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Guía Completa de Patologías Porcinas: Reconocimiento, Diagnóstico y Manejo Sanitario en Granja

El diagnóstico de patologías porcinas es el protocolo sistemático de evaluación clínica, histopatológica y molecular para identificar agentes infecciosos y no infecciosos en granja. Su prevención y control se implementan mediante bioseguridad estricta e inmunización, manteniendo umbrales de ventilación superior a 0,3 m/s y micotoxinas bajo 0,5 ppm, lo que previene cuadros respiratorios y optimiza la ganancia media diaria [1].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: La patología porcina exige un diagnóstico integral frente a agentes del Complejo Respiratorio y enteropatías en porcinos.
  • Impacto Cuantitativo: Pérdidas de $1.200 millones anuales por PRRS, caídas del 15% en ganancia diaria de peso y decomisos masivos por pleuritis.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Necropsia sistemática, histopatología multifocal, monitoreo por PCR, desinfección de transporte y vacunación vectorizada.

Complejo Respiratorio Porcino: Prevención y Control

El Complejo Respiratorio Infeccioso Porcino (CRIP) representa la causa principal de pérdidas productivas en granjas de engorde, reduciendo la ganancia diaria de peso hasta en un 18% [1]. La interacción sinérgica entre patógenos virales como el virus del Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino (PRRSV) y la Influenza Porcina (SIV), junto con coinfecciones bacterianas por Mycoplasma hyopneumoniae, Actinobacillus pleuropneumoniae y Streptococcus suis, altera de forma severa el aparato mucociliar y destruye los macrófagos alveolares [6].

El impacto financiero del PRRSV en la porcicultura global ha alcanzado niveles críticos debido a la continua evolución genómica del virus y la emergencia de cepas hipervirulentas [1].

Momento Clave: «Se abordó la inmunidad y virulencia del PRRS para su prevención y control. Para la influenza porcina, su capacidad de mutación exige diseños y programas de inmunización correctos.»
Disertante: Dr. David Sarfati Mizrahi (Director comercial de Avimex)Ver video completo »

"En Estados Unidos, el daño económico causado por el PRRS pasó de 600 millones de dólares anuales a1.200 millones. Es un problema que no está resuelto y exige comprender la evolución viral y la inmunidad protectora." — Dr. David Sarfati Mizrahi, Avimex [1]

El diagnóstico morfológico de las afecciones pulmonares en planta de faena y necropsia permite clasificar las patologías según el patrón microscópico predominante [7]. La caracterización histopatológica del tejido pulmonar afectado orienta de manera precisa hacia el agente causal primario, facilitando la toma de decisiones terapéuticas y profilácticas [6].

Patrones de lesión pulmonar en cerdos
Fig. 1: Evidencia Técnica — Patrones de lesión pulmonar en cerdos (María Inés Lozada)
Patrón Lesional MicroscópicoCaracterísticas Histológicas PrincipalesAgente Etiológico Primario AsociadoImpacto Zootécnico DirectoCita Técnica
Bronconeumonía SupurativaConsolidación cráneo-ventral, neutrófilos en luz alveolarMycoplasma hyopneumoniae, Pasteurella multocidaReducción del 12% en conversión alimenticia[7]
Neumonía IntersticialEngrosamiento de septos alveolares, infiltrado mononucllearVirus PRRS, PCV2 (Circovirus porcino tipo 2)Mapeo de mortandad superior al 8% en destete[6]
Bronquiolitis NecróticaNecrosis del epitelio bronquial e hiperplasia epitelialVirus de Influenza Porcina (SIV)Picos agudos de tos y fiebre en el 100% del lote[8]
Pleuritis FibrinosaExudado fibrinoso denso en pleura visceral y parietalActinobacillus pleuropneumoniae, Glaesserella parasuisDecomiso de canal en matadero y descarte[5]

La evaluación cuantificable de la pleuritis en matadero, mediante metodologías como BIOPORK, permite correlacionar el grado de consolidación pulmonar con mermas de peso directo en la canal [5]. El control efectivo requiere combinar ventilación automatizada, densidad controlada y protocolos de vacunación vectorizada [10].


Patologías Digestivas Porcinas: Brachyspira y Lawsonia

Las enteropatías porcinas en las fases de recría y engorde generan mermas productivas severas asociadas a deshidratación, falta de uniformidad de lotes y mermas en la eficiencia digestiva [16]. El diagnóstico diferencial entre la ileítis porcina causada por Lawsonia intracellularis, la disentería porcina provocada por Brachyspira hyodysenteriae y las infecciones por Salmonella enterica exige un abordaje multiparamétrico [27].

Agente etiológico principal en CRIP porcino
Fig. 2: Evidencia Técnica — Agente etiológico principal en CRIP porcino (María Inés Lozada)

"La combinación sistemática de histopatología, inmunohistoquímica y PCR múltiple a partir de muestras de mucosa intestinal fresca es indispensable para diferenciar con precisión Lawsonia intracellularis, Brachyspira y Salmonella." — Estefania Perez, Investigadora Sanitaria [27]

Lawsonia intracellularis es un patógeno intracelular obligado que induce hiperplasia de las criptas intestinales en el íleon terminal, engrosando la mucosa y limitando la absorción de nutrientes [27]. Por su parte, Brachyspira hyodysenteriae coloniza el intestino grueso, causando una tiflitis y colitis mucohemorrágica grave con necrosis superficial [17].

Parámetro DiagnósticoIleítis (Lawsonia intracellularis)Disentería Porcina (Brachyspira hyodysenteriae)Salmonelosis (Salmonella Typhimurium)
Segmento Intestinal DianaÍleon, yeyuno terminal y ciego proximalColon descendente y ciegoÍleon distál, ciego y colon
Lesión MacroscópicaEngrosamiento 'en manguera' de la mucosaMucosa cubierta de moco, fibrinólisis y sangreÚlceras 'en botón' y necrosis difusa
Hallazgo HistológicoHiperplasia de enterocitos en criptasTiflitis y colitis necrotizante fibrinosaEnteritis ulcerativa y vasculitis
Método ConfirmatorioInmunohistoquímica / PCR cuantitativaPCR múltiple / Aislamiento anaeróbicoCultivo microbiológico / PCR
Cita Técnica[27][17][33]

El uso de aditivos nutricionales como postbióticos, ácidos orgánicos de cadena corta y aceites esenciales integrados en la dieta modula la microbiota del ciego y reduce la colonización de Salmonella y Brachyspira, minimizando la dependencia de antibióticos promotores de crecimiento [33].


Enfermedades de Control Oficial en Porcinos: Peste Porcina Africana

Las patologías de control oficial y notificación obligatoria representan la amenaza bioseguridad más crítica para la porcicultura mundial debido a su alta letalidad y barreras comerciales inmediatas. La Peste Porcina Africana (PPA), provocada por un virus ADN bicatenario de la familia Asfarviridae, y la Peste Porcina Clásica (PPC), provocada por un Pestivirus, causan cuadros hemorrágicos agudos con tasas de mortalidad que rozan el 100% en piaras no expuestas [22].

La vigilancia epidemiológica activa exige la rápida identificación de síndromes hemorrágicos multisistémicos en granja [22]. La diferenciación clínica entre PPA, PPC, Erisipela porcina (Erysipelothrix rhusiopathiae) y Salmonelosis septicémica es imposible únicamente por signos de campo, requiriendo la intervención inmediata de laboratorios oficiales [31].

Enfermedad de Control OficialAgente EtiológicoSignos Clínicos PatognomónicosLesiones de Necropsia ClaveDiagnóstico OficialReferencia
Peste Porcina Africana (PPA)Virus PPA (Asfarviridae)Fiebre alta (>41 °C), cianosis cutánea, ataxiaEsplenomegalia severa, ganglios hemorrágicosReal-Time PCR / ELISA[22]
Peste Porcina Clásica (PPC)Virus PPC (Flaviviridae)Fiebre, diarrea, convulsiones, petequiasInfartos esplénicos marcadamente periféricosRT-PCR / Aislamiento[22]
Fiebre AftosaVirus Fiebre Aftosa (Aphthovirus)Vesículas en hocico, rodetes coronarios, cojeraErosiones epiteliales y miocarditis en lechonesRT-PCR / ELISA de captación[31]
Enfermedad de AujeszkyAlfaherpesvirus porcino 1Cuadros nerviosos en lechones, abortosNecrosis tonsilar y neumonía intersticialPCR / Serología ELISA[31]

Ante cualquier sospecha de patología de control oficial, la administración del establecimiento debe activar el plan de contingencia: aislamiento total de la granja, interrupción inmediata del movimiento de animales y notificación prioritaria al servicio sanitario estatal (como SENASA, SAG u organismos correspondientes) [31].


Enfermedades que Afectan Principalmente a los Lechones en Maternidad

La etapa de maternidad representa la fase más vulnerable del ciclo productivo porcino, concentrando pérdidas por diarrea neonatal y cuadros septicémicos [16]. Infecciones por Escherichia coli enterotoxigénica (ETEC), Cystoisospora suis (coccidiosis porcina), Rotavirus A y C, y Clostridium perfringens tipo C desencadenan procesos de deshidratación acelerada y atrofia de las vellosidades intestinales [13].

La coccidiosis porcina afecta habitualmente a lechones entre los 7 y 21 días de vida, caracterizándose por heces pastosas de color amarillo a cremoso que no responden al tratamiento con antibióticos convencionales [13]. Por otro lado, la infección por E. coli ETEC (cepas F4/K88, F18) provoca diarrea acuosa fulminante en las primeras 72 horas tras el parto due a la acción de enterotoxinas LT y ST [23].

"La caracterización genotípica mediante PCR para identificar factores de fimbria y genes de enterotoxinas es crucial en brotes de E. coli, permitiendo seleccionar autovacunas específicas para cerdas gestantes." — Dra. Norma Pereyra, Investigadora Veterinaria [23]

El síndrome de Gastroenteritis Transmisible (TGE) y la Diarrea Epidémica Porcina (PED), causados por Alphacoronavirus, inducen vómito, diarrea acuosa profusa y una atrofia celular masiva de los enterocitos en el intestino delgado [28].

Rol de la histopatología en CRIP porcino
Fig. 3: Evidencia Técnica — Rol de la histopatología en CRIP porcino (María Inés Lozada)

El muestreo sistemático de segmentos de yeyuno e íleon fijados en formalina al 10% permite evaluar la relación altura de vellosidad/profundidad de cripta mediante inmunohistoquímica, confirmando el daño viral o parasitológico [29].


Necropsia Porcina y Toma de Muestras Diagnósticas

La necropsia veterinaria es la herramienta de diagnóstico primario más costo-efectiva en la granja porcina, siempre que se ejecute bajo un protocolo metódico [21]. La selección correcta del animal es determinante: se deben priorizar cerdos en la fase aguda de la sintomatología clínica, sacrificados de forma incruenta y sin antecedentes de tratamiento antibiótico parenteral prolongado [18].

Limitaciones de PCR en Porcicultura
Fig. 4: Evidencia Técnica — Limitaciones de PCR en Porcicultura (Nathalia María del Pilar Correa Valencia)

El procedimiento sistemático inicia con la inspección externa de la piel, orificios naturales, pezuñas y articulaciones, pasando luego a la apertura de cavidades desde las áreas menos contaminadas (cavidad torácica) hacia las de mayor carga bacteriana (cavidad abdominal) [21].

  1. Aislamiento e inspección externa: Identificar eritemas, úlceras, edemas palpebrales o descargas nasales [30].
  2. Apertura de la cavidad torácica: Evaluar presencia de líquido pleural, adherencias de fibrina y colapso pulmonar [21].
  3. Evisceración y corte de órganos: Seccionar parénquima pulmonar, parénquima hepático, bazo y riñones [9].
  4. Toma de muestras histopatológicas: Seccionar bloques de tejido de 1 cm³ en la interfase entre la lesión y el tejido sano, conservados en formol amortiguado al 10% en proporción 1:10 [21].
  5. Recolecta para microbiología y PCR: Remitir fragmentos de órganos frescos en refrigeración (4 °C) procesados antes de 24 horas [19].

Las pruebas de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) proporcionan una sensibilidad analítica elevada, pero sus resultados deben interpretarse en combinación con la patología morfológica [4].

"Muestras mal conservadas, tomadas en estadios crónicos o congeladas repetidamente generan degradación del ARN/ADN viral, produciendo falsos negativos en PCR. La técnica molecular debe respaldar la clínica, no sustituirla." — Dra. Nathalia Correa Valencia, Especialista en Diagnóstico [4]


Efectos Patológicos por Micotoxinas y Zearalenona en Cerdos

Las micotoxinas representan un riesgo persistente en la nutrición porcina debido a sus efectos inmunosupresores, citotóxicos y alteradores del sistema endocrino [35]. La Zearalenona (ZEA), micotoxina estrogénica producida por hongos del género Fusarium, posee una estructura química análoga al 17β-estradiol, uniéndose competitivamente a los receptores estrogénicos en el aparato reproductor [3].

En cerdas primerizas prepúberes, la ingestión de dietas contaminadas con niveles de Zearalenona de tan solo 1 a 5 ppm induce un síndrome de hiperestrogenismo clínico caracterizado por tumefacción y eritema vulvar, prolapso rectal o vaginal e hipertrofia mamaria [3].

Zearalenona en cerdas primerizas: signos clínicos y dosis
Fig. 5: Evidencia Técnica — Zearalenona en cerdas primerizas: signos clínicos y dosis (Margarita Trujano)

Por otra parte, la exposición a Fumonisinas (FB1, FB2) altera la síntesis de esfingolípidos al inhibir la enzima esfinganina N-acetiltransferasa, provocando acumulación de esfinganina libre y desencadenando el Edema Pulmonar Porcino (PPE) con efusión pleural severa [14]. Las Aflatoxinas (AFB1) ejercen un efecto hepatotóxico directo, provocando ascitis amarillenta, palidez hepática y desuniformidad acusada en la camada [11], [32].

MicotoxinaHongo ProductorÓrgano BlancoSignos Clínicos y LesionesConcentración CríticaCita Técnica
ZearalenonaFusarium graminearumAparato reproductorEdema vulvar, pseudogestación, anestro> 1,0 ppm[3]
Fumonisina B1Fusarium verticillioidesPulmón y corazónEdema pulmonar, hidrotórax, disnea> 10,0 ppm[14]
Aflatoxina B1Aspergillus flavusHígadoHepatomegalia, ascitis, ictericia> 0,02 ppm[11]
Deoxinivalenol (DON)Fusarium culmorumSistema digestivoRechazo del alimento, vómitos, mermas> 0,9 ppm[35]

La adición continua de secuestrantes de micotoxinas de amplio espectro (aluminosilicatos modificados y pared celular de levaduras) en la planta de alimentos resulta esencial para mitigar los efectos patológicos [35].


Bioseguridad y Nutrición Funcional en Sanidad Porcina

La prevención de patologías porcinas se cimenta en la ejecución inflexible de barreras de bioseguridad externa e interna, reduciendo el riesgo de introducción de agentes patógenos a la granja [2]. El control del ingreso de personal externo, vehículos de transporte de alimento y proveedores de genética constituye el eslabón más vulnerable en la bioseguridad del sitio productivo [2].

Momento Clave: «La limpieza y desinfección de camiones era una tarea pendiente en nuestro medio, hoy es una cuestión que hemos discutido muchas horas para mejorar.»
Disertante: Javier Sarradell (Consultor Porcino)Ver video completo »

"Uno de los errores más comunes constatados en granjas porcinas es la falta de auditoría en el ingreso de personal de mantenimiento y sus herramientas, así como la deficiente limpieza y desinfección de camiones." — Javier Sarradell, Consultor Porcino [2]

La aplicación sistemática de los Puntos Críticos de Control (PCC) en la bioseguridad e higiene garantiza la protección sanitaria del hato porcino.

PCCFase / ProcesoRiesgo Sanitario IdentificadoParámetro Operativo de ControlCita Técnica
PCC-1Control de Ingreso de VehículosIntroducción de PRRSV y PEDV por transporteArco de desinfección a 35 bar y secado de 20 min[2]
PCC-2Ducha y Cambio de Ropa de PersonalVectorización humana de patógenos entéricosDucha obligatoria de 3 min y ropa exclusiva de sitio[2]
PCC-3Recepción de Reposición GenéticaBrotes epidémicos por pie de cría infectadoCuarentena estricta de 60 días con monitoreo serológico[2]
PCC-4Calidad del Agua de ConsumoContaminación por E. coli y SalmonellaCloración continua a 3,0 ppm de cloro libre residual[31]
PCC-5Control de Calidad de GranosIntoxicación por Zearalenona y DONAnálisis ELISA previo a descarga (ZEA < 0,2 ppm)[3]
PCC-6Limpieza de Salas de MaternidadTransmisión horizontal de Coccidiosis y RotavirusDetergente alcalino, agua a 80 °C y desinfectante peracético[13]
PCC-7Control de Plagas (Roedores/Moscas)Vectorización mecánica de BrachyspiraEstaciones de cebo auditadas semanalmente[27]
PCC-8Manejo de Cerdos EnfermosMantenimiento de focos infectivos en corralesMuestreo inmediato y aislamiento en enfermería[18]
PCC-9Proceso de Necropsia en GranjaDiseminación de agentes por cadavéricaZona de necropsias fuera del perímetro bioseguro[21]
PCC-10Destino de Mortalidad y CompostajeContaminación ambiental e hidrológicaComposteras cerradas con temperatura interior > 55 °C[31]

Complementariamente, la nutrición funcional basada en postbióticos y nucleótidos optimiza la arquitectura intestinal, incrementando la producción de mucinas y reforzando las uniones estrechas (tight junctions) del epitelio digestivo, impidiendo la traslocación bacteriana [33].


Matriz de los 10 Puntos Críticos de Control (PCC) en Granjas Avícolas

PCC #Punto Crítico de ControlLímite Crítico OperativoMedida de Mitigación InmediataCita
PCC 1Aislamiento perimetral y cercadoCero acceso de fauna silvestre; cerco > 2 mReparación de mallas y zanja perimetral[8], [13]
PCC 2Desinfección de vehículos (Arcos)Presión 2,5 bar; cobertura 100% chasis/ruedasRecalibración de boquillas y tiempo de contacto > 5 min[8], [22]
PCC 3Filtro sanitario de personalDucha obligatoria; ropa/botas 100% exclusivasSeparación física estricta zona sucia / zona limpia[4], [8]
PCC 4Agua de bebida y bioseguridad hídrica0 CFU/mL coliformes; Cloro libre 3-5 ppm; pH 5,5-6,5Acidificación continua y shock de limpieza de biofilm[5], [8]
PCC 5Control de plagas y vectoresCero actividad de roedores y Alphitobius diaperinusCebado perimetral mensual e insecticidas en vacío[2], [8]
PCC 6Calidad e inocuidad del alimentoAusencia total de Salmonella; micotoxinas bajo LMRTratamiento térmico en planta y uso de ácidos orgánicos[8], [9]
PCC 7Manejo de mortalidad y compostajeRetiro < 2 horas posmortem; compost cerradoProhibido alimentar animales o botaderos abiertos[1], [8]
PCC 8Manejo de cama y gallinazaHumedad 20-25%; encalado con 1,0 kg/m² de cal vivaTratamiento térmico por fermentación o recambio total[2], [35]
PCC 9Vacío sanitario (Sanitary Break)Mínimo 10-14 días en engorde; 21-30 días en posturaPlan estructurado de lavado, enjuague y desinfección[8], [34]
PCC 10Trazabilidad y registro epidemiológico100% de ingresos de visitas y lotes documentadosAuditoría semanal de bitácoras y monitoreo serológico[8], [28]

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cuáles son las enfermedades de control oficial en porcinos? A: Son patologías de notificación obligatoria ante autoridades sanitarias, incluyendo Peste Porcina Africana, Peste Porcina Clásica, Fiebre Aftosa y Enfermedad de Aujeszky, debido a su alto impacto epidémico y restricciones comerciales [22].

Q: ¿Qué enfermedades trae el cerdo? A: El cerdo puede albergar patógenos de impacto zootécnico y zoonótico como Salmonella enterica, Streptococcus suis, el virus de Influenza Porcina y Trichinella spiralis, requiriendo controles bioseguros estricto e inspección veterinaria [8].

Q: ¿Qué enfermedad es la porcina? A: El término hace referencia a las patologías infecciosas o metabólicas específicas de la especie porcina, abarcando síndromes complejos como el PRRS, la Neumonía Enzoótica y la Diarrea Epidémica Porcina [1].

Q: ¿Cuál es la enfermedad que afecta principalmente a los lechones? A: La diarrea neonatal por Escherichia coli enterotoxigénica (ETEC), la coccidiosis por Cystoisospora suis y el Rotavirus representan las principales patologías en lechones lactantes, causando deshidratación y mortandad [13].

Q: ¿Cuáles son los signos clínicos de la intoxicación por zearalenona en cerdas primerizas? A: La ingestión de zearalenona (1 a 5 ppm) produce hiperestrogenismo con inflamación vulvar, eritema, prolapsos vaginales, anestro e hipertrofia de glándulas mamarias en cerdas jóvenes prepúberes [3].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Dr. David Sarfati Mizrahi: PRRS: Pérdidas de $1.200 millones anuales en Porcicultura

  2. Javier Sarradell: Control de ingreso de personal externo en granjas porcinas

  3. Margarita Trujano: Zearalenona en cerdas primerizas: signos clínicos y dosis

  4. Nathalia María del Pilar Correa Valencia: Limitaciones de PCR en Porcicultura

  5. Francia Bobadilla, Dra. Carolina Gómez Cortes: Pleuritis porcina: pérdidas de peso y decomisos

  6. María Inés Lozada: Rol de la histopatología en CRIP porcino

  7. María Inés Lozada: Patrones de lesión pulmonar en cerdos

  8. María Inés Lozada: Agente etiológico principal en CRIP porcino

  9. Margarita Trujano: Necropsia e Histopatología en Cerdas: Diagnóstico Preciso

  10. Luis Angel Medina Carlos: Factores de Riesgo en Granjas Porcinas para Enfermedades Respiratorias

  11. Margarita Trujano: Lesiones hepáticas por aflatoxinas en cerdos

  12. Arnaldo Ambrogi, Juan Busso, Alicia Carranza y Gabriel Di Cola: Estructura diagnóstica en patologías porcinas

  13. Juan Ramiro Llamas: Patógenos respiratorios y entéricos en porcinos argentinos

  14. Margarita Trujano: Lesiones por Fumonisina en Cerdos

  15. Francia Bobadilla: Metodología Biopork: Evaluación de neumonía enzoótica

  16. Flavia Chavez: Cuadros digestivos y respiratorios: Patologías dominantes en cerdos

  17. Estefania Perez; Lozada MI; Javier Cappuccio; Mariana Machuca; Hernan Barrales; María Alejandra Quiroga; y Dr. Carlos Perfumo: Metodologías de diagnóstico para enteritis porcina

  18. Joaquim Segalés, Joaquim Castellà, Laila Darwich, Mariano Domingo, Marga Martín, Enric Mateu, Marina Sibila, Jorge Martínez: Selección de Cerdos para Necropsia: Fase Aguda y Muestras Frescas

  19. Alma Flor Islas Rueda: Selección de Muestras para Diagnóstico Porcino

  20. María Inés Lozada: Patrones de Lesión Pulmonar en Cerdos

  21. Marco Antonio Jacho López: Pasos clave para una necropsia porcina efectiva

  22. Dr. Carlos Perfumo: Diagnóstico de EIE en Porcinos: Estrategias Clave

  23. Comba,E; Norma Pereyra; Francois,S; Gustavo Tártara; Pidone,C; Casabonne,C; Aquili,V: Diagnóstico molecular de E. coli en cerdos

  24. Elías J. Sogbe M, CarmenT. Díaz, Vitelio Utrera, Elías Ascanio y Susan del Castillo, Andres Boulanger, Carolina Rodriguez-cariño, Joaquim Segalés: Diagnóstico de PMWS: Clínico, Histopatológico y Molecular

  25. Dr. Carlos Perfumo: Muestras para Diagnóstico de Influenza Porcina

  26. Nathalia María del Pilar Correa Valencia: Muestreo poblacional en sanidad porcina

  27. Estefania Perez: Diagnóstico de Lawsonia, Brachyspira y Salmonella en cerdos

  28. Maria Alejandra Quiroga: Muestreo de intestino delgado para diagnóstico de TGE

  29. Maria Alejandra Quiroga: Diagnóstico TGE: Inmunohistoquímica y hallazgos histopatológicos

  30. Franco Cappelari: Hinchazón de párpados en cerdas y padrillos: causas y diagnóstico

  31. Cristian Catalán: Vigilancia Sanitaria y Contingencia en Granjas Porcinas

  32. Prof. Mallmann: Diagnóstico de aflatoxicosis: Peso de hígado y desuniformidad

  33. Francisco Javier Venosa Peña: Diagnóstico integral de patologías entéricas porcinas

  34. Juan Luís Criado: Muestreo y análisis para diagnóstico porcino

  35. Dr. Steve Bulbow Sotelo: Micotoxicosis en cerdos: Signos clínicos y desafíos diagnósticos

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Fabio Vannucci
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DVM, PhD, MS Associate Professor, Department of Veterinary Population Medicine (VPM)
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Margarita Trujano
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Medica Veterinaria Zootecnista. Especialidad en Patologia Porcina
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