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Fasciola hepatica en Bovinos y Ovinos: Ciclo de Vida, Síntomas y Control Antihelmíntico

El control de Fasciola hepatica en rumiantes es el protocolo zoosanitario integral enfocado en interrumpir el ciclo del trematodo. Su prevención y control se implementan mediante la dosificación estratégica de fasciolicidas y la eliminación del caracol Lymnaea, manteniendo umbrales de epg reducidos y alta eficacia de fármacos, lo que previene la cirrosis biliar y optimiza la ganancia diaria de peso [18].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: La fasciolosis hepatica en bovinos y ovinos es causada por el trematodo Fasciola hepatica, afectando gravemente el parenquima y los conductos biliares.
  • Impacto Cuantitativo: Reducción de hasta un 20% en la eficiencia de conversión alimenticia en novillos, pérdidas del 15% en producción láctea y más de 50 millones de USD anuales por decomiso de hígados en mataderos.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Diagnóstico mediante sedimentación fecal coprológica, rotación de fasciolicidas (Triclabendazol 12 mg/kg o Nitroxinil 10 mg/kg) y control ambiental del hospedador intermediario.

Ciclo de Vida de la Fasciola hepatica y Rol del Caracol Lymnaea

El ciclo biológico de Fasciola hepatica es un proceso heteroxeno complejo que requiere de un hospedador definitivo mamífero y un hospedador intermediario molusco pertenecientes a la familia Lymnaeidae.

Ciclo de vida Fasciola hepatica
Fig. 1: Evidencia Técnica — Ciclo de vida Fasciola hepatica (Artículos de ganadería por Agrovet Market)

El parásito adulto, ubicado en los conductos biliares del bovino u ovino, posee una altísima capacidad reproductiva hermafrodita, oviponiendo miles de huevos no embrionados al día que llegan al lumen intestinal vía bilis para ser excretados en las heces [23]. En condiciones de humedad ambiental y temperaturas óptimas (15 °C a 25 °C), el huevo se desarrolla en un lapso de 9 a 15 días hasta liberar el miracidio, una larva ciliada móvil de vida libre [20].

Reproducción y ciclo de Fasciola hepatica
Fig. 2: Evidencia Técnica — Reproducción y ciclo de Fasciola hepatica (M. Pérez-Orphee)

El miracidio dispone de un período crítico de 3 a 24 horas para localizar e invadir activamente al caracol gasterópodo del género Lymnaea (tales como Lymnaea viatrix, Lymnaea cubensis o Lymnaea truncatula). Dentro del caracol, el miracidio se transforma sucesivamente en esporocisto, redia de primera y segunda generación, y finalmente cercarias. Este proceso de amplificación poliembriónica dura entre 40 y 70 días, multiplicando un único miracidio en cientos de cercarias nadadoras. Las cercarias emergen del molusco hacia la película de agua libre y se enquistan sobre la vegetación acuática o de pastoreo en forma de metacercarias infectantes dotadas de una pared quística altamente resistente.

"El conocimiento exacto de la cronología del ciclo biológico y de los requerimientos térmicos del caracol intermediario resulta indispensable para determinar la época de mayor riesgo de infestación y programar las aplicaciones antihelmínticas antes del pico epidémico." — Artículos de ganadería por Agrovet Market [20]

Una vez ingeridas por el rumiante durante el pastoreo, las metacercarias desenquistan en el duodeno bajo el estímulo de sales biliares y pH entérico. Las formas juveniles atraviesan la pared intestinal, penetran la cavidad peritoneal y migran activamente perforando la cápsula de Glisson para invadir el parénquima hepático. Durante 6 a 8 semanas, las fasciolas inmaduras destruyen el tejido hepático antes de asentarse definitivamente en los conductos biliares mayores, alcanzando la madurez sexual entre las 10 y 12 semanas post-infección. Adicionalmente, se ha documentado la transmisión e infestación prenatal en becerros mediante migración transplacentaria, lo que mantiene focos endémicos latentes en explotaciones criadoras [26].

