Explorar

Anunciar en Engormix

Enfermedades Reproductivas en Bovinos: Guía de Diagnóstico, Vacunas y Control del Aborto

El manejo sanitario del complejo reproductivo bovino es la estrategia zootécnica integral para prevenir patologías venéreas e infecciosas que causan pérdidas gestacionales. Su prevención y control se implementan mediante inmunización preservicio y diagnóstico molecular, manteniendo umbrales de preñez superiores al 85% y servicios por concepción menores a 1.5, lo que previene abortos y optimiza la productividad del rodeo [6].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: Las enfermedades reproductivas en bovinos son causadas por patógenos venéreos, virales y bacterianos que generan abortos e infertilidad.
  • Impacto Cuantitativo: Mermas reproductivas de 20% a 60%, pérdidas de $2.300 USD por vientre abortado y caídas del 50% en la producción láctea.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Inmunización doble dosis 45-60 días preservicio, raspaje prepucial sistemático (3 muestreos a 7-10 días) y diagnóstico qPCR/ELISA.

Enfermedades Venéreas en Toros: Campilobacteriosis Genital y Tricomoniasis

La campilobacteriosis genital y la tricomoniasis son las principales patologías venéreas transmisibles por toros asintomáticos, reduciendo las tasas de preñez entre un 20% y un 45% en rodeos de cría e instalaciones lecheras [7].

Momento Clave: «Las técnicas de laboratorio actuales tienen especificidad para diagnosticar Tritrichomonas y Campylobacter fetus, diferenciándolos de Campylobacter saprófitos.»
Disertante: Dr. Luis Miguel Ortega MoraVer video completo »

La Campilobacteriosis Genital Bovina (CGB), causada por Campylobacter fetus (subespecies veneralis y fetus), y la Tricomoniasis Genital Bovina (TGB), provocada por el protozoario flagelado Tritrichomonas foetus, constituyen un desafío sanitario crítico en sistemas de servicio natural. Los sementales adultos actúan como portadores asintomáticos permanentes debido a que la anatomía del epitelio prepucial y peneano, rica en cryptas profundas y vacuolas episómicas, proporciona un microambiente anóxico idóneo para la colonización bacteriana y parasitaria sin desencadenar una respuesta inflamatoria sistémica detectable [15].

En la hembra, la inoculación del agente durante el coito desencadena vaginitis, cervicitis y endometritis subclínica. Aunque la concepción inicial puede ocurrir sin inconvenientes, la replicación de Tritrichomonas foetus o Campylobacter fetus en el lumen uterino altera el microambiente endometrial entre los días 40 y 90 de la gestación. Esta disrupción genera la muerte embrionaria temprana, reabsorción del concepto, reinicio irregular del ciclo estral (vacas repetidoras de celo) y la formación de piómetras por maceración fetal [7].

"Para mejorar el diagnóstico de enfermedades venéreas en bovinos, es fundamental asegurar la calidad de las muestras mediante un reposo sexual de los animales de al menos dos semanas antes de la recolección." — Dr. Luis Miguel Ortega Mora, Universidad Complutense de Madrid [9]

Enfermedades venéreas bovinas: impacto reproductivo y diagnóstico
Fig. 1: Evidencia Técnica — Enfermedades venéreas bovinas: impacto reproductivo y diagnóstico (Marcelo Fort)
Patógeno VenéreoEtiología TaxonómicaLocalización Anatómica en el ToroFisiopatología en la HembraImpacto Zootécnico DirectoReferencia
CampilobacteriosisCampylobacter fetus subsp. veneralis / fetusCriptas del epitelio prepucial y peneEndometritis subaguda, salpingitis y reabsorción embrionariaCaída de preñez de 20% a 35%, retardo de la concepción[1]
TricomoniasisTritrichomonas foetus (Protozoo flagelado)Cavidad prepucial y fórnix peneanoMuerte embrionaria, piómetra acumulativo y endometritisRepetición de celo extendida, reducción del 40% en preñez[20]
Histofilosis GenitalHistophilus somni (Haemophilus somni)Mucosa prepucial y conductos deferentesOvaritis, metritis supurativa y abortos esporádicosInfertilidad temporal y fallo en la tasa de concepción[10]

El control efectivo de las enfermedades venéreas exige la aplicación estricta del descarte de toros infectados (dado que no existen tratamientos quimioterapéuticos con registro oficial ni 100% eficaces para el macho) e inmunización estratégica en hembras para reducir la duración de la excreción vaginal y acortar el periodo de infertilidad [17], [26].


Enfermedades Virales del Complejo Reproductivo Bovino: Diarrea Viral Bovina e IBR

El virus de la Diarrea Viral Bovina (DVB) y el Herpesvirus Bovino Tipo 1 (IBR) provocan fallos reproductivos masivos, alcanzando hasta un 60% de pérdidas por abortos en rodeos seronegativos [12].

Momento Clave: «El ternero PI se infecta entre los días 40 y 120 de gestación, cuando el sistema inmune fetal no reconoce el virus. Son excretores y mantenedores de la enfermedad en el hato.»
Disertante: Nicolás Palacio (Coordinador del Servicio Técnico, Laboratorio CDV Argentina)Ver video completo »

El Complejo Virósico Reproductivo Bovino está dominado por dos patógenos altamente contagiosos: el virus de la Diarrea Viral Bovina (Pestivirus, géneros BVDV-1 y BVDV-2) y el Herpesvirus Bovino Tipo 1 (Alphaherpesvirinae, BoHV-1), agente etiológico de la Rinotraqueítis Infecciosa Bovina (IBR), la Vulvovaginitis Pustular Infecciosa (IPV) y la Balanopostitis Pustular Infecciosa (IPB) [11], [12].

Diarrea Viral Bovina (DVB) y el Fenómeno del Ternero Persistentemente Infectado (PI)

El virus de la DVB presenta biotipos citopáticos y no citopáticos. Cuando una hembra gestante seronegativa se infecta con una cepa no citopática entre los días 40 y 120 de la gestación, el sistema inmune embrionario, aún inmaduro e incapaz de reconocer el antígeno como extraño, desarrolla una inmunotolerancia específica [11]. El feto sobrevive y nace como un ternero Persistentemente Infectado (PI). Estos animales son reservorios epidemiológicos permanentes: excretan diariamente miles de millones de partículas virales en secreciones nasales, saliva, orina, leche y semen, manteniendo la circulación endémica del virus en la granja [11].

Infecciones maternas entre los días 120 y 180 de gestación inducen defectos en la organogénesis, derivando en malformaciones congénitas como hipoplasia cerebelosa, atrofia del nervio óptico, cataratas bilaterales, hipotricosis (alopecia parcial o total) y palatosquisis (paladar hendido) [11]. Infecciones tardías resultan en abortos o nacimientos de terneros débiles.

Rinotraqueítis Infecciosa Bovina (IBR / BoHV-1)

El virus BoHV-1 ingresa por vía respiratoria u orogenital, estableciendo una fase vírica sistémica que culmina con la invasión de los ganglios nerviosos sacros o trigéminos, donde permanece en estado de latencia de por vida [12]. Ante situaciones de estrés nutricional, parto, transporte o corticociloterapia, el virus se reactiva, viaja por los axones nerviosos y se disemina nuevamente. La viremia materna en vacas gestantes causa focalización necrótica placentaria y luteólicis, induciendo la expulsión del feto (aborto) predominantemente entre el séptimo y noveno mes de gestación [12].

Seroprevalencia de IBR, DVB y Leptospira en toros de Jalisco y Nayarit
Fig. 2: Evidencia Técnica — Seroprevalencia de IBR, DVB y Leptospira en toros de Jalisco y Nayarit (Villaseñor GF et al.)

Causas de Aborto y Muerte Embrionaria en Bovinos Hembras

La pérdida embrionaria temprana y el aborto infeccioso son originados por patógenos bacterianos y protozoarios que comprometen la integridad placentaria y la viabilidad fetal [14].

Las pérdidas de gestación en bovinos dividen su impacto en tres ventanas críticas: muerte embrionaria temprana (antes del día 42), aborto del primer/segundo tercio (días 43 a 180) y aborto del tercer tercio/parto prematuro (día 181 en adelante). Las etiologías infecciosas bacterianas y parasitarias representan más del 70% de los diagnósticos confirmados en laboratorio [13], [14].

Brucelosis Bovina (Brucella abortus)

Causada por la bacteria intracelular facultativa Brucella abortus, la brucelosis es una zoonosis de alto impacto en salud pública [13]. La bacteria ingresa principalmente por vía digestiva mediante el consumo de pastos o agua contaminada con fluidos placentarios o fetos abortados. Posterior a la bacteriemia, Brucella abortus coloniza el trofoblasto placentario, multiplicándose en los placentomas y provocando placentitis necrótica supurativa con engrosamiento interfoveolar. El aborto ocurre típicamente a partir del quinto mes de gestación, acompañado de retención placentaria y metritis severa [13].

Leptospirosis Bovina (Leptospira interrogans)

Las espiroquetas del género Leptospira (serovares Hardjo, Pomona, Icterohaemorrhagiae) se diseminan en la orina de mamíferos reservorios y persisten en ambientes húmedos y templados [14]. Tras ingresar por mucosas o piel lacerada, generan leptospiremia y se localizan en los túbulos renales y el útero gestante. En rodeos no inmunizados, las "tormentas de aborto" superan el 30% de los vientres. En rodeos endémicos, la leptospirosis genera "síndrome de leche blanda" o caída brusca del 50% de la producción láctea, mermas del 5% en la preñez y nacimiento de terneros débiles con icteria y hemoglobinuria [14].

Neosporosis Bovina (Neospora caninum)

El protozoo Neospora caninum utiliza al perro y canidos silvestres como hospedadores definitivos que eliminan ooquistes en las heces [32]. La vaca se infecta por ingestión (transmisión horizontal) o por vía transplacentaria de la madre al feto (transmisión vertical, responsable de más del 80% de los casos). La reactivación de taquizoítos durante la gestación provoca necrosis placentaria focal y encefalitis fetal, desencadenando abortos entre el cuarto y sexto mes de gestación o el nacimiento de terneros con parálisis rígida neuromuscular [32].

Prevalencia de Chlamydia abortus en bovinos de La Pampa
Fig. 3: Evidencia Técnica — Prevalencia de Chlamydia abortus en bovinos de La Pampa (María del C.Rojas)

"Un vientre abortado genera un impacto económico directo estimado en 2.300 dólares por animal debido a costos de alimentación, servicios perdidos y extensión del período abierto." — Nicolás Palacio, Centro Diagnóstico Veterinario (CDV) [8]


Diagnóstico Molecular por PCR y Cultivo en Muestras Prepuciales y Fetales

La aplicación de PCR en tiempo real (qPCR) y cultivo microbiológico en muestras prepuciales y tejidos fetales incrementa la sensibilidad diagnóstica a niveles superiores al 95% [1].

Efectividad de qPCR para Campylobacter fetus en toros
Fig. 4: Evidencia Técnica — Efectividad de qPCR para Campylobacter fetus en toros (Rafael Delpiazzo)

La precisión diagnóstica en patología reproductiva bovina depende de la rigurosidad en la recolección de muestras, la conservación de la cadena de frío y la selección de la técnica de laboratorio [15].

Muestreo Prepucial en Toros

Para la detección de Tritrichomonas foetus y Campylobacter fetus, los toros deben someterse a un reposo sexual obligatorio de al menos 14 días [9]. La toma de muestra se realiza mediante raspaje prepucial con raspador plástico (pipeta de raspaje) o lavado prepucial con solución fisiológica estéril. Se recomiendan de 3 a 4 muestreos consecutivos con intervalos de 7 a 10 días entre raspajes, exigiendo un mínimo de dos resultados negativos seguidos para otorgar el alta sanitaria [15].

