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Guía Técnica y Manual de Necropsia en Cerdos: Paso a Paso, Toma de Muestras y Diagnóstico Lesional

La técnica y protocolo de necropsia en cerdos es el examen anatomopatológico sistemático post-mortem para identificar las etiologías de la mortalidad en la granja. Se implementa mediante el abordaje estandarizado de cavidades y la toma de tejidos, manteniendo umbrales de fijación con formol al 10% y refrigeración a 4°C, lo que previene el subdiagnóstico de patologías sistémicas y optimiza la eficiencia sanitaria del hato [13].

Desafío Técnico y Causa Primaria: El diagnóstico de la mortalidad porcina exige una técnica de necropsia estandarizada en cerdos para aislar patógenos entéricos y respiratorios agudos.

Impacto Cuantitativo: Muestras mal fijadas generan hasta un 35% de fallos diagnósticos en histopatología y pérdidas del 31.1% por mortalidad no identificada en lechones destetados.

Protocolo de Intervención Verificado: Necropsia sistemática post-mortem, fijación con formalina al 10% neutra amortiguada en proporción 10:1 (volumen:tejido) y refrigeración de tejido fresco a 4°C para PCR y microbiología.

Instrumental y Equipo de Bioseguridad para Necropsia en Porcinos

El equipamiento para la necropsia porcina requiere herramientas de corte óseo y disección tisular que garanticen cortes limpios y prevengan la contaminación cruzada entre órganos [13].

La preparación adecuada del espacio de necropsia y del personal técnico constituye el primer filtro de bioseguridad en la granja porcina [26]. Debe disponerse de una zona delimitada de necropsia (pediluvio con desinfectante de amplio espectro, agua a presión y drenaje controlado) para evitar la dispersión de patógenos de alta contagiosidad como el virus del Síndrome Respiratorio y Reproductivo Porcino (PRRS), la Peste Porcina Africana (PPA) o agentes bacterianos multirresistentes [28].

El kit de necropsia estándar para la producción porcina industrial consta del siguiente instrumental:

Equipo de Protección Personal (EPP): Overol impermeable descartable o de caucho, botas de goma exclusivas para la zona de anatomía patológica, guantes de nitrilo reforzados (mínimo 0.15 mm de grosor), mascarilla N95 o FFP2 y pantalla facial protectora.
Instrumental de Corte Seco y Disección: Cuchillos de carnado de hoja fija de 15 cm a 20 cm, chaira de afilado, tijera de botón (punta roma/aguda), tijera de mayo recta de 18 cm, pinzas de disección con y sin dientes de ratón, y bisturí con hojas intercambiables N° 22 o 24.
Instrumental de Extracción Ósea: Costótomo especializado o cizalla ósea de 22 cm, sierra manual de carpintero o sierra oscilante sanitaria para la apertura de la cavidad craneana.
Materiales para Recolección y Conservación: Frascos de boca ancha de polipropileno graduados (100 mL a 1000 mL) con cierre hermético, solución de formalina amortiguada al 10% (pH 7.2), hisopos estériles con medio de transporte Stuart o Amies, bolsas de sellado hermético tipo Ziploc para tejidos frescos, tubos estériles sin aditivo para recolección de líquidos (cefalorraquídeo, pericárdico, peritoneal) y tubos con EDTA para serología o biografía molecular [14].

"Un profesional con conocimiento en manipulación de cadáveres y patogenia de enfermedades debe realizar la necropsia. La técnica debe ser rigurosa, comenzando con un examen externo detallado y luego un examen interno sistemático." — Marco Antonio Jacho López, Especialista en Patología Porcina [13]

Tecnica de Necropsia en Cerdos Paso a Paso

La ejecución sistemática del protocolo de necropsia exige la secuencia ordenada desde la inspección externa hasta la apertura paso a paso de las tres cavidades principales [13].

La selección del cadáver es crucial para obtener valor diagnóstico [14]. Se deben priorizar animales en la fase aguda de la enfermedad, recién sacrificados mediante métodos humanitarios (eutanasia por electropatía o perno cautivo seguido de sangrado) o con menos de 2 horas de fallecidos a temperatura ambiente media (20°C), evitando animales con autólisis avanzada donde el sobrecrecimiento bacteriano enmascara los hallazgos histopatológicos [14].

Fig. 1: Evidencia Técnica — Patrones de lesión pulmonar en cerdos (María Inés Lozada)

Secuencia del Abordaje Anatómico y Apertura Cavitaria

Inspección Externa: Registro de la condición corporal (escala 1 a 5), inspección de orificios naturales (presencia de secreciones oculares, nasales, cianosis auricular o descargas hemorrágicas anales/vulvares), examen de la piel (palidez, eritema, lesiones romboidales sugestivas de Erysipelothrix rhusiopathiae o Actinobacillus suis), y revisión de articulaciones y pezuñas [6].
Posicionamiento: Colocar al cerdo en decúbito lateral izquierdo sobre la mesa de necropsia o superficie limpia recubierta de plástico. Esta posición estabiliza el cadáver y facilita la separación del plano apendicular derecho.
Incisión de Piel y Desarticulación Apendicular: Realizar una incisión incisiva primaria en el pliegue de la ingle derecha y desarticular la articulación coxofemoral derecha. Cortar la piel y músculos subyacentes por la línea media ventral, desde la sínfisis mandibular hasta el pubis, bordeando las mamas o el pene.
Exposición Abdominal y Evaluación de Presión: Efectuar una pequeña punción en la pared abdominal para evaluar la presencia de gases a presión o fluidos. Extender la incisión longitudinalmente y retirar la pared abdominal lateral derecha realizando cortes transversales paralelos a las costillas.
Inspección In Situ de la Cavidad Abdominal: Evaluar la presencia de líquido peritoneal (transudado, exudado fibrinoso, hemoperitoneo), la posición geográfica de las asas intestinales (descartar torsión mesentérica o Síndrome de Dilatación Intestinal Porcina - PIDS) y la repleción de la vesícula biliar [18], [35].
Apertura de la Cavidad Torácica: Mediante el costótomo, incidir las articulaciones condrocostales o incidir a través de las costillas alineadas a 3 cm de la columna vertebral. Retirar la parrilla costal derecha para dejar expuestos los campos pulmonares, el mediastino y la cavidad pericárdica sin lacerar el parénquima pulmonar.
Extracción del Bloque Cervico-Torácico (Lengua, Tráquea, Esófago, Pulmones y Corazón): Se realiza incidiendo transversalmente por la parte medial de las ramas mandibulares para liberar la lengua, ejerciendo tracción caudal para extraer en conjunto el paquete respiratorio y cardiaco.
Evisceración del Sistema Digestivo y Anexos: Ligadura del esófago a nivel del cardias y del recto a nivel pélvico. Retirar el conjunto del estómago, intestino delgado, intestino grueso, bazo e hígado, disecando cuidadosamente los mesenterios [13].
Extracción y Evaluación del Sistema Urogenital: Remoción de riñones, uréteres, vejiga y órganos reproductores (ovarios/útero en hembras o testículos en machos), abriendo la cápsula renal para verificar la facilidad de desprendimiento y la presencia de petequias corticales [28].
Apertura y Extracción del Sistema Nervioso Central (SNC): Realizar craneotomía mediante cortes transversales y longitudinales según la técnica elegida para liberar la masa encefálica y la médula espinal superior [25].

Etapa	Operación / Maniobra Anatómica	Parámetro Térmico / Métrico	Criterio de Control / Hallazgo de Riesgo	Cita Técnica
1. Inspección Externa	Evaluación de piel, pezuñas y orificios	Temperatura ambiente <25°C	Presencia de cianosis distal, ictericia o eritrodermia	[13]
2. Eutanasia / Selección	Eutanasia humana en fase aguda	Tiempo a necropsia <2 horas	Descartar animales con autólisis >4 horas post-mortem	[14]
3. Incisión Ventral	Incisión desde mandíbula a pubis	Profundidad de corte 10 mm a 30 mm	Prevenir perforación accidental de asas intestinales	[13]
4. Apertura Torácica	Corte condrocostal con cizalla	Extensión de sección 10 a 14 costillas	Evitar desgarro de parénquima pulmonar y contaminación	[13]
5. Extracción Bloque Respiratorio	Tracción ventral de lengua y tráquea	Longitud de tracción 40 cm a 80 cm	Evaluar exudado en luz traqueal y consolidación	[4]
6. Evisceración Digestiva	Ligadura doble en esófago y recto	Hilo trenzado N° 2 o bridas	Evitar derrame de contenido gástrico o entérico	[23]
7. Examen Hepatobiliar	Incisión de parénquima y vesícula	Grosor de corte 1 cm	Verificar fibrosis, necrosis focal o congestión pasiva	[6]
8. Extracción Renal	Decapsulación y sección longitudinal	Relación corteza:médula 1:2	Identificar infartos embólicos o petequias corticales	[28]
9. Incisión Craneal	Craneotomía sagital o coronaria	Grosor de lámina ósea 5 mm a 12 mm	Proteger integridad de bulbos olfatorios y cerebelo	[25]
10. Acondicionamiento Muestras	Fijación en formalina al 10% neutra	Proporción fijador:tejido 10:1	Prevenir autólisis en el centro de la muestra tisular	[1]

Fig. 2: Evidencia Técnica — Impacto de la temperatura en la mortalidad de lechones posdestete (Lucas Milanesio)

Protocolo de Toma y Envío de Muestras en Necropsia Porcina

El acondicionamiento técnico de las muestras recolectadas durante la necropsia determina la sensibilidad de las pruebas analíticas de laboratorio [14].

La toma de muestras debe planificarse en función de la sospecha diagnóstica diferencial, clasificando el material en muestras para histopatología, microbiología/bacteriología, virología (PCR / RT-PCR), toxicología y parasitología [22], [23].

Normas Generales de Muestreo Tisular

Histopatología: Tomar secciones de tejido no mayores a 1 cm de espesor que incluyan la interfaz entre la zona lesionada y el tejido aparentemente sano [13]. La fijación inmediata en formalina amortiguada al 10% es mandatoria, manteniendo una relación volumétrica estricta de 1 parte de tejido por 10 partes de líquido fijador [1]. No congelar jamás muestras destinadas a histopatología.
Bacteriología e Inmunohistoquímica: Colectar trozos de parénquima de 3 cm x 3 cm o parénquimas completos (ej. ganglios linfáticos mesentéricos o traqueobronquiales) en bolsas estériles Ziploc [2]. Los hisopados de superficies serosas o cavidades deben realizarse con hisopos de dacrón/algodón estéril y colocarse en medio de transporte. Mantener en refrigeración constante (4°C) para su procesamiento dentro de las 24 a 48 horas.
Virología y Biología Molecular (PCR): Para detección de ácidos nucleicos (PRRS, PCV-2, PCV-4, Influenza, Gastroenteritis Transmisible - TGE), se deben refrigerar tejidos frescos a 4°C o congelar a -20°C si el tiempo de envío supera las 48 horas [1], [21].
Muestreo Intestinal Especializado: Para el diagnóstico de enteropatías como TGE, Rotavirus, Lawsonia intracellularis, Brachyspira hyodysenteriae o Salmonella spp., se deben recortar segmentos de intestino de 2 cm a 3 cm de longitud [1], [2]. En el caso de TGE e infecciones virales entéricas, la toma multifocal del yeyuno es obligatoria debido a la distribución parcheada de la atrofia vellosa [1], [3]. Los segmentos deben fijarse longitudinalmente o lavarse suavemente con solución salina estéril si hay exceso de contenido antes de ingresarlos a la formalina.

"Para asegurar un diagnóstico histopatológico preciso de TGE, el muestreo durante la necropsia debe enfocarse en el intestino delgado. Se deben obtener múltiples muestras representativas de todas las regiones del intestino delgado, incluyendo varias secciones del yeyuno." — Dra. Maria Alejandra Quiroga, Cátedra de Patología Especial FCV-UNLP [1]

Tipo de Análisis	Órgano / Tejido Prioritario	Medio de Conservación	Temperatura de Envío	Cita Técnica
Histopatología General	Pulmón, Hígado, Riñón, Bazo, Íleon	Formalina al 10% neutra	Ambiente (15°C a 25°C)	[13]
Histopatología Entérica	Yeyuno (múltiple), Íleon, Ciego	Formalina al 10% neutra	Ambiente (15°C a 25°C)	[1]
Microbiología Bacteriana	Pulmón, Ganglio, Líquido Articular	Bolsa estéril / Hisopo Stuart	Refrigeración (2°C a 8°C)	[22]
Virología / RT-PCR	Trazos pulmonares, Bazo, Suero	Tubo seco estéril / Bolsa Ziploc	Refrigerado o Congelado (-20°C)	[21]
Diagnóstico Tuberculosis	Ganglios retrofaríngeos/mesentéricos	Refrigeración / Congelado	Refrigeración (2°C a 8°C)	[8]
Extracción Encefálica	Encéfalo completo o hemisecciones	Formalina 10% / Fresco	Refrigeración / Ambiente	[25]

Evaluación Anatomopatológica y Examen Sistemático de Órganos

La lectura lesional del patrón anatomopatológico orienta el diagnóstico etiológico previo a la confirmación de laboratorio [4], [15].

Fig. 3: Evidencia Técnica — Rol de la histopatología en CRIP porcino (María Inés Lozada)

Sistema Respiratorio y Complejo Respiratorio Infeccioso Porcino (CRIP)

La diferenciación de los patrones de consolidación pulmonar es el pilar central de la necropsia del sistema respiratorio [4], [7]:

Bronconeumonía Supurativa / Catarral: Caracterizada por áreas de consolidación firmes de color rojo oscuro a grisáceo distribuidas en los lóbulos cráneo-ventrales (apicales, cardíacos y borde anterior de diafragmáticos) [4]. Etiologías asociadas: Mycoplasma hyopneumoniae, Pasteurella multocida, Bordetella bronchiseptica.
Pleurocuadro Fibrinoso o Necrotizante: Consolidación caudo-dorsal severa con exudación intensa de fibrina sobre la pleura visceral y parietal, adherencias pleurales y áreas de necrosis hemorrágica [5], [6]. Etiologías asociadas: Actinobacillus pleuropneumoniae (APP) y Actinobacillus suis [5].
Neumonía Intersticial: Pulmones pálidos, no colapsados, con consistencia elástica o de caucho, aumento de peso y presencia de marcajes interlobulillares edematosos [7], [9]. Etiologías asociadas: Virus del PRRS, Circovirus Porcino Tipo 2 (PCV-2) y Virus de la Influenza Porcina (SIV) [9].

Fig. 4: Evidencia Técnica — Agente etiológico principal en CRIP porcino (María Inés Lozada)

"La evaluación microscópica de muestras pulmonares permite categorizar las lesiones en patrones morfológicos específicos, como bronconeumonía supurativa... Esta clasificación es fundamental para orientar el diagnóstico etiológico del Complejo Respiratorio Infeccioso Porcino." — Dra. María Inés Lozada, Investigadora en Patología Porcina [4]

Sistema Digestivo y Patología Entérica

El examen macroscópico del tracto gastrointestinal requiere la apertura de la luz luminal desde el estómago hasta el recto [23]:

Atrofia Severa de Vellosidades y Adelgazamiento de Parede: Presencia de asas de intestino delgado distendidas, translúcidas y llenas de fluido amarillento acuoso [1], [3]. Lesión clásica de TGE y Diarrea Epidémica Porcina (PED) [3].
Enteropatía Proliferativa (Ileítis): Engrosamiento de la mucosa del íleon terminal en forma de "manguera de manguera" o aspecto cerebral, con necrosis coagulativa o exudado castaño [2]. Causada por Lawsonia intracellularis.
Torsión Mesentérica y PIDS: Congestión pasiva severa, cianosis y dilatación acentuada de la totalidad del paquete intestinal con acumulación de gas y fluido hemorrágico [18], [35].

Extracción y Evaluación del Sistema Nervioso Central (SNC)

Para el diagnóstico de cuadros neurológicos (Streptococcus suis, Haemophilus parasuis / Enfermedad de Glässer, Encefalomielitis por Teschovirus, Intoxicación por Sal), la extracción del encéfalo debe seguir una técnica estandarizada [22], [25], [34]:

Método Transversal / Craneotomía Tradicional: Separación de la cabeza a nivel de la articulación atlanto-occipital [25]. Remover la masa muscular parietal y frontal. Efectuar un corte transversal con la sierra uniendo las apófisis supraorbitarias, seguido de dos cortes laterales dirigidos hacia el agujero magno. Retirar la calota ósea elevándola con un elevador de periostio o destornillador estéril [25].
Método de Hemisección Sagital: Cortar la cabeza longitudinalmente por la línea media sagital con hacha o sierra sanitaria previa remoción de la mandíbula [25]. Esta técnica permite extraer de forma rápida cada hemisferio encefálico reduciendo el riesgo de laceración mecánica del parénquima [25].

Fig. 5: Evidencia Técnica — Proceso angiogénico alterado en placentas de cerdas (Andrea Cristofolini)

Diagnóstico Diferencial de Lesiones en Necropsia de Lechones y Cerdos

El análisis comparativo de hallazgos macroscópicos post-mortem permite establecer diagnósticos presuntivos inmediatos en la granja porcina [5], [28].

Patología / Cuadro Clínico	Lesión Macroscópica Primaria	Órgano / Tejido Diana	Diagnóstico Diferencial Inmediato	Cita Técnica
Actinobacilosis (A. suis)	Necrosis multifocal y pleuritis fibrinosa	Pulmón (caudo-dorsal) e Hígado	Actinobacillus pleuropneumoniae	[5], [6]
Peste Porcina Africana (PPA)	Esplenomegalia friable y nefropatía hemorrágica	Bazo, Riñón, Ganglios	Peste Porcina Clásica (PPC) / Erisipela	[28]
Gastroenteritis Transmisible (TGE)	Atrofia villosa y pared intestinal transparente	Yeyuno e Íleon	Diarrea Epidémica Porcina (PED) / Rotavirus	[1], [3]
Síndrome de Dilatación Intestinal (PIDS)	Torsión mesentérica y cianosis de asas	Masa intestinal completa	Torsión gástrica / Disentería porcina	[18], [35]
Tuberculosis Porcina	Granulomas caseosos o calcificados	Ganglios mesentéricos / Rastro	Corynebacteriosis / Rickettsiosis	[8]
Micotoxicosis (Aflatoxinas)	Hepatomegalia amarillenta e ictericia	Hígado y Vesícula Biliar	Intoxicación por Cobre / Cirrosis	[17], [20]
Meningitis por S. suis	Meninges opacas con exudado fibrino-purulento	Encéfalo / Leptomeninges	Glässerella parasuis / Pseudo-rabia	[21], [22]
Muerte Fetal No Infecciosa	Momificación asincrónica e hipoplasia vascular	Placenta y Fetos	Parvovirus Porcino / PRRS	[10]

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cuáles son las técnicas de necropsia en cerdos? A: Las técnicas principales son la evisceración por bloques órganos a órgano (método de Virchow/Rokitansky adaptado), el abordaje por decúbito lateral izquierdo con extracción de bloque cervicotorácico y digestivo, y la craneotomía por hemisección sagital o corte coronario [13], [25].

Q: ¿Cuáles son los 4 tipos de necropsia? A: En la ciencia veterinaria y médica se clasifican en necropsia clínica o anatomopatológica, necropsia médico-legal o forense, necropsia docente/académica y necropsia sanitaria de vigilancia epidemiológica en mataderos o rastro [13], [19].

Q: ¿Cómo se realiza la necropsia? A: Se realiza mediante examen externo detallado, incisión ventral por línea media, desarticulación de extremidades, apertura de cavidades torácica y abdominal, evisceración ordenada de órganos limpios a sucios, registro lesional y toma de muestras fijadas en formalina al 10% [13], [14].

Q: ¿Cuáles son los pasos para realizar una necropsia en animales? A: Los pasos son: 1) Inspección externa y reseña; 2) Incisión de piel y subcutáneo; 3) Apertura cavitaria abdominal y torácica; 4) Inspección in situ; 5) Evisceración y disección de órganos; 6) Examen del SNC; 7) Recolección de muestras [13].

Q: ¿Cuál es la técnica idónea para tomar muestras de intestino en lechones? A: La técnica exige cortar múltiples segmentos de 2 cm de yeyuno e íleon fresco, lavar suavemente con salina estéril y fijar inmediatamente en formalina neutra amortiguada al 10% en proporción 10:1 para evitar la autólisis celular [1], [3].

Q: ¿Cómo se diagnostica la mortalidad por torsión mesentérica en cerdos de engorde? A: Se diagnostica al abrir la cavidad abdominal observando congestión pasiva difusa, cianosis oscura de la totalidad del paquete intestinal y presencia de un giro de 180° a 360° en la raíz del mesenterio [18], [35].