Fase BiológicaLocalización / HospedadorDuración PromedioImpacto Patogénico / VulnerabilidadCita Técnica
Huevo no embrionadoHeces / Pastura húmeda9 a 15 díasDependiente de humedad (>80%) y temperatura (>10 °C)[20]
MiracidioAgua libre / Vida libre3 a 24 horasSensible a desecación; búsqueda activa de Lymnaea[20]
Esporocisto / RediaTejidos del caracol Lymnaea40 a 70 díasAmplificación parasitaria (1 miracidio = 600 cercarias)[18]
Cercaria / MetacercariaVegetación acuática / PasturaVariable (meses)Fase infectante altamente resistente en el ambiente[20]
Inmadura migranteParénquima hepático (Bovino/Ovino)6 a 8 semanasDestrucción tisular, hemorragia e inflamación[25]
Adulto reproductivoConductos biliaresAños en el hospedadorFibrosis biliar, hiperplasia ductal y anemia[23]

Síntomas y Lesiones de la Fasciolosis Hepática en Rumiantes

La presentación clínica de la fasciolosis se clasifica en aguda, subaguda y crónica según la carga de metacercarias ingeridas y la velocidad de migración intraparenquimatosa.

Alta prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos de Viñales
Fig. 3: Evidencia Técnica — Alta prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos de Viñales (Y. Díaz-Ferrá)

La fasciolosis aguda es predomiente en ovinos tras la ingestión masiva de metacercarias (>2,000 en un corto período). El tránsito traumático de miles de fasciolas inmaduras causa laceración severa del parénquima hepático, rotura de vasos sanguíneos, hematomas subcapsulares y hemoperitoneo. Los animales infectados presentan letargia, debilidad extrema, dolor abdominal a la palpación en el hipocondrio derecho, palidez marcada de mucosas y muerte súbita por shock hipovolémico o insuficiencia hepática aguda en un plazo de 1 a 3 semanas. En la necropsia, el hígado se observa agrandado, frágil, cubierto de fibrina y cruzado por trayectos hemorrágicos oscuros.

En contraste, la fasciolosis crónica es la forma más común en ganado bovino y se produce por el establecimiento prolongado de fasciolas adultas en los conductos biliares. La acción mecánica de las ventosas y espinas cuticulares del parásito, sumada a la secreción de metabolitos tóxicos y prolina, provoca una colangitis crónica hiperplásica, fibrosa y calcificante. Los conductos biliares pierden elasticidad, engrosan sus paredes adoptando un aspecto macroscópico de "tubos de pipa" y sufren oclusión parcial o total.

"La alteración de la arquitectura hepática por fibrosis destructiva altera irreversiblemente el metabolismo de proteínas y la síntesis de albúmina, conduciendo a cuadros severos de hipoproteinemia e hipotensión oncótica." — José María Balsa [9]

Los signos clínicos cardinales de la infección crónica incluyen:

  • Pérdida progresiva de la condición corporal y emaciación a pesar del consumo adecuado de forraje.
  • Anemia ferropénica y normocítica, manifestada por la palidez de las mucosas ocular y vulvar.
  • Edema submandibular ("cuello de botella" o "quijada de botella") secundario a la hipoalbuminemia severa [9].
  • Trastornos digestivos crónicos, con alternancia de diarrea y estreñimiento, áspera cubierta pilosa y letargia.
  • Ictericia leve en casos de obstrucción biliar avanzada o cirrosis hepática difusa.
Forma ClínicaEspecie PrincipalCarga ParasitariaLesión Histopatológica / MacroscópicaSigno Clínico Característico
AgudaOvinos (raro en bovinos)High (>2,000 inmaduras)Trayectos hemorrágicos, necrosis focal, ruptura de cápsulaMuerte repentina, hemoperitoneo, letargia
SubagudaOvinos y ternerosModerada a AltaHepatitis traumática extensa, fibrosis incipienteAnemia rápida, pérdida de peso, letargia
CrónicaBovinos adultos y OvinosModerada (adultos)Colangitis fibrosa calcificante ("conductos en tubo de pipa")Edema submandibular, emaciación, diarrea
SubclínicaBovinos de engorde / LecheBaja a ModeradaEstenosis biliar localizada, hipertrofia lobularMerma silenciosa de producción y conversión

Impacto Zootécnico en la Condición Corporal y Producción de Leche

Las mermas económicas derivadas de la infección por Fasciola hepatica constituyen uno de los frenos productivos más costosos en la ganadería de carne y leche a nivel mundial.

Métodos efectivos para diagnosticar y tratar Fasciola hepatica
Fig. 4: Evidencia Técnica — Métodos efectivos para diagnosticar y tratar Fasciola hepatica (Daylis Almeida, Mildrey Soca, Patricia G. Cardoso, O. López y A. Sanavría)

En la ganadería de carne, la degradación de la función hepática reduce sustancialmente la eficiencia de síntesis metabólica y el aprovechamiento energético de los nutrientes. Evaluaciones en corrales de engorde (feedlot) demