Guía Integral de Diagnóstico Clínico, Laboratorial y Diferencial de Enfermedades en Cerdos
El diagnóstico diferencial de enfermedades en cerdos es la caracterización sistemática de patógenos entéricos, respiratorios y reproductivos mediante correlación clínico-patológica y confirmación molecular. Su prevención y control se implementan mediante monitoreo serológico, PCR y necropsia estandarizada, manteniendo umbrales de sensibilidad analítica superiores al 95% y valores de Ct por debajo de 37, lo que previene brotes epidémicos y optimiza el rendimiento zootécnico de la piara [9].
- Desafío Técnico y Causa Primaria: El diagnóstico diferencial de enfermedades en cerdos aborda coinfecciones complejas causadas por enteropatógenos, virus respiratorios y agentes reproductivos.
- Impacto Cuantitativo: Mermas de hasta el 90% de camada por gastroenteritis, mortalidad mayor al 50% por APP y pérdidas de conversión alimenticia de 0,15 a 0,35 en engorde.
- Protocolo de Intervención Verificado: Muestreo de fluidos de procesado en pooling 1:5 con Ct menor a 37 en RT-PCR, necropsia sistemática en fase aguda y antibiogramas por CMI.
Diagnóstico Diferencial de Enfermedades Entéricas Porcinas: Salmonella, Brachyspira y Lawsonia
El diagnóstico diferencial de enteropatías en porcinos exige la identificación precisa del segmento intestinal afectado y de la severidad morfofisiológica de las lesiones parenquimatosas [12]. La diferenciación clínica entre cuadros entéricos resulta compleja debido a la superposición de signos como diarrea, deshidratación y pérdida de ganancia diaria de peso en las fases de recría y engorde [15].
Fisiopatología Mucosa y Cuadros Clínicos Comparativos
Salmonella enterica presenta dos manifestaciones clínicas principales: la forma septicémica, causada predominantemente por la serovariedad Salmonella choleraesuis, y la enterocolitis, inducida por Salmonella typhimurium [14], [31]. La presentación septicémica cursa con cianosis en los pabellones auriculares, abdomen y extremidades, acompañada de hipertermia severa (>41,0 °C), esplenomegalia hiperémica y hepatomegalia con focos necróticos miliares [14]. En contraste, la forma entérica se limita a una tiflocolitis necrótica focal con presencia de úlceras en botón ("button ulcers") en la mucosa del ciego y colon [31].
La disentería porcina, provocada por Brachyspira dysenteriae, afecta exclusivamente al intestino grueso (ciego y colon) [22]. Induce una colitis mucohemorrágica grave caracterizada por diarrea abundante con sangre blanda o fresca, moco y fibrina, provocada por la destrucción del epitelio de la cripta colónica por citotoxinas y hemolisinas [35]. Por su parte, Brachyspira pilosicoli causa la espiroquetosis colónica porcina, una entidad menos invasiva que genera colitis catarral con diarrea pastosa sin sangre evidente, afectando la conversión alimenticia [22].
Lawsonia intracellularis es el agente etiológico de la Enteropatía Proliferativa Porcina (ileítis) [22]. Este patógeno bacteriano intracetoplásmico obligatorio infecta las células epiteliales en división de las criptas del íleon, yeyuno terminal y colon proximal, hiperplasiando el epitelio mucosa [35]. Se manifiesta en tres formas: la adenomatosis intestinal porcina (PIA), la enteritis necrótica y la ileítis hemorrágica aguda, siendo esta última frecuente en reproductores de reemplazo y cerdos de engorde pesados, manifestándose con melena, anemia severa y muerte súbita [22].
| Enteropatógeno | Localización Intestinal | Tipo de Lesión Histopatológica | Apariencia Macroscópica de la Heces | Método de Confirmación Laboratorial | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|---|
| Salmonella choleraesuis | Sistémico / Íleon y Ciego | Vasculitis, microtrombosis y necrosis focal | Diarrea acuosa amarilla a cianosis sistémica | Cultivo enriquecido y PCR multiplex | [14] |
| Salmonella typhimurium | Ciego y Colon desc. | Tiflocolitis fibrinonecrótica difusa | Heces líquidas con moco y castas de fibrina | Cultivo bacteriológico cuantitativo | [31] |
| Brachyspira dysenteriae | Ciego y Colon espiral | Necrosis de epitelio colónico e hiperplasia mucosa | Diarrea mucohemorrágica con moco y sangre | RT-PCR gen gilB / Aislamiento anaerobio | [22] |
| Brachyspira pilosicoli | Colon | Colitis catarral atrófica con adherencia bacteriana | Diarrea pastosa inconsistente ("salsa verde") | PCR cuantitativa / Hibridación FISH | [26] |
| Lawsonia intracellularis | Íleon terminal y Yeyuno | Hiperplasia de células de la cripta enterocítica | Melena alquitranada o heces pastosas | PCR en heces / Tinción Warthin-Starry | [35] |
Algoritmo Diagnóstico Laboratorial de Diagnóstico Diferencial
El abordaje en laboratorio requiere combinar la observación anatómica en necropsia con metodologías moleculares avanzadas [26]. Para confirmar Lawsonia intracellularis, el cultivo microbiológico convencional resulta ineficaz por su naturaleza intracelular obligada, por lo que la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) cuantitativa en tiempo real en muestras de heces o hisopados de mucosa de íleon es el estándar de oro [26], [35]. La histopatología mediante tinción de plata de Warthin-Starry en cortes de íleon teñidos revela las bacterias curvadas en forma de coma en el citoplasma apical de los enterocitos [22].
"La identificación precisa de enteropatógenos exige evitar el diagnóstico basado únicamente en la sintomatología clínica, ya que Brachyspira y Lawsonia presentan patrones epidemiológicos superpuestos pero responden a esquemas antimicrobianos completamente divergentes." — Dr. Fernando Aguado, Especialista en Sanidad Porcina [22]
Diagnóstico de Patologías Respiratorias en Cerdos: Mycoplasma e Influenza
El Complejo Respiratorio Porcino involucra interacciones sinérgicas entre patógenos primarios y secundarios que incrementan la severidad de las lesiones pulmonares hasta en un 60% [23]. La interacción entre agentes virales e inmunosupresores compromete el sistema mucociliar, facilitando la colonización bacteriana invasiva en el parenquima pulmonar [27].
Fisiopatología del Complejo Respiratorio Porcino (CRP)
Mycoplasma hyopneumoniae actúa como el principal patógeno primario del CRP [23]. Se adhiere específicamente a los cilios del epitelio respiratorio traqueobronquial mediante la adhesina P97, provocando ciliostasis, pérdida de cilios y exfoliación epitelial [5]. Esto suprime la aclaración mucociliar y predispone al pulmón a coinfecciones por Actinobacillus pleuropneumoniae (APP), Glaesserella parasuis y Pasteurella multocida [23]. La neumonía enzootica genera áreas de consolidación craneoventral de color purpúreo a grisáceo, bien delimitadas de los lobulillos sanos [13].
El Virus de la Influenza Porcina (SIV) causa una infección vírica aguda caracterizada por su rápida propagación en el hato, fiebre alta (40,5 a 41,5 °C), tos paroxística seca, secreción nasal y letargia [23]. Macroscópicamente, induce una neumonía lobular multifocal de color rojo púrpura con bordes colapsados [13]. En cerdas gestantes, las picos febriles inducidos por la liberación masiva de citoquinas proinflamatorias causan abortos por falla en el mantenimiento lúteo [24].
[Estrés / Ambiente / Transporte]
| Secuencia del Proceso | Parámetro / Condición |
|---|---|
| Fase 1 | Estrés / Ambiente / Transporte |
| Fase 2 | Supresión de Aclaración Mucociliar |
| Fase 3 | Infección Primaria: M. hyopneumoniae / Influenza / PRRSV |
| Fase 4 | Invasión Secundaria Bacteriana <--- Lisis Celular y Daño Tisular |
| Fase 5 | Actinobacillus pleuropneumoniae (Pleuroneumonía Fibrino-hemorrágica) |
| Fase 6 | Glaesserella parasuis (Poliserositis Fibrinosa) |
| Fase 7 | Streptococcus suis (Meningitis y Pleuritis) |
Caracterización Molecular y Sensibilidad Antimicrobiana
Para el diagnóstico de Mycoplasma hyopneumoniae, los modelos innovadores de cultivos celulares en interfaz aire-líquido (ALI-PRECs) permiten reproducir la cytoarquitectura traqueal porcina [5]. Este sistema acelera la evaluación de viabilidad del patógeno y la evaluación del daño epitelial en comparación con el cultivo bacteriológico en medio Friis, el cual requiere de 2 a 4 semanas [5].
La caracterización de serotipos bacterianos es crítica en Actinobacillus pleuropneumoniae [23]. Con 18 serotipos identificados, la carencia de inmunidad cruzada entre serotipos heterólogos implica que un esquema vacunal diseñado para el serotipo 1 no protege contra desafías epidémicos del serotipo 3 o 5 [23]. Es imprescindible ejecutar la serotipificación por PCR multiplex a partir del aislamiento bacteriano [1].
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"Frente al incremento sostenido de resistencias bacterianas, el diagnóstico no termina con la identificación del patógeno; es imperativo realizar pruebas de concentración mínima inhibitoria (CMI) mediante antibiogramas cuantitativos para respaldar la elección terapéutica en granja." — Dr. Fernando Bessone, Docente e Investigador en Sanidad Porcina [1]
Muestreo y Diagnóstico Laboratorial de PRRS, Aujeszky y Virosis Reproductivas
La detección oportuna del Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino y de la Enfermedad de Aujeszky requiere esquemas de vigilancia epidemiológica con alta sensibilidad analítica y especificidad diagnóstica [2]. Las virosis reproductivas causan pérdidas catastróficas representadas por repeticiones de celo, momificación fetal, reabsorción embrionaria y lechones nacidos muertos [24].
Estatus Sanitario y Vigilancia de PRRSV y Aujeszky
El virus del PRRS (PRRSV), un Arterivirus envuelto, infecta a los macrófagos alveolares porcinos (PAM), destruyendo las defensas primarias del pulmón [34]. Su diagnóstico serológico se realiza mediante ELISA indirecto (detectando anticuerpos contra la proteína de la nucleocÁpside N), considerando un ratio de muestra/control positivo (S/P) ≥ 0,4 como reactivo [34]. No obstante, para confirmar infección activa y circulación viral en recría o gestación, se utiliza la RT-PCR en tiempo real [7].
La agrupadación de muestras (pooling) es habitual para reducir costos de diagnóstico en monitoreos masivos [7]. Sin embargo, el pooling excesivo introduce un factor de dilución que puede elevar el valor del ciclo de umbral (Ct), produciendo falsos negativos [7]. Las investigaciones de laboratorio establecen un límite máximo de mezcla de 1:5 para suero o fluidos de procesado, garantizando que el 95% de las muestras verdaderamente positivas mantengan valores de Ct ≤ 37 [7].
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La Enfermedad de Aujeszky (Pseudorrabia), producida por un Alphaherpesvirus neurotrópico y epiteliotrópico, induce cuadros clínicos marcados por la edad del hospedador [16]:
- Lechones lactantes y destetados: Cuadro neurológico hiperagudo con ataxia, incoordinación, temblores muscular, parálisis facial, nistagmo y mortalidad de hasta el 100% [16].
- Cerdas reproductoras: Abortos masivos en cualquier etapa de la gestación, absorción embrionaria y nacimientos de lechones mofidicados [16], [24].
- Cerdos en engorde: Rinitis, traqueítis y bronconeumonía con tos marcada e hipertermia, semejante a un brote de influenza [16].
