Plan de Vacunación en Aves de Corral: Métodos, Vías de Administración y Esquemas Sanitarios
El plan de vacunación en aves de corral es un protocolo inmunológico programado para inducir inmunidad activa humoral y celular frente a patógenos virales y bacterianos. Se implementa mediante inmunización in ovo, parenterales y masivas, manteniendo umbrales de viabilidad de 10^3.5 EID50 y cadenas de frío de 2°C a 8°C, lo que previene la inmunosupresión y optimiza el desempeño zootécnico [1].
- Desafío Técnico y Causa Primaria: El plan de vacunación en aves de corral previene la inmunosupresión y fallos sanitarios causados por rotavirus, Birnavirus, Herpesvirus y paramixovirus.
- Impacto Cuantitativo: Reducción de la mortalidad del 18.5% al 1.2%, recuperación de 4.2 a 6.8 puntos en el índice de conversión alimentaria y disminución del 35% en decomisos de canal.
- Protocolo de Intervención Verificado: Inmunización in ovo al día 18.5 de incubación (0.05 mL/embrión) o parenteral día 1 con biológicos recombinantes HVT y emulsiones inactivadas oleosas.
Esquema de Vacunación en Aves de Postura y Engorde
El diseño de un esquema de vacunación en aves de corral debe estructurarse según el perfil epidemiológico regional, la longevidad del lote y la presión infecciosa del entorno productivo. La sincronización precisa entre la disminución de anticuerpos maternos y la inoculación de biológicos asegura una respuesta inmunitaria óptima sin interferencias serológicas [1].
Programa Inmunológico para Pollos de Engorde
En líneas de carne comerciales (Gallus gallus domesticus), la velocidad de crecimiento requiere inmunización temprana y masiva. El protocolo inicia en la planta de incubación mediante vacunación in ovo o al día uno de edad (recién nacidos), aplicando vacunas recombinantes en vector HVT (Herpesvirus de Pavo) para proteger contra la Enfermedad de Marek, Gumboro (IBD) y Laringotraqueítis Infecciosa (ILT) [35].
Esta estrategia inicial se complementa con la aplicación de vacunas vivas atenuadas por aspersión de gota gruesa contra la Bronquitis Infecciosa Aviar (BIA, cepa Massachusetts) y el virus de Newcastle (NDV, cepa B1 o LaSota) en las cajas de transporte [29]. En zonas con alta endemicidad, se administra una revacunación entérica o respiratoria en campo entre los días 10 y 14 de vida para consolidar la inmunidad de las mucosas [32].
"La aplicación de biológicos recombinantes en la planta de incubación establece una protección homogénea y precoz, minimizando el estrés en granja y protegiendo el sistema inmunitario del pollito antes de su exposición a patógenos de campo." — Manolo Fernandez Diaz, FARVET [29]
Programa Sanitario para Ponedoras Comerciales y Reproductoras
Las aves de larga vida (ponedoras de huevo comercial y reproductoras de engorde) requieren un programa vacunativo extendido durante la fase de recría (semanas 1 a 18) para garantizar altos títulos de anticuerpos que perduren durante todo el ciclo de postura (hasta la semana 90-100) [31].
El esquema para ponedoras incluye inmunizaciones primarias con virus vivos y refuerzos sistemáticos con vacunas inactivadas multivalentes emulsionadas en aceite mineral (frente a Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Símptoma de Caída del Huevo - EDS'76, y Coriza Avícola causada por Avibacterium paragallinarum) [18]. La administración de estas bacterinas y vacunas muertas se realiza por vía parenteral entre las semanas 12 y 16, logrando una transferencia inmunitaria uniforme y la producción de anticuerpos maternos transmitidos a la yema del huevo en el caso de las reproductoras [18].
Esquema Inmunológico Especializado para Aves de Combate
Las aves de combate o gallos de pelea (Gallus gallus) presentan dinámicas de crianza individuales y periodos de vida prolongados en comparación con el pollo de engorde. Su plan de vacunación prioriza la prevención de la Enfermedad de Newcastle, Viruela Aviar (vía punción alar) y Coriza Avícola, aplicando esquemas individuales por inoculación parenteral u ocular. Se recomiendan esquemas de revacunación semestral o anual para Newcastle con vacunas emulsionadas inactivadas, asegurando niveles de anticuerpos circulantes superiores a Log2 6 mediante pruebas de Hemoaglutinación (HI) para soportar el estrés del transporte y el manejo intensivo.
| Punto Crítico de Control (PCC) | Etapa Sanitaria | Parámetro Operativo Evaluado | Umbral Crítico Mínimo | Impacto Zootécnico / Sanitario | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|---|
| PCC-1: Cadena de Frío | Almacenamiento | Temperatura de conservación | 2.0°C a 8.0°C | Evita la desnaturalización proteica y pérdida de título | [33] |
| PCC-2: Calidad de Agua | Preparación masiva | Cloro libre residual | 0.0 ppm | Previene la inactivación del virus vacunal vivo | [28] |
| PCC-3: Presión de Aspersión | Incubadora | Tamaño de gota por spray | 100 a 150 µm | Garantiza el depósito en la mucosa ocular y nasal | [29] |
| PCC-4: Posición In Ovo | Día 18.5 embrionario | Sitio de inoculación exacta | Amnios o Embrión | Reduce la mortalidad embrionaria del 4.5% al 0.3% | [3] |
| PCC-5: Calibración de Aguja | Inyección Subcutánea | Ángulo de inserción y longitud | 45° en tercio medio del cuello | Previene granulomas y parálisis del plexo braquial | [27] |
| PCC-6: Neutralización | Agua de bebida | Concentración de leche descremada | 2.5 g/L de agua | Protege la cápside viral frente a sales metálicas | [28] |
| PCC-7: Desaireación | Líneas de agua | Tiempo de ayuno hídrico previo | 60 a 120 minutos | Garantiza el consumo total en menos de 120 minutos | [28] |
| PCC-8: Control de Bioseguridad | Vacunación alar | Esterilización de aguja doble | 1 sumersión por ave | Previene la transmisión mecánica de Viruela y Leucosis | [14] |
| PCC-9: Evaluación Posvacunal | Auditoría en campo | Porcentaje de lenguas azuleadas | Mayor al 95.0% del lote | Verifica la uniformidad del consumo de la dosis viva | [27] |
| PCC-10: Seroconversión | Monitoreo 21 días PV | Título de anticuerpos por ELISA | CV menor al 30.0% | Confirma la homogeneidad de la respuesta inmune | [27] |
Vías de Administración: Vacunación Ocular, Subcutánea e Intramuscular en Aves
La elección de la vía de administración determina el tipo de respuesta inmunológica generada, activando la inmunidad local de las mucosas o la respuesta humoral sistémica. Cada técnica exige precisión anatómica y calibración de equipos para evitar fallos de inmunización o reacciones tisulares adversas [27].
Inoculación Ocular y Nasal en Gota Directa
La vía ocular-nasal es el método individual de aplicación masiva más efectivo para vacunas vivas atenuadas contra patógenos respiratorios como Newcastle, Bronquitis Infecciosa y Laringotraqueítis [28]. Permite depositar la dosis exacta (habitualmente 0.03 mL a 0.05 mL por ave) directamente en la Glándula de Harder y el Tejido Linfoide Asociado a la Mucosa Nasal (NALT) [24].
Para asegurar la absorción, la gota debe permanecer en la superficie ocular hasta que el ave parpadee y degluta. El uso de colorantes oftálmicos de grado alimentario permite auditar visualmente el porcentaje de eficacia de aplicación en la parvada a los 30 minutos de completado el proceso [27].
Vacunación Subcutánea e Intramuscular Parenteral
La inoculación parenteral es la ruta obligatoria para la administración de vacunas inactivadas emulsionadas (oleosas o acuosas) y biológicos recombinantes [29].
- Vía Subcutánea (SC): Se efectúa en el tercio medio posterior del cuello, levantando el pliegue cutáneo en dirección opuesta a la cabeza para evitar la punción de la columna vertebral, la musculatura cervical o los vasos sanguíneos del cuello [27]. La dosis estándar oscila entre 0.2 mL y 0.5 mL por ave.
- Vía Intramuscular (IM): Se aplica en la masa muscular del pechuga (Pectoralis major) o en los músculos del muslo. La aguja debe ingresarse con un ángulo de 45° con respecto a la quilla, utilizando agujas de calibre 18G a 20G y de 1/4 a 1/2 pulgada de longitud según la edad del ave [27].
| Vía de Administración | Tipo de Biológico | Volumen por Ave | Tejido Blanco Primario | Indicación Clínica Principal | Referencia |
|---|---|---|---|---|---|
| Ocular / Nasal | Cepa viva atenuada | 0.03 a 0.05 mL | Glándula de Harder y NALT | Bronquitis, Newcastle, Laringotraqueítis | [28] |
| Subcutánea (SC) | Recombinante / Emulsionada | 0.20 a 0.50 mL | Tejido celular subcutáneo cervical | Marek, Gumboro, Salmonella, Newcastle | [29] |
| Intramuscular (IM) | Inactivada / Bacterina | 0.25 a 0.50 mL | Músculo Pectoralis major | Coriza Avícola, Influenza, EDS'76 | [18] |
| Punción Alar | Cepa viva adaptada | 0.01 mL (doble aguja) | Membrana del pliegue alar (Patagium) | Viruela Aviar, Encefalomielitis Aviar | [14] |
Vacunación en Agua de Bebida y Aplicación Vía Oral en Avicultura
La administración en el agua de bebida representa la técnica masiva más económica para aplicar vacunas vivas atenuadas en aves alojadas en piso o jaula. Sin embargo, su éxito inmunológico depende de la neutralización previa de agentes virucidas presentes en la red hídrica [28].
Fisicoquímica del Agua y Neutralización de Cloro
El agua empleada para la reconstitución de biológicos debe estar exenta de desinfectantes químicos (cloro libres mayor a 0.0 ppm, yodo, peróxidos) y presentar un pH equilibrado entre 6.5 y 7.5 [28]. La presencia de metales pesados o altos niveles de dureza inactiva las partículas virales en minutos.
Para neutralizar el cloro y proteger la envoltura viral, se debe adicionar leche en polvo descremada a razón de 2.5 gramos por litro de agua (0.25%) o estabilizadores comerciales con indicador de coloración 20 minutos antes de solubilizar el liofilizado vacunal [28].
Estimulación de Inmunidad Mucosa Intestinal
El tracto gastrointestinal de las aves alberga el Tejido Linfoide Asociado al Intestino (GALT), constituido por las placas de Peyer, las amígdalas cecales y el divertículo de Meckel [23]. La ingestión oral de vacunas vivas (como las cepas de Gumboro, Newcastle entérico o Salmonella) estimula directamente la secreción de Inmunoglobulina A (IgA secretora) en las mucosas [24].
"El intestino es el órgano inmunitario más extenso de las aves; la interacción de los biológicos orales con las placas de Peyer genera una vigilancia inmunitaria mucosa capaz de neutralizar patógenos entéricos antes de su translocación sistémica." — Dr. Luiz Felipe Caron, Especialista en Inmunología Aviar [23]
Tecnología de Vacunación In Ovo y Automatización en Planta de Incubación
La vacunación in ovo ha revolucionado la sanidad avícola industrial al transferir el proceso de inmunización desde la granja hasta las plantas de incubación. Esta tecnología automatizada inyecta el biológico directamente en el embrión de pollo durante la transferencia de las incubadoras a las nacedoras [3].
Inoculación Embrionaria a los 18 Días de Incubación
La ventana óptima para la aplicación in ovo se sitúa entre los 18.0 y 19.0 días de incubación (432 a 456 horas) [3]. En este estadio, la aguja atraviesa la cáscara y la cámara de aire, depositando una dosis precisa de 0.05 mL en la cavidad amniótica o en el tejido subcutáneo del embrión.
La inoculación precoz en el amnios permite que el embrión degluta el antígeno antes de picar la cáscara, procesando el estímulo inmunológico en su tracto digestivo y respiratorio, lo que acelera el desarrollo de la respuesta inmune adaptativa tras la eclosión [3].
| Secuencia del Proceso | Parámetro / Condición |
|---|---|
| Fase 1 | Punción de Cáscara |
| Fase 2 | Paso por Cámara de Aire |
| Fase 3 | Inyección en Amnios / Embrión |
| Fase 4 | Deglución Embrionaria |
Sistemas Automatizados ExaHy Novo y C.H.I.C.K. Program
Los sistemas de inyección automatizados de alta velocidad, como las plataformas ExaHy Novo, procesan más de 40,000 huevos por hora con un índice de precisión superior al 99.5% [3]. Estas tecnologías integran sensores de desinfección continua de agujas mediante calor o biocidas entre cada inyección, eliminando la contaminación cruzada bacteriana (Pseudomonas, Aspergillus) [14].
La auditoría de la vacunación en incubadora se complementa con programas estandarizados de control de calidad como el C.H.I.C.K. Program de CEVA, los cuales evalúan la viabilidad del biológico, la calibración electromecánica, el mantenimiento de la cadena de frío en planta y la capacitación del personal operario [3], [17].
Tipos de Vacunas Aviares: Inactivadas, Atenuadas y Vectorizadas
La inmunología aviar moderna emplea diversas plataformas biotecnológicas para inducir protección duradera contra virus, bacterias y parásitos. La selección del tipo de vacuna condiciona la velocidad de protección, la persistencia de títulos y la seguridad del lote [20].
Vacunas Vivas Atenuadas y Muestras de Virus Completo
Las vacunas vivas están compuestas por cepas virales o bacterianas modificadas por pasajes en cultivos celulares o huevos embrionados para reducir su virulencia manteniendo su inmunogenicidad [28]. Proporcionan una replicación activa dentro del huésped, induciendo inmunidad celular (Linfocitos T CD8+) y humoral (IgY e IgA) de rápida aparición (3 a 5 días post-aplicación) [20]. Su inconveniente reside en la posibilidad de generar reacciones postvacunales respiratorias si la ventilación de la nave es deficiente [14].
Vacunas Emulsionadas Inactivadas con Adyuvantes Oleosos
Las vacunas inactivadas contienen patógenos muertos mediante procesos químicos (formaldehído, beta-propiolactona) combinados con adyuvantes oleosos (emulsiones agua en aceite - W/O) [12]. Al no haber replicación, requieren ser inoculadas por vía parenteral. El adyuvante oleoso actúa como un depósito de liberación lenta, estimulando persistentemente el sistema inmunitario sistémico y generando títulos de anticuerpos séricos elevados y uniformes durante periodos prolongados [12].
Biológicos Vectorizados Recombinantes y Expresión Baculovirus
Las vacunas recombinantes utilizan vectores virales no patógenos o atenuados, principalmente el Herpesvirus de Pavo (HVT) o el Virus de la Viruela Aviar (FVP), en los cuales se inserta el gen inmunogénico del patógeno objetivo (por ejemplo, el gen VP2 de Gumboro, el gen F de Newcastle o la hemaglutinina de Influenza) [35].
Adicionalmente, la tecnología de expresión por Baculovirus utiliza sistemas baculovirales en cultivos celulares de insectos para sintetizar partículas similares a virus (VLPs) de alta pureza [20]. Estas partículas exponen los antígenos con un alto grado de inmunogenicidad, activando los macrófagos y las células presentadoras de antígeno mediante el complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) sin riesgo de reversión a la virulencia [20].
| Plataforma Tecnológica | Vector / Adyuvante | Mecanismo Inmune Primario | Duración de Inmunidad | Reacción Posvacunal | Cita Técnica |
|---|---|---|---|---|---|
| Viva Atenuada | Ninguno (Liofilizado) | Inmunidad local mucosa (IgA) + Celular | Corta a Media (4 a 8 semanas) | Leve a Moderada | [28] |
| Inactivada Oleosa | Aceite mineral (W/O) | Inmunidad humoral sistémica (IgY) | Larga (Toda la fase de postura) | Nula (Granuloma localizado) | [12] |
| Recombinante HVT | Herpesvirus de Pavo | Inmunidad celular + Humoral específica | De por vida en el individuo | Nula | [35] |
| Complejo Inmune | Anticuerpos específicos | Activación en fase de depuración | Toda la vida del pollo de engorde | Nula | [8] |
| Expresión Baculovirus | Partícula tipo viral (VLP) | Presentación optimizada en MHC-II | Larga y de alta especificidad | Nula | [20] |
Manejo de la Cadena de Frío, Inmunosupresión y Reacciones Posvacunales
La efectividad técnica de un programa de inmunización en aves de corral puede anularse por fallos en el mantenimiento de la cadena de frío, la presencia de virus inmunosupresores en la granja o una severa reacción tisular secundaria [14].
Monitoreo Térmico de 2°C a 8°C y Nitrógeno Líquido (-196°C)
Las vacunas liofilizadas y inactivadas convencionales exigen conservación estricta entre 2.0°C y 8.0°C desde su fabricación hasta su dilución [33]. Congelar una vacuna inactivada emulsionada rompe la emulsión oleosa, provocando la separación de fases y la pérdida total de su capacidad adyuvante [33].
Por el contrario, las vacunas congeladas asociadas a células (como Marek recombinante HVT y ciertas vacunas de Gumboro) deben ser mantenidas en termos de nitrógeno líquido en fase líquida o de vapor a -196°C [8]. La reconstitución de estas vacunas requiere un baño de María a 37°C con agitación suave y un tiempo de aplicación no mayor a 45 minutos tras la descongelación para preservar la viabilidad de las células del linfoblasto aviar [8].
Control de Agentes Inmunosupresores: Gumboro, Marek y Adenovirus FAdV-4
La presencia de virus inmunosupresores compromete la respuesta de la bolsa de Fabricio, el timo y el bazo, impidiendo que el ave responda adecuadamente a otras vacunas como Newcastle o Bronquitis Infecciosa [7], [19].
- Enfermedad de Gumboro (IBD): Las cepas hipervirulentas de Gumboro destruyen los linfocitos B en la bolsa de Fabricio. El uso de vacunas de complejo inmune congeladas (NextImmune / Cevac Transmune) sobrepasa la interferencia de los anticuerpos maternos, colonizando la bolsa en la ventana adecuada y previniendo la inmunosupresión [8], [9].
- Adenovirus Aviar (FAdV-4): Causa la Hepatitis por Cuerpos de Inclusión y el Síndrome de Hidropericardio. El virus del genotipo FAdV-4 induce una marcada inmunosupresión celular [19]. Su control requiere el uso de vacunas inactivadas de amplio espectro en las reproductoras y una gestión rigurosa de la cama reciclada, dado que el adenovirus replica intensamente en el material orgánico [18], [19].
"El virus del adenovirus aviar FAdV-4 genera un impacto inmunosupresor severo; la desinfección y la eliminación de la cama reciclada son pasos obligatorios para romper su ciclo de replicación en la granja." — John Jairo Salazar, MVZ. MSc [19]
Evaluación Postvacunal y Monitoreo Serológico ELISA
El control de calidad postvacunal incluye el sacrificio sanitario de un muestreo representativo de aves (0.1% del lote) a los 3 y 7 días posteriores a la vacunación para examinar la anatomopatología del punto de inyección, la presencia de aerosaculitis o el estado del tracto respiratorio [27].
Asimismo, el monitoreo serológico sistemático mediante la técnica de ELISA (Enzyme-Linked Immunosorbent Assay) o la prueba de Inmunoperoxidasa permite calcular el Título Medio de Anticuerpos y el Coeficiente de Variación (% CV) [27]. Un Coeficiente de Variación menor al 30% en los títulos séricos indica una aplicación uniforme en la parvada, mientras que valores superiores al 50% revelan fallos operativos en la dosificación o problemas en la técnica de vacunación [27].
Preguntas Frecuentes (FAQ)
Q: ¿Qué vacunas se le ponen a las aves? A: A las aves se les administran vacunas contra Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Gumboro, Marek, Viruela Aviar, Coriza Avícola, Coccidiosis, Influenza Aviar y Salmonelosis. La combinación específica depende de la línea genética, longevidad del lote y situación epidemiológica local [18].
Q: ¿Cuáles son los tipos de vacunas para aves? A: Los tipos principales son vacunas vivas atenuadas, inactivadas emulsionadas en aceite, vectorizadas recombinantes (vector HVT o viruela) y vacunas de complejo inmune o partículas tipo viral desarrolladas por tecnología de baculovirus [20].
Q: ¿Cuál es el esquema de vacunación para las aves de combate? A: El esquema incluye vacunación al nacimiento contra Marek, inmunización ocular contra Newcastle y Bronquitis al día 7-14, punción alar contra Viruela Aviar a las 4-6 semanas y refuerzos de Newcastle y Coriza Avícola con vacunas inactivadas cada 6 meses [14].
Q: ¿Qué vacunas se les administran a las aves ponedoras? A: Las ponedoras reciben un esquema completo que abarca Marek, Gumboro, Bronquitis Infecciosa (múltiples serotipos), Newcastle, Encefalomielitis Aviar, Viruela, Coriza Avícola, Mycoplasma gallisepticum, Salmonella y Caída del Huevo (EDS'76) mediante combinación de cepas vivas e inactivadas oleosas [31].
Q: ¿Cómo se previene la inactivación del virus vacunal en la red de agua? A: Se debe asegurar un agua libre de cloro y desinfectantes (0.0 ppm), ajustando el pH entre 6.5 y 7.5 y adicionando 2.5 g/L de leche descremada en polvo 20 minutos antes de solubilizar la vacuna vivo-atenuada [28].
Fuentes y Referencias Técnicas
Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:
-
Gonzalo Moreno: Desafíos y oportunidades de la avicultura colombiana
-
Gonzalo Moreno: Congreso FENAVI: Epicentro avícola de Sudamérica
-
Gonzalo Moreno: CEVA y FENAVI: Impulso tecnológico en avicultura
-
Carlos Zambrano: Desafíos sanitarios avícolas en Ecuador
-
Carlos Zambrano: Nexmune: Solución para Gumboro en Ecuador
-
Carlos Zambrano: Nexmune: Mejora de conversión y sanidad
-
Leonardo Alvarado: Impacto de Gumboro en la inmunidad aviar
-
Leonardo Alvarado: NextImmune: Vacuna congelada de complejo inmune
-
Leonardo Alvarado: Cobertura uniforme con NextImmune
-
Leonardo Alvarado: NextImmune y desempeño zootécnico
-
Marco Cisneros Tamayo: Implementación de biológicos aviares en Ecuador
-
Rosa Zarza: Vacuna Inactivada Salmonella Gallinarum: Control Avícola
-
Rosa Zarza: Apoyo Técnico en Vacunación Avícola en Paraguay
-
Rosario Granados: Desafíos Inmunosupresores en Pollos de Engorde
-
Rosario Granados: Desafíos Respiratorios en Aves de Larga Vida
-
Rosario Granados: Bioseguridad como Estrategia Sanitaria Clave
-
Rosario Granados: Respaldo Tecnológico Global de CEVA
-
Cristian Albrecht: Vacunación contra Adenovirus Aviar en Reproductoras
-
John Jairo Salazar. MVZ. MSc: Adenovirus Aviar FAdV-4: Inmunosupresión y Prevención
-
Sandra Morales: Mecanismo de Vacunas Baculovirus en Avicultura
-
Sandra Morales: Baculovirus como vehículo de antígenos en vacunas aviares
-
Carlos Bueno: Bioinformática y Redes Neuronales en Vacunas Aviares
-
Dr. Luiz Felipe Caron: Intestino: Órgano Inmune Clave en Aves
-
Sherry Layton: Importancia de la Inmunidad Mucosa en Aves
-
Manolo Fernandez D. MV, MSC, PhD h.c.: Brecha antigénica en vacunas de Newcastle
-
Manolo Fernandez Diaz: Estrategias de Vacunación H5N1 en Avicultura
-
Diego Martín Delgado: Control Post-Vacunación en Aves
-
Jaime Sarabia Fragoso: Puntos Clave para Vacunación Aviar Exitosa
-
Manolo Fernandez Diaz: Esquema de Vacunación FARVET para Pollos de Engorde
-
Miguel Angel Casillas: Protocolo de Vacunación Pulback Ecoli en Aves
-
Fernando Vargas: Gestión Racional Vacunación Aves Postura
-
Camilo Andrés Medina Santos: Programa de Vacunación Newcastle y LT
-
Dr. Arturo Rojas: Manejo Técnico de Vacunas Avícolas
-
Fernando Vargas: Vacunación Aviar: La Importancia del Momento Correcto
-
Fabián Quintero: Aplicación de vacuna recombinante al día de edad
La fabricación de alimentos desde el punto de vista del nutricionista
Efectos de dietas contaminadas con deoxinivalenol sobre los indicadores productivos, morfológicos y fisiológicos en pollos de engorde
La fabricación de alimentos desde el punto de vista del nutricionista
