Crítica (Aerosolitis) | [30] |
El bisulfato de sodio (NaHSO4) debe aplicarse a razón de 40 a 50 g/m² sobre la superficie de la cama limpia o reutilizada previo a la distribución del papel de recepción [30]. Para tratamientos de choque en lechos con alto contenido orgánico, la dosis se incrementa hasta 100 g/m², requiriendo que la cama conserve una humedad mínima del 15% para permitir la disociación iónica del bisulfato. El producto reacciona de acuerdo a la siguiente ecuación termodinámica:
Fórmula: NaHSO4 + NH3 ? Na+ + NH4+ + SO42-
Este tratamiento reduce el pH de la superficie a valores de 2.0 a 3.5 durante 10 a 14 días, tiempo suficiente para que el sistema inmunológico del pollito madure sin la agresión constante del amoníaco ambiental [30].
"La acidificación localizada de la cama mediante 40 a 50 g/m² de bisulfato de sodio neutraliza la volatilización de amoníaco desde las primeras horas de vida, previniendo lesiones tempranas en la mucosa traqueal." — Dpto. Técnico BeFeed, Especialistas en Sanitización de Galpones [30]
El apilado higiénico o fermentación anaeróbica/aeróbica en cordones (windrowing) es el procedimiento estándar para la sanitización de camas reutilizadas entre ciclos productivos [20]. Al acumular la cama en pilas longitudinales dentro del galpón cerrado, la actividad metabólica de bacterias termófilas eleva la temperatura interna de la masa por encima de los 55 °C a 60 °C, logrando la inactivación de virus envueltos, Salmonella spp., Escherichia coli y ooquistes de Eimeria spp. [10].
La autocalentamiento termofílico requiere un contenido de humedad inicial en la pila del 35% al 45% y una relación Carbono:Nitrógeno (C:N) de 20:1 a 25:1 [5]. Cuando la temperatura interna alcanza los 55 °C durante un período mínimo continuo de 72 horas, se produce la desnaturalización térmica de las proteínas estructurales de los virus de Newcastle, Gumboro e Influenza Aviar, así como la reducción de Clostridium perfringens a niveles indetectables [4].
[Extracción de Costras y Encintado]
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[Ajuste de Humedad de la Cama al 35-45%]
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v
[Formación de Cordones (1.2-1.5 m de altura)]
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[Fase Termófila (55 °C - 60 °C por 72 horas)]
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[Volteo de la Pila (Inversión Núcleo-Corteza)]
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[Segunda Fase Térmica (55 °C por 48 horas)]
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[Aplanado, Ventilación y Acidificación Superficial]
Para ejecutar un apilado eficiente durante un vacío sanitario de 15 días, se debe seguir la siguiente secuencia técnica estandarizada [11]:
La ventilación en galpones avícolas controla la evaporación de agua del lecho mediante la remoción continua de aire saturado y su reemplazo por aire exterior precalentado. La capacidad del aire para remover humedad de la cama depende directamente de su humedad relativa (HR) y temperatura; un incremento de 10 °C en la temperatura del aire entrante duplica su capacidad de retención de vapor de agua [13]. Sin una velocidad de aire adecuada sobre la superficie del lecho, el vapor condensado por la respiración y deyecciones del ave vuelve a depositarse sobre el sustrato, acelerando el apelmazamiento [35].

En sistemas de ventilación mínima por presión negativa, el aire debe ingresar por las entradas superiores (inlets) a una velocidad de 3.5 a 4.5 m/s para dirigirse hacia el ápice del techo [13]. Este flujo de aire caliente atrapado en el cielo raso se mezcla con el aire frío entrante, elevando su temperatura y reduciendo su HR antes de descender hacia el nivel de la cama. Si la presión negativa es insuficiente (menos de 25 Pa), el aire frío cae directamente al suelo, condensando agua sobre el sustrato e inutilizando el lecho aislante [35].
Durante las épocas frías o de alta humedad exterior, los ciclos de ventilación mínima dirigidos por temporizadores e higrostatos deben garantizar una renovación de aire mínima de 0.10 a 0.20 m³/h por cada kilogramo de peso vivo [13]. El uso de descompactadores mecánicos o motocultivadores provistos de cuchillas oscilantes permite rotar los primeros 5 cm de cama, rompiendo la tensión superficial de la costra y favoreciendo el intercambio gaseoso con la corriente de aire sin liberar picos tóxicos de amoníaco si el sustrato ha sido acidificado previamente [18].
El escarabajo de la cama (Alphitobius diaperinus) constituye el principal vector mecánico y reservorio biológico de Salmonella enteritidis, virus de la Bursitis Infecciosa (Gumboro) y coccidios dentro del sustrato avícola. Las larvas y adultos de A. diaperinus se alimentan de heces, alimento derramado y aves muertas, migrando masivamente hacia el aislamiento térmico de las paredes de poliuretano del galpón durante el apilado de la cama, donde destruyen la infraestructura y transmiten patógenos al siguiente lote [25].
El ciclo de A. diaperinus dura de 35 a 65 días a temperaturas de 28 °C a 32 °C, depositando cada hembra hasta 2.000 huevos en el lecho orgánico. Al subir la temperatura de la cama por encima de los 45 °C durante el proceso de windrowing, las larvas abandonan el suelo en busca de refugio en los cimientos del galpón [25]. La presencia de más de 100 adultos por metro cuadrado de cama provoca pérdidas energéticas en las aves por consumo compulsivo de coleópteros indigestos y daños en los paneles aislantes que aumentan el costo de calefacción hasta en un 15% [25].
El control efectivo de A. diaperinus combina la aplicación de insecticidas piretroides o organofosforados sobre el suelo desnudo con la adición de tierra de diatomeas o ácido bórico en el perímetro del galpón inmediatamente después del despacho de las aves [25]:
A continuación se detalla la matriz zootécnica de Puntos Críticos de Control (PCC) para el acondicionamiento, desinfección, reúso y control ambiental de la cama en explotaciones de pollo de engorde.
| Paso / Etapa del Proceso | Peligro Zootécnico o Sanitario | Límite Crítico Operativo | Frecuencia de Monitoreo | Acción Correctiva Inmediata | Referencia |
|---|---|---|---|---|---|
| 1. Recepción del Sustrato | Contaminación por micotoxinas o micobacterias | Humedad del sustrato < 12%, Ausencia de mohos | Por cada camión receptor | Rechazar el lote de viruta o cascarilla húmeda | [28] |
| 2. Esparcido del Lecho | Transmisión de frío desde el suelo | Espesor uniforme de 10 a 15 cm de grosor | Previo al encendido de calefacción | Agregar material seco hasta alcanzar 10 cm mínimos | [27] |
| 3. Precalentamiento | Hipotermia neonatal y desacople digestivo | Temperatura de cama: 32 °C a 33 °C a 5 cm | 12 h y 2 h previo a recepción | Incrementar potencia térmica y ajustar criadoras | [19] |
| 4. Expansión del Pollito | Cama húmeda de origen por alta densidad | Densidad gradual de espacio según edad | Diaria durante la semana 1 | Abrir divisiones de crianza de forma progresiva | [6] |
| 5. Ajuste de Bebederos | Derrames de agua e inflamación podal | Altura del nipple al ojo del pollo + presión adecuada | 2 veces al día por galpón | Purgar líneas, reparar fugas y subir niples | [14] |
| 6. Acidificación de Cama | Volatilización de NH3 > 20 ppm | pH de superficie de cama < 6.0 | Días 1, 7 y 14 de crianza | Aplicar bisulfato de sodio a 40-50 g/m² | [30] |
| 7. Ventilación Mínima | Condensación hídrica y asfixia tisular | Presión negativa de 25-35 Pa, HR air < 65% | Continua (Sensores automáticos) | Aumentar ciclo de entrada de inlets y extractores | [13] |
| 8. Descompactado Mecánico | Formación de plástrores o costras | Humedad del lecho entre 20% y 35% | 2 a 3 veces por semana | Pasar motocultivador en zonas de endurecimiento | [18] |
| 9. Apilado Sanitario (Windrow) | Supervivencia de Salmonella y Clostridium | Temperatura interna de pila ≥ 55 °C por 72 h | Diaria a 3 profundidades de pila | Ajustar humedad al 40% y sellar con mantas | [4] |
| 10. Desinfección con Cal | Persistencia de esporas y bacterias en vacío | pH alcalino > 11.0 en sustrato | Al finalizar el ciclo productivo | Aplicar 600 g/m² de cal viva y cerrar 3 días | [12] |
Q: ¿Es efectiva la cama de pollo como fertilizante? A: La cama de pollo es un fertilizante orgánico de alto valor, aportando nitrógeno, fósforo y potasio, además de elevar la materia orgánica y retención hídrica del suelo [5].
Q: ¿Qué es la cama de pollo? A: Es una mezcla de sustrato absorbente como viruta o cascarilla con deyecciones, plumas y restos de alimento acumulados durante la crianza del pollo [5].
Q: ¿Cuánto de ganancia dejan 100 pollos de engorde? A: La ganancia neta por cada 100 pollos varía entre 30 y 60 USD según los costos de alimento, tasa de conversión, mortalidad y eficiencia en el manejo de cama [7].
Q: ¿Cómo se maneja la ventilación en galpones avícolas? A: Se controla mediante presión negativa y extractores para renovar el aire soplado, manteniendo la humedad entre 20% y 35% e impidiendo que el amoníaco supere 20 ppm [13].
Q: ¿Cuál es la dosificación idónea de cal viva para la sanitización de lechos reutilizados? A: La dosis óptima es de 500 a 600 g/m² de cal viva repartida uniformemente e incorporada con motocultivador antes de mantener el galpón cerrado durante 3 días [12].
Q: ¿Cómo impacta el tamaño de molienda del grano en el estado físico de la cama? A: El grano molido a 0.8-1.1 mm estimula el desarrollo muscular de la molleja, mejorando la digestibilidad y reduciendo la excreción de agua en las heces [1].
Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:
Douglas Zaviezo: Molienda gruesa mejora digestión y camas en pollos de engorde
Cesar Lopes: Manejo y confort para reducir antibióticos
Mario Plano: Amoníaco y Salud Respiratoria Aviar
Tom Tabler: Optimal Litter Temperature for Clostridia Eradication
Roberto Maisonnave: Guía de manejo de cama de pollo en Chile
Antônio Mário Penz Junior: Manejo de Espacio: Prevenir Cama Húmeda en Pollos
Matias Müller: Reutilización de Cama en Pollos de Engorde
Damián Lencina: Cama Profunda en Pollos Pastoriles: Calor y Compostaje In Situ
Guillermo Stamatti: Acumulación de cama de pollo por ciclo de engorde
Miguel Ruano: Cama Seca: Clave para Control de Salmonella Avícola
José Luís Januário: Vacío sanitario de 15 días: clave para reducir patógenos en cama
Eduardo Correa Muniz: Tratamiento de Cama con Cal en Avicultura
Cesar Augusto Posada Rodriguez: Manejo de camas y amoniaco en avicultura
Oswaldo Seclèn Effio: Estrategias para Prevenir Degradación por Humedad en Cama Avícola
Pablo Lencioni: Consecuencias del estrés calórico en la humedad de la cama de las aves
Sebastian Iglesias-Osores: Optimización de Movida de Cama
Humane Farm Animal Care, Certified Humane: Profundidad y manejo de cama en ponedoras
Roberto Pablo Sander: Mantenimiento de cama con motocultivador
Dr. Edgar O. Oviedo-Rondón: Temperatura de Cama para Pollitos de Engorde
Cesar Augusto Posada Rodriguez: Apilado y aireación para control de amoniaco en cama
Gerardo Villalobos Saume M.V: Humedad óptima de cama avícola: 20-35% para salud intestinal
Francisco Federico, Claudia Gallinger, Araujo S , Irma Isabel Corina Bernigaud, Duarte S.: Humedad de cama y pododermatitis en pollos
Emiliano Gaston Gil: Tratamientos de Cama en Avicultura para Invierno
Dpto. Técnico Comercial Porfenc: Control de Humedad de Cama para Prevenir Pododermatitis en Pollos
Larry A.Perdomo L.: Verificación de Humedad en Cama de Pollo para Apilamiento
Francisco Rodrigo Herrera Ramírez: Control de Olores en Granjas Avícolas por Manejo de Gallinaza
Matías Irisarri: Profundidad de cama para aislamiento en pollitos
Agroavícola San Marino S.A. Departamento Técnico. Colombia: Espesor y Desinfección de Cama para Pollitas
Dr. Manfred Pietsch: Fibra Insoluble: Clave para Reducir Humedad de Cama en Broilers
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Cesar Augusto Posada Rodriguez: Espesor y manejo de cama de viruta
Diego Pantoja Estrada: Material y grosor de cama avícola
Hector Magaña: Prevención de Empaste de Cama en Avicultura