"Frente a un reemergencia de enfermedades de denuncia obligatoria como Aujeszky, es indispensable retornar a las bases de la vigilancia epidemiológica, rigidez en la bioseguridad del transporte y estricto control de reposición." — Dr. Santiago Masi Mignaco, Cátedra de Epidemiología Veterinaria [2]
Diagnóstico Diferencial de la Falla Reproductiva
| Agente Patógeno | Signología Clínica Característica | Hallazgos Patognomónicos en Fetos | Pruebas Diagnósticas Indicadas | Referencia |
|---|---|---|---|---|
| PRRSV | Abortos tardíos, lechones débiles y fallas respiratorias | Cordón umbilical hemorrágico y ascitis | RT-PCR en fluido corporal / ELISA S/P >0,4 | [34] |
| Parvovirus Porcino (PPV) | SMEDI (Muerte embrionaria, momificación y esterilidad) | Fetos mofidicados de variable tamaño (<16 cm) | PCR en pulmón fetal / Inmunofluorescencia | [24] |
| Virus de Aujeszky | Abortos, signos nerviosos centrales en lechones | Focos necróticos miliares en hígado y bazo | ELISA gE (diferencial) / PCR en amígdalas | [16] |
| PCV-3 | Abortos, natimortos y fallas en la tasa de concepción | Miocarditis necrótica e inflamación vascular | PCR cuantitativa / Histopatología cardíaca | [24] |
| Peste Porcina Africana (PPA) | Fiebre hiperaguda, cianosis y alta mortalidad | Esplenomegalia hiperémica oscura y petequias | PCR en tiempo real / ELISA de captura | [25] |
Diagnóstico de Leptospirosis, Erisipela y Cisticercosis en Cerdos
El diagnóstico diferencial de patologías zoonóticas y sistémicas en porcinos requiere la diferenciación serológica y histopatológica de lesiones renales, vasculares y musculares específicas [10]. La integración de la inspección ante y post-mortem es crítica para la detección de estas afecciones [6].
Diagnóstico de Leptospirosis Porcina
La leptospirosis porcina es causada por espiroquetas del género Leptospira, siendo las serovariedades Bratislava, Pomona, Icterohaemorrhagiae y Tarassovi las de mayor prevalencia zootécnica [24]. La infección asintomática es común en cerdos adultos, pero actúa como causa principal de abortos en el último tercio de la gestación, nacimiento de lechones débiles e ictericia neonatal [24].
En necropsia de cerdos reproductores o lechones, el hallazgo anatomopatológico distintivo reside en los riñones: presencia de nefritis intersticial multifocal crónica, caracterizada por focos blanquecinos subcapsulares ("manchas blancas" o "white spots") [10]. La prueba diagnóstica de referencia (estándar OIE) es la Prueba de Microaglutinación (MAT) [24]. Títulos serológicos individuales superiores a 1:100 o 1:400 para una serovariedad específica confirman la exposición, mientras que aumentos de cuatro veces el título en pares de sueros convalecientes confirman enfermedad activa [24].
Erisipela Porcina: Formas Aguda, Subaguda y Crónica
La Erisipela porcina, causada por la bacteria grampositiva Erysipelothrix rhusiopathiae, se clasifica en tres formas clínicas [10], [24]:
- Forma Aguda (Septicémica): Muerte súbita en cerdos de engorde o cerdas, hipertermia elevada (>41,5 °C), rigidez al caminar y formación de placas cutáneas eritematosas y edematosas en forma de rombo o diamante ("enfermedad del diamante") [10].
- Forma Subaguda: Lesiones cutáneas leves urticariformes, inapetencia transitoria y erupciones en la piel que evolucionan a costras oscuras [10].
- Forma Crónica: Artritis proliferativa fibrinoide crónica con anquilosis articular, o endocarditis vegetativa valvular patognomónica en la necropsia, caracterizada por masas friables de fibrina parecidas a una coliflor en las válvulas auriculoventrioculares (mitral o tricúspide) [10].
"Al abrir la cavidad torácica durante la necropsia, la presencia de lesiones vegetativas sobre la válvula mitral es una firma patognomónica incuestionable de Erysipelothrix rhusiopathiae, la cual exige una inmediata revisión de los programas de vacunación en el sitio 3." — Dr. Santiago Eusse, Especialista en Patología Porcina [10]
Inspección Sanitaria de Cisticercosis y Triquinosis
En el matadero e inspección sanitaria (rastro/frigorífico), la detección de parasitosis zoonóticas es fundamental para la inocuidad alimentaria [6]:
- Cisticercosis Porcina (Cysticercus cellulosae): Fase larvaria de Taenia solium. El diagnóstico se efectúa mediante la incisión metódica e inspección de los músculos de mayor actividad metabólica: maseteros, lengua, corazón, diafragma y tríceps braquial [6]. Macroscópicamente se observan vesículas ovoides transparentes de 5 a 10 mm de diámetro que contienen un escólex invaginado [6].
- Triquinosis (Trichinella spiralis): Parasitosis tisular intestinal y muscular. Puesto que los quistes no son visibles a simple vista, la prueba oficial obligatoria es el Método de Digestión Enzimática Artificial de Muestras Agrupadas en músculo estriado (pilares del diafragma) [6]. La digestión con tripsina y ácido clorhídrico libera las larvas infestantes L1 para su posterior identificación y conteo microscópico [6].
Técnicas de Diagnóstico de Gestación y Monitoreo con Fluidos de Procesado
El monitoreo gestacional y la vigilancia poblacional continua mediante fluidos de procesado optimizan la eficiencia reproductiva y reducen los costos de muestreo individual en más del 70% [7]. La recolección de muestras grupales facilita un estatus epidemiológico continuo de la piara [33].
Diagnóstico Precog de Gestación y Fisiología Reproductora
El diagnóstico confirmation de gestación en cerdas se fundamenta en tres herramientas técnicas complementarias:
- Ultrasonografía en Modo B (Tiempo Real): Constituye el estándar de oro zootécnico. Realizada mediante transductores sectoriales o lineales de 3,5 a 5,0 MHz aplicados en la ingle sobre la pared abdominal flácida. Permite visualizar sacos embrionarios anecoicos (negros) llenos de líquido corioalantoideo desde el día 21 al 28 post-inseminación, alcanzando una precisión diagnóstica superior al 98%.
- Ultrasonografía Doppler (Efecto Acústico): Detecta el flujo sanguíneo pulsátil de las arterias uterinas hipertrofiadas y las frecuencias cardíacas fetales a partir del día 30 a 35 de gestación.
- Detección de Retorno al Celo y Regla Fisiológica "3-3-3": Monitoreo con reproductor (macho celador) a los 18-24 días post-servicio. La regla gestacional porcina fisiológica estandarizada de 3 meses, 3 semanas y 3 días (114 días promedio de gestación, intervalo fisiológico de 111 a 116 días) determina el flujo de entrada a la sala de maternidad.
Muestreo Epidemiológico Masivo con Fluidos de Procesado y Fluidos Orales
Los fluidos de procesado son el líquido serosanguinolento obtenido durante la castración quirúrgica y el corte de cola (caudofagía/descole) de lechones recién nacidos (entre los 1 y 5 días de vida) [7]. Representan una matriz biológica representativa para la evaluación de la transmisión vertical de patógenos virales como PRRSV y Circovirus Porcino tipo 2 (PCV-2) de la cerda a la camada [7].
Los fluidos orales, recolectados mediante cuerdas de algodón suspendidas en los corrales durante 20 a 30 minutos, capturan la saliva cargada de exudados transudados sistémicos de múltiples animales [33]. Es un método no invasivo ideal para la detección por RT-PCR de Mycoplasma hyopneumoniae, virus de la Influenza, vDEP y PRRSV en recría y engorde [19], [33].
| Fase Diagnóstica / PCC | Parámetro de Control Crítico | Criterio Técnico Aceptable | Frecuencia de Ejecución | Referencia |
|---|---|---|---|---|
| PCC 1: Selección de Animales | Estado clínico e historial de tratamiento | Animales en fase aguda sin medicación inyectable previa | Ante cada brote activo | [28] |
| PCC 2: Eutanasia Humanitaria | Integridad tisular para muestras | Electroshock controlado o insensibilización por perno | Previo a cada necropsia | [4] |
| PCC 3: Técnica de Necropsia | Protocolo de apertura por planos sanitarios | Inspección del plano menos contaminado al más viciado | En el 100% de la necropsia | [6], [17] |
| PCC 4: Colección de Pulmón | Elección de zona necrótica/sana | Bloques de 1 a 2 cm en el límite de la lesión con fijación | Inmediato post-apertura | [13] |
| PCC 5: Muestreo de Íleon / Ciego | Tipo de muestra e hisopado mucosa | Muestra de mucosa raspada fresca y en formol al 10% | En cuadros entéricos | [22] |
| PCC 6: Fluidos de Procesado | Factor de dilución máximo en pooling | Mezcla máxima 1:5 con Ct objetivo < 37 en RT-PCR | Lotes semanales paritorio | [7] |
| PCC 7: Cadena de Frío | Temperatura de transporte a laboratorio | Refrigeración estricta entre 2 °C y 8 °C (hielo seco) | Tránsito < 24 horas | [18] |
| PCC 8: Cultivo Bacteriológico | Sensibilidad y perfil de resistencia | Ejecución de prueba CMI para antibiograma cuantitativo | Ante aislados patógenos | [1] |
| PCC 9: Diagnóstico Gestacional | Sensibilidad en ecografía Modo-B | Revisión ecográfica entre días 21 y 28 post-servicio | Lotes semanales de celo | [24] |
| PCC 10: Inspección en Rastro | Detección de parásitos tisulares | Digestión enzimática obligatoria en diafragma | En faena / frigorífico | [6] |
Preguntas Frecuentes (FAQ)
Q: ¿Cuáles son las patologías más comunes en cerdos? A: Las patologías más frecuentes se agrupan en el Complejo Respiratorio Porcino (Mycoplasma, PRRSV, SIV, APP), Complejo Enterico (Salmonella, Lawsonia, Brachyspira, Rotavirus, vDEP) y patologías reproductivas como Parvovirus y Leptospirosis [9], [12].
Q: ¿Qué significa la regla 3-3-3 para los cerdos? A: Es la regla nemotécnica fisiológica que representa la duración promedio de la gestación en la cerda: 3 meses, 3 semanas y 3 días (equivalente a 114 días promedio) [24].
Q: ¿Cómo se diagnostica la leptospirosis? A: El diagnóstico serológico de elección es la Prueba de Microaglutinación (MAT) confirmada mediante títulos >1:100, complementada con histopatología renal en necropsia y PCR en orina o tejido abortado [24].
Q: ¿Cuáles son las enfermedades de control oficial en cerdos? A: Las principales enfermedades porcinas de denuncia obligatoria e intervención sanitaria oficial son la Peste Porcina Africana (PPA), la Peste Porcina Clásica (PPC), la Enfermedad de Aujeszky y la Brucelosis Porcina [2], [25].
Q: ¿Por qué es crucial realizar antibiogramas en granjas porcinas? A: El antibiograma por CMI identifica la sensibilidad bacteriana específica, optimiza la eficacia del tratamiento in situ y previene el desarrollo de cepas multirresistentes de impacto en la salud pública [1].
Fuentes y Referencias Técnicas
Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:
-
Fernando Bessone: Antibiogramas: clave contra resistencia antibiótica
-
Santiago Masi Mignaco: Vigilancia epidemiológica: clave contra Aujeszky en porcinos
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Santiago Eusse: Consideraciones previas para una necropsia exitosa en cerdos
-
Santiago Eusse: Eutanasia humanitaria en cerdos para necropsia
-
Ana Fiorella Castillo Espinoza: Modelo ALI-PRECs: Detección rápida de Mycoplasma hyopneumoniae
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Marco Antonio Jacho López: Necropsia porcina: diagnóstico esencial en granjas
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Onyekachukwu Henry Osemeke, Isadora Machado, Mafalda Mil-Homens, Grant Allison, Michael Paustian, Daniel C. L. Linhares & Gustavo S. Silva: Dilución de muestras y detección de PRRSV
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david lim: Viability of fermented coconut liquid in piglet diets
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Fernando Bessone: Diagnóstico integral en cerdos: etapas y técnicas
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Santiago Eusse: Identificación de lesiones patognomónicas en necropsia porcina
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Fernando Bessone: Agentes del Complejo Digestivo Porcino
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Santiago Eusse: Diagnóstico diferencial de neumonías porcinas en necropsia
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Rafael Vázquez Caldito: Diferenciación de Salmonella cholerasuis
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Andrea Garcia: Desafíos Diagnósticos Enteropatías Porcinas
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Juan Ramiro Llamas: Síntomas de Aujeszky por Categoría Porcina
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Santiago Eusse: Protocolo detallado de necropsia en cerdos: de examen externo a órganos
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Alma Flor Islas Rueda: Selección de Muestras para Diagnóstico Porcino
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Santiago Eusse: Objetivo de la necropsia en cerdos: Diagnóstico y prevención
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Fernando Aguado: Diferencias clave entre Brachyspira y Lawsonia en cerdos
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Fernando Bessone: Agentes del Complejo Respiratorio Porcino
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Librado Carrasco y Manuel Quezada: Peste Porcina Africana: Diagnóstico y Prevención
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Enrique Corona Barrera: Enteropatógenos porcinos en México: un desafío constante
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Percy Mamani Luque y Rosa Amelia Perales Camacho: Patógenos Clave en CRP: Virales y Bacterianos
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