  1. Cultivo Directo y Micrografía: La muestra para T. foetus se inocula inmediatamente en medio Diamond o InPouch TV y se incuba a 37 °C, realizando lecturas microscópicas a las 24, 48, 72 y 96 horas para observar protozoos móviles. Para C. fetus, la muestra requiere medio de transporte Cary-Blair o solución formolada al 0.5% e inmunofluorescencia directa (IFD) [15].
  2. Reacción en Cadena de la Polimerasa (qPCR): La qPCR multiplex permite la amplificación de ADN específico directamente del esmegma prepucial. Esta técnica supera al cultivo al detectar organismos no viables y diferenciar con precisión absoluta Campylobacter fetus subsp. veneralis de especies saprófitas como Campylobacter bubulus [1], [15].

Protocolo Diagnóstico en Fetos Abortados

Frente a un evento de aborto, el médico veterinario debe remitir al laboratorio de diagnóstico:

  • Feto Completo: Enviado refrigerado (4 °C) si la distancia lo permite.
  • Muestras Organolépticas: Líquido abomasal (aspirado con jeringa estéril para microbiología y qPCR de Campylobacter y Brucella), pulmo´n, hígado, bazo, riñón, corazón y encéfalo fetal fresco y fijado en formalina al 10% [2].
  • Placenta: Al menos dos cotiledones fetales con su correspondiente zona intercotiledonaria.
  • Suero Materno: Muestra pareada (fase aguda al momento del aborto y fase convaleciente a los 15-21 días) para serología por ELISA o Microaglutinación (MAT para Leptospira) [15].

Vacunas para Enfermedades Reproductivas en Bovinos y Calendario Sanitario

La inmunización estratégica con vacunas polivalentes preservicio reduce más del 50% de las mermas reproductivas mediante la inducción de respuesta humoral y celular de alta memoria [6].

Incidencia de Tricomonosis y Campilobacteriosis en toros de Río Cuarto
Fig. 5: Evidencia Técnica — Incidencia de Tricomonosis y Campilobacteriosis en toros de Río Cuarto (Denegri D, Franz N, Donadío H, Salustio M, Salomón AA, Canale A, Conde B, Bessone F, Margineda C, Bruno M, Sambuceti N, Reyes M, Rassia C)

El éxito del programa de inmunización radica en la transformación de animales simplemente "vacunados" en animales genuinamente "inmunizados". La aplicación de vacunas oleosas o acuosas con antígenos de IBR, DVB, Leptospira (múltiples serovares), Campylobacter fetus y Histophilus somni debe sincronizarse estrictamente con la fisiología reproductiva del rodeo [6].

Esquema Sanitario Básico Promedio

  • Novillas y Vaquillonas de Recría:
    • Primera Dosis: Aplicar 45 a 60 días antes del inicio del servicio.
    • Segunda Dosis (Booster Obligatorio): Aplicar 21 a 30 días antes del inicio del servicio [6].
  • Vacas Adultas y Toros:
    • Revacunación Anual: Aplicar una dosis de refuerzo 30 a 45 días antes del inicio de la temporada de servicio natural o Inseminación Artificial a Tiempo Fijo (IATF) [6].
    • Brucelosis: Vacunación obligatoria en terneras de 3 a 8 meses de edad con cepa 19 o Cepa RB51 según la normativa epidemiológica de cada región [13].

Matriz de Puntos Críticos de Control (PCC) en la Prevención Sanitaria Reproductiva

PCC #Etapa / Punto de ControlRiesgo Sanitario / DefectoParámetro Técnico y UmbralAcción Correctiva InmediataReferencia
PCC 1Recepción de vacunas en fincaRuptura de cadena de frío y desnaturalizaciónMantenimiento estricto entre 2 °C y 8 °C sin congelaciónDescarte inmediato del lote expuesto a temperatura superior a 10 °C[6]
PCC 2Primoinmunización de vaquillonasFalta de efecto booster y falla inmunitariaAplicación obligatoria de 2 dosis separadas por 21 a 30 díasReiniciar esquema completo de primoinmunización si pasan más de 45 días[6]
PCC 3Ventana de aplicación preservicioInterferencia en la implantación embrionariaInmunización finalizada 30 días antes de la inseminación o servicioReprogramar inicio de IATF para cumplir los 30 días post-vacunación[6]
PCC 4Raspaje prepucial de sementalesTransmisión de ETS por toros infectados3 raspajes prepuciales negativos consecutivos con 7 días de intervaloEliminación y faena obligatoria del toro positivo a T. foetus o C. fetus[15], [17]
PCC 5Reposo sexual previo a muestreoFalsos negativos por dilución o arrastre14 días mínimos de aislamiento reproductivo antes del raspajeAnular muestra tomada sin reposo sexual y reprogramar a los 14 días[9]
PCC 6Detección de terneros PI para DVBFuente continua de contagio virósicoMuestreo de cartílago auricular (muesca de oreja) por ELISA/PCR al 100% de ternerosSegregación y sacrificio inmediato del ternero PI confirmado[11]
PCC 7Control de vectores en NeosporosisContaminación de alimento con ooquistesCero acceso de perros a galpones de silaje, de agua y corrales de partoRecolección inmediata y entierro sanitario de placentas y fetos[32]
PCC 8Diagnóstico de serovares de LeptospiraAbortos por falta de protección específicaTítulo MAT mayor a 1:400 o identificación directa en orinaIncorporación de vacunas autóctonas con la serovariedad regional activa[14]
PCC 9Bioseguridad en ingresos de ganadoIntroducción de patógenos exóticos al hatoCuarentena de 30 días y serología negativa a Brucelosis, IBR, DVBRetorno al origen o aislamiento del animal reactivo en serología[17]
PCC 10Higiene en la toma de muestra fetalAutolisis y contaminación saprófitaRemisión de líquido abomasal e hígado conservados a 4 °C en < 24 horasUtilizar frascos estériles y refrigeración con geles fríos sin congelar[15]

Monitoreo de Gestación y Evaluación de la Calidad Seminal en Sementales

El examen de aptitud reproductiva en toros y la ultrasonografía transrectal sistemática en hembras garantizan la detección precoz de infertilidad y vaciamiento del rodeo [4].

El monitoreo zootécnico y veterinario continuo permite identificar fallos de fertilidad antes de que se traduzcan en pérdidas financieras irreversibles [4], [24].

Evaluación de Aptitud Reproductiva del Toro (Examen Andrológico)

Un toro reproductivamente apto debe someterse a una revisión física, sanitaria y espermática anual 60 días antes del servicio [4]:

  • Examen Físico y Palpación: Evaluación de locomoción, visión, aplomos, palpación de testículos (consistencia elástica y tono), epidídimos y vesículas seminales por palpación transrectal [4].
  • Circunferencia Escrotal (CE): Indicador directo de la capacidad de producción espermática y madurez sexual. Umbrales mínimos recomendados según edad:
    • 12-15 meses: > 30 cm.
    • 15-18 meses: > 31 cm.
    • 18-24 meses: > 32 cm.
    • 24 meses: > 34 cm.

  • Espermiograma y Calidad Seminal: Evaluación inmediata en platina termostática a 37 °C:
    • Motilidad Masiva: Onda denso-turbulenta (3+ a 4+).
    • Motilidad Individual Progresiva: Mínimo 60% a 70% de espermatozoides con movimiento rectilíneo rápido.
    • Morfología Espermática: Mínimo 70% de espermatozoides normales (máximo 10% a 15% de defectos primarios de cabeza y pieza intermedia, y 15% de defectos secundarios) [24].
Parámetro Seminal / SanitarioUmbral Mínimo ExigidoDefecto FrecuenteConsecuencia ZootécnicaReferencia
Motilidad Progresiva Individual≥ 70% espermatozoides móvilesAstenospermia (< 50%)Reducción de la fertilidad en IATF y servicio[24]
Morfología Espermática Normal≥ 70% formas normalesDefectos de acrosoma / gota citoplasmáticaFallo en la fecundación y reacción acrosómica[24]
Concentración Espermática≥ 800 x 106 espermatozoides/mLOligospermia severaReducción del número de dosis viables por eyaculado[4]
Status de Enfermedades Venéreas100% Negativo (3 raspajes)Presencia de T. foetus o C. fetusDiseminación masiva y descarte del reproductor[15], [18]

Monitoreo Ultrasonográfico y Diagnóstico de Vacas Repetidoras

El seguimiento ultrasonográfico por vía transrectal (sonda lineal de 5.0 a 7.5 MHz) permite la detección precoz de la gestación desde el día 28 a 30 post-inseminación, evaluando la viabilidad del vesículo embrionario y la presencia de latido cardíaco [16].

Para hembras categorizadas como "vacas repetidoras de celo" (más de 3 servicios fallidos sin causa aparente), la evaluación incluye la prueba de permeabilidad oviductal mediante infusión de colorante (azul de metileno o violeta de genciana) por vía utero-tubárica o laparoscópica. La aparición del tinte en orina o en cavidad peritoneal confirma la permeabilidad, descartando salpingitis o hidrosalpinx subclínicos [16].


Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Qué vacunas se utilizan para prevenir enfermedades reproductivas en bovinos? A: Se emplean vacunas polivalentes que combinan antígenos virales (IBR, DVB) y bacterianos (Leptospira, Campylobacter fetus, Histophilus somni), aplicando dos dosis preservicio [6].

Q: ¿Cuáles son las 10 enfermedades virales más comunes en bovinos? A: Las principales virales son IBR, DVB, Parainfluenza 3, Virus Sincitial Respiratorio, Leucosis Bovina, Fiebre Aftosa, Rabia Paresiante, Estomatitis Vesicular, Papilomatosis y Diarrea de los Terneros (Rotavirus/Coronavirus) [11], [12].

Q: ¿Qué enfermedades pueden causar abortos en bovinos? A: Los abortos son causados principalmente por Brucelosis, Leptospirosis, Diarrea Viral Bovina (DVB), Herpesvirus Bovino (IBR), Neosporosis, Campilobacteriosis, Trichomoniasis y Chlamydiosis [2], [13], [14].

Q: ¿Cómo se llama la nueva enfermedad peligrosa para el ganado bovino? A: La Enfermedad Hemorrágica Epizoótica (EHE) es un reemergente arbovirus transmitido por dípteros Culicoides que genera fiebre, estomatitis ulcerosa y mermas reproductivas en rodeos bovinos [31].

Q: ¿Cómo se realiza el diagnóstico de enfermedades venéreas en toros de reproducción? A: Se ejecuta mediante 3 a 4 raspajes prepuciales consecutivos con reposo sexual previo de 14 días, procesando la muestra mediante cultivo microbiológico y qPCR [1], [9], [15].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Rafael Delpiazzo: Efectividad de qPCR para Campylobacter fetus en toros

  2. María del C.Rojas: Prevalencia de Chlamydia abortus en bovinos de La Pampa

  3. Villaseñor GF et al.: Seroprevalencia de IBR, DVB y Leptospira en toros de Jalisco y Nayarit

  4. Carlos Martín Acuña: Importancia de la revisación de toros para la rentabilidad

  5. Carlos Martín Acuña: Sanidad: Pilar de la Fertilidad Bovina

  6. Nicolás Palacio: Plan sanitario reproductivo: Vacunación estratégica

  7. Nicolás Palacio: Campylobacteriosis y Tricomoniasis: Impacto reproductivo

  8. Nicolás Palacio: Pérdidas económicas por enfermedades reproductivas en lechería

  9. Dr. Luis Miguel Ortega Mora: Desafíos en el diagnóstico de enfermedades venéreas bovinas

  10. Nicolás Palacio: Haemophilus somni: Abortos y cuadros nerviosos

  11. Nicolás Palacio: DVB: Malformaciones, PI y abortos en bovinos

  12. Nicolás Palacio: IBR: Abortos y problemas reproductivos en bovinos

  13. Nicolás Palacio: Brucelosis: Abortos en segundo tercio y zoonosis

  14. Nicolás Palacio: Leptospirosis: Abortos, infertilidad y zoonosis

  15. Marcelo Fort: Enfermedades venéreas bovinas: impacto reproductivo y diagnóstico

  16. Luís Ángel Quintela Arias: Permeabilidad oviductal: clave en vacas repetidoras

  17. María Catena: Manejo y control de CGB y TGB en rodeos

  18. Denegri D, Franz N, Donadío H, Salustio M, Salomón AA, Canale A, Conde B, Bessone F, Margineda C, Bruno M, Sambuceti N, Reyes M, Rassia C: Incidencia de Tricomonosis y Campilobacteriosis en toros de Río Cuarto

  19. Zimmer P.A., Gait J.J., Viola N. y Etchepare P.: Control CGB: Eliminación, Vacunación y Diagnóstico

  20. Ivana Diruscio, Juan Ibarlucea (AER INTA San Cristóbal), Daniel Scandolo, Alejandro Abdala, Martín Maciel, Oscar Anziani (INTA EEA Rafaela), Rafael Aleman (Actividad privada): Tricomoniasis Bovina: Impacto Reproductivo y Económico

  21. Luis Ángel Flores Encinas: Tricomoniasis Bovina: Impacto y Diagnóstico Molecular

  22. María Catena, Pedro Soto, Monteavaro, C Echevarría, (Dpto. de Sanidad Animal y Medicina Preventiva Fac Cs. Vet. U.N.C.P.B.A H.) y Racciatti, M. (Actividad privada): Persistencia C. fetus fetus en bovinos vacunados y preñados

  23. Alejandro Córdova Izquierdo: Estrategias de Prevención y Control de Campilobacteriosis Bovina

  24. Mónica Montañés: Incidencia de ETS en sementales de vacuno de carne

  25. M.V. Jorge Villalba e Ignacio Villalba: Limitaciones del diagnóstico de Campilobacteriosis por inmunodifusión

  26. Esther Collantes-Fernández: Tricomonosis bovina: impacto reproductivo y control

  27. jose luis Farina: Resultados de vacunas contra tricomoniasis bovina en campo

  28. Juan Carlos Aba: Sanidad: Clave para la productividad ganadera en Argentina

  29. Luis Alberto Vasquez: Impacto de Tritrichomonas foetus en la calidad seminal bovina

  30. Méd. Vet. Hector Enrique Schreyer: Sanidad reproductiva: Vacunas clave para vacas y toros

  31. Enrique Loor M: Enfermedades reproductivas bovinas: impacto y prevención

  32. Carlos Eduardo Rojas Torrico: Impacto de enfermedades reproductivas en bovinos

  33. MSPAS. MVZ. Eliseo Moya Olvera: Enfermedades reproductivas en lechería

  34. Marcos Saint Martin: Sanidad reproductiva en ganado de carne

  35. Hidalgo, L.G.; Catena, M.; Petreigne E.H.; Seguí R.: Enfermedades venéreas y su efecto en la preñez bovina

Comentarios relacionados con #Enfermedades reproductivas bovinas
Usuarios destacados en Enfermedades reproductivas bovinas
Franklin Roman Rodriguez
Franklin Roman Rodriguez
Estados Unidos de América
María Catena
María Catena
Argentina
Barrios Garcia Hugo Brigido
Barrios Garcia Hugo Brigido
México
Esther Collantes Fernández
Esther Collantes Fernández
España
Maximiliano
Maximiliano
Unicen
Argentina
Ver más contenidos