La Diarrea Viral Bovina (DVB) es una patología infecciosa causada por un Pestivirus que genera inmunosupresión, fallos reproductivos y trastornos entéricos en bovinos. Su prevención y control se implementan mediante la eliminación de animales persistentemente infectados, bioseguridad y vacunación, manteniendo umbrales de 0% de vacas PI y títulos de anticuerpos de 1:128, lo que previene abortos y optimiza la tasa de concepción [11].
- Desafío Técnico y Causa Primaria: La diarrea viral bovina dvb en ganado lechero es causada por un virus Pestivirus ARN que genera inmunosupresión severa e infecciones fetales.
- Impacto Cuantitativo: Mermas reproductivas con reducciones del 50% en concepción, caídas del 11% en producción láctea y mortalidad neonatal elevada en guachera.
- Protocolo de Intervención Verificado: Diagnóstico masivo por Ag-ELISA/PCR, descarte inmediato de bovinos PI y doble vacunación pre-servicio a los 60 y 35 días.
La infección por el Virus de la Diarrea Viral Bovina (VDVB) provoca manifestaciones clínicas heterogéneas que varían desde cuadros asintomáticos transitorios hasta cuadros entéricos letales y reabsorciones embrionarias en el hato [13]. El agente etiológico es un virus ARN de cadena sencilla de sentido positivo perteneciente al género Pestivirus dentro de la familia Flaviviridae, el cual se clasifica en dos genotipos principales: VDVB-1 y VDVB-2 [12]. Ambos genotipos se dividen metabólicamente en dos biotipos celulares en cultivo de tejidos: el biotipo No Citopático (NCP) y el biotipo Citopático (CP), siendo el biotipo NCP la forma infectante predominante en la naturaleza y la única capaz de atravesar la placenta para generar animales Persistentemente Infectados (PI) [14].

La infección agudamente adquirida en bovinos inmunocompetentes suele ser leve o subclínica en un 70% a 90% de los casos, manifestándose tras un periodo de incubación de 5 a 12 días [11]. Sin embargo, cepas hipervirulentas de VDVB-2 desencadenan el Síndrome Hemorrágico Agudo, caracterizado por fiebre sostenida superior a 40.5 °C, leucopenia drástica (reducción celular mayor al 50% en linfocitos y neutrófilos), trombocitopenia severa, petequias en mucosas, epistaxis, diarrea sanguinolenta y muerte súbita [13]. La réplica del virus en los tejidos linfoides (placas de Peyer, amígdalas y ganglios linfáticos) destruye la subpoblación de linfocitos T B220+ y CD4+, favoreciendo co-infecciones bacterianas secundarias por Mannheimia haemolytica, Pasteurella multocida y Escherichia coli [20].
La Enfermedad de las Mucosas es la forma clínica más severa e invariable de desenlace fatal (100% de letalidad) que afecta de manera exclusiva a animales con Infección Persistente (PI) [14]. Este cuadro se desencadena cuando un animal PI (infectado en etapa fetal con una cepa NCP) se superinfecta con una cepa del biotipo Citopático (CP) homóloga o mutante genéticamente adaptada [12]. El proceso patogénico provoca erosiones y ulceraciones profundas en el plano nasolabial, rodete coronario, cavidad bucal, esófago, omaso, abomaso e intestino delgado, acompañadas de diarrea acuosa profusa con moco y castas de fibrinógeno, deshidratación rápida y muerte en un lapso de 5 a 14 días [14].
"La identificación temprana y eliminación de los animales persistentemente infectados (PI) es fundamental para romper el ciclo de transmisión, ya que estos representan la principal fuente de contaminación viral en la explotación." — Manuel Cerviño, Especialista en Sanidad Animal [8]
| Biotipo Viral | Genotipos Frecuentes | Tropismo Tisular Primario | Manifestación Clínica Principal | Impacto Zootécnico | Referencia |
|---|---|---|---|---|---|
| No Citopático (NCP) | VDVB-1a, 1b, VDVB-2a | Tejido linfoide, epitelio reproductivo | Infección transitoria, persistencia fetal (PI) | Reabsorción embrionaria, abortos | [12] |
| Citopático (CP) | VDVB-1a, VDVB-2b | Epitelio gastrointestinal, mucosas | Enfermedad de las Mucosas | 100% de mortalidad en bovinos PI | [14] |
| NCP Hipervirulento | VDVB-2 cito-patógeno | Megacariocitos, endotelio vascular | Síndrome Hemorrágico Agudo | Caída del 11% en producción de leche | [13] |
El contagio del virus DVB ocurre principalmente por contacto directo horizontal entre animales infectados y susceptibles, o por vía vertical transplacentaria durante la gestación [11]. Los animales PI eliminan el virus de forma continua y masiva durante toda su vida a través de secreciones nasales, saliva, lágrimas, orina, heces, leche y semen, alcanzando concentraciones de hasta 106 a 107 dosis infectantes en cultivo tisular por mililitro (DICT50/ml) [14]. Un solo ternero PI en un corral de recría o en la guachera es capaz de infectar al 100% de los terneros susceptibles convivientes en un lapso inferior a 48 horas [17].

La patogénesis de la infección vertical depende estrictamente de la edad gestacional del feto al momento en que la hembra no inmune sufre la viremia [12]. La ventana crítica de desarrollo inmunológico determina el destino del concepto según los siguientes intervalos clave:
PERIODO DE GESTACIÓN Y EFECTOS EN EL FETO (DÍAS)
0 -------- 40 ----------- 120 ---------- 180 ------- 280 Días
| | | |
[Muerte ][ Inmunotolerancia ][ Teratogénesis ][ Inmunocompetencia ]
[Embrionaria] [ Nacimiento PI ] [ Malformaciones] [ Feto Sano / Ac+ ]
La transmisión indirecta cobra relevancia en sistemas lecheros de alta densidad productiva mediante el uso de agujas e instrumental quirúrgico contaminado, mangas de palpación reutilizadas sin desinfección, semen infectado utilizado en Inseminación Artificial (IA) y la alimentación con calostro o leche de descarte procedente de vacas infectadas o vacas PI [22]. El virus DVB posee una elevada capacidad de infectar los folículos ováricos y el tejido testicular, donde persiste en las células de Sertoli, eliminándose en el eyaculado de toros PI y toros con infecciones agudas transitorias [11]. Además, los factores de manejo ambiental, como la falta de rotación de estacas o jaulas en la guachera, sobrecargan la transmisión fómitica en la crianza artificial [26].
La identificación rápida y precisa de los animales PI constituye la columna vertebral insustituible de cualquier programa de control o erradicación de la DVB [10]. La diferenciación entre un animal con Infección Transitoria (TI) y un animal con Infección Persistente (PI) requiere el uso combinado de pruebas serológicas y virológicas con intervalos de confirmación estandarizados de 30 días [30].

Para el diagnóstico rutinario y el monitoreo poblacional se emplean cuatro metodologías analíticas principales:
| Metodología de Laboratorio | Matriz Biológica | Sensibilidad / Especificidad | Aplicación Clínica / Zootécnica | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|
| Ag-ELISA (Erns/E2) | Muesca auricular, suero | 97.5% / 99.1% | Detección individual de PI en neonatos | [28] |
| RT-PCR en Tiempo Real | Tanque de leche, pooles de suero | 99.8% / 99.5% | Monitoreo epidemiológico de hato lechero | [10] |
| Ac-ELISA Competitivo | Suero, suero de leche | 96.0% / 98.0% | Evaluación de cobertura vacunal y prevalencia | [30] |
| Inmunohistoquímica (IHQ) | Biopsia de piel (oreja) | 99.0% / 100% | Confirmación patológica definitiva de PI | [32] |
Para evitar el descarte erróneo de un ternero con Infección Transitoria (TI) alta en carga viral, se implementa un protocolo secuencial rígido [30]. Todo animal que resulte positivo a Ag-ELISA o RT-PCR individual debe ser aislado de inmediato del resto del rodeo y re-muestreado transcurridos exactamente 30 días [28]. Si la segunda muestra resulta nuevamente positiva a antígeno o ARN viral, y negativa a anticuerpos neutralizantes, el animal queda clasificado inequívocamente como Persistentemente Infectado (PI) y debe ser eliminado del establecimiento sin excepción [29].
No existe un tratamiento antiviral específico contra el virus de la Diarrea Viral Bovina, por lo que el manejo clínico de los animales con infecciones agudas transitorias se basa en terapia de soporte sintomática, rehidratación hidroelectrolítica y restauración de la barrera intestinal [27]. En terneros de crianza artificial (guachera) que presentan cuadros entéricos, la detección precoz por parte del guachero mediante la observación de variaciones en la consistencia de las deyecciones ("cambio de volteo") permite iniciar la intervención antes de la manifestación de diarreas hemorrágicas y bacteriemia [17].

El manejo médico de la diarrea secundaria a la inmunosupresión por DVB requiere un plan tridimensional:
La presencia endémica del virus DVB en hatos lecheros no controlados genera un impacto económico devastador. La tasa de concepción al primer servicio puede sufrir caídas drásticas de un 50% en comparación con los valores de referencia invernales o de rodeos libres [13]. Las perdidas se consolidan por:
El control efectivo y la erradicación del virus de la Diarrea Viral Bovina se sustentan en tres pilares interdependientes: bioseguridad estricta, identificación y eliminación sistemática de bovinos PI, y la inmunización activa del hato mediante planes de vacunación adaptados epidemiológicamente [8]. La inmunización aislada, sin el descarte de los reservorios PI, resulta ineficaz para contener las pérdidas reproductivas [31].

El objetivo primordial de las vacunas contra la DVB es prevenir la viremia en la hembra gestante para evitar la infección transplacentaria y el nacimiento de terneros PI [12]. Se emplean dos tipos de vacunas:
El protocolo estándar de vacunación reproductiva establece la aplicación de la primera dosis a los 60 días pre-servicio y la segunda dosis (refuerzo) a los 35 o 30 días antes de la inseminación o entrada a toro, asegurando títulos de anticuerpos neutralizantes elevados durante la ventana vulnerable de la gestación (días 40 a 120) [19].
"La vacunación no es efectiva en animales PI de DVB, ya que estos son inmunotolerantes y no seroconvierten. La estrategia central debe ser siempre eliminar la fuente de infección." — Julio Paredes Muñoz, Médico Veterinario [31]
Para garantizar el éxito de un plan sanitario contra la Diarrea Viral Bovina, el establecimiento lechero debe ejecutar de forma disciplinada la siguiente matriz de control:
| Etapa / PCC | Punto Crítico de Control | Parámetro Metrológico / Umbral Operativo | Acción Correctiva / Protocolo Preventivo | Referencia |
|---|---|---|---|---|
| PCC 1 | Tache o descarte de Terneros PI | Seroprevalencia de Ag-ELISA = 0% | Eliminación inmediata del hato de todo ternero confirmadamente positivo a antígeno viral | [14] |
| PCC 2 | Monitoreo en Tanque de Leche | RT-PCR en leche colectiva Negativa | Muestreo bimensual de tanque; si resulta positivo, realizar sangrado por rodeos para aislar PI | [10] |
| PCC 3 | Vacunación Pre-Servicio | Cobertura vacunal > 98% de vacas/vaquillonas | Aplicación de 2 dosis a los 60 y 30 días pre-servicio con vacunas multivalentes | [19] |
| PCC 4 | Control de Reposición Externa | Cuarentena de 30 días + Ag-ELISA negativo | Prohibir el ingreso de animales sin certificado libre de PI y prueba individual negativa | [11] |
| PCC 5 | Bioseguridad en Semen e IA | Toros donantes libres de VDVB (PCR -) | Utilizar exclusivamente semen de centros de inseminación certificados oficialmente | [11] |
| PCC 6 | Calostrado Seguro | Calostro de vacas seropositivas y Ag (-) | Prohibir el uso de calostro de vacas PI o de origen desconocido en la crianza | [22] |
| PCC 7 | Desinfección de Instrumental | Dilución de Hipoclorito al 0.5% u amonio | Cambiar agujas entre animales y desinfectar mangas de palpación e instrumental de parto | [8] |
| PCC 8 | Control de Vaquillonas Centinela | Títulos serológicos Ac-ELISA estables | Evaluación serológica en vaquillonas de 6 a 12 meses para verificar ausencia de circulación | [28] |
| PCC 9 | Manejo Sanitario en Guachera | Distancia mínima entre jaulas > 1.5 m | Rotación de terreno y limpieza estricta de baldes/utensilios para cortar vía fómitica | [26] |
| PCC 10 | Diagnóstico de Abortos y Fetos | Estudio histopatológico y PCR del 100% | Envío de feto (abomaso, pulmón, bazo) y suero materno al laboratorio de diagnóstico | [21] |
Q: ¿Cómo se contagia la diarrea viral bovina? A: La DVB se contagia por contacto directo con secreciones de animales infectados o ingestión de calostro contaminado, y por vía vertical transplacentaria de la madre al feto durante la gestación [11].
Q: ¿Cuál es el umbral actualizado del Índice Temperatura-Humedad (ITH) para vacas lecheras de alta producción? A: Se debe considerar un umbral de ITH de 68 para vacas lecheras de alta producción para identificar tempranamente el estrés calórico y aplicar estrategias de manejo y mitigación de manera más efectiva, basándose en los tra.
Q: ¿Por qué se recomienda el uso de butiratos en terneros de lechería pre-destete? A: La suplementación con butiratos en terneros de lechería ayuda a reducir los trastornos gastrointestinales, permitiendo un mejor crecimiento y una adaptación más sana del intestino a la comida sólida.
Q: ¿Cómo influye la suplementación con butirato en el peso corporal de terneros pre-rumiantes? A: Suplementar la dieta de terneros pre-rumiantes con butirato para mejorar el peso corporal y el desarrollo general, preparando mejor al animal para la vida productiva.
Q: ¿Cómo influyen los butiratos en el crecimiento y la salud intestinal de terneros pre-destete? A: La suplementación con butirato ayuda a mejorar el desarrollo de las papilas ruminales, disminuye la permeabilidad intestinal y regula la microbiota, preparando al ternero para la comida sólida.
Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:
Jorge Ghiano: Nuevo Umbral ITH para Vacas Lecheras de Alta Producción
Abdelhacib Kihal: Butiratos en Terneros Pre-Destete: Reducción de Trastornos GI
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David Requena, Ana Luz Chumbe Mendoza, Michael Torres, Ofelia Alzamora Pinao, Manuel Ramirez, Hugo Valdivia-Olarte, Andres Hazaet Gutierrez, Ray William Izquierdo Lara, Luis Saravia, Milagros Zavaleta Apestegui, Luis Alberto Tataje Lavanda, Iván Best Cuba, Manolo Fernandez S., Eliana Icochea, Mirko Zimic y Manolo Fernandez Diaz.: Genoma de A. paragallinarum: Diagnóstico y Vacunas
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Cruz M.S.1, Scioli M.V.1, Morrell E.L.1, Lázaro F.1, Sosa E.1,2, García O.E.1, Mujica A.I.1, Casamayouret N.1, Cantón G.1, Louge Uriarte E.L.1 y Fiorentino M.A.1,3: VDVB y Septicemia por M. haemolytica en Terneros
J. Margueritte, N. Mattion y J. Blackhall (Biogénesis), F. Fernández, V. Parreño y A. Vagnozzi (INTA Balcarce), A. Odeón (INTA CICV) y G. Combessies (Laboratorio Azul), Argentina: Metodología de Muestreo para Diagnóstico de DNT en Terneros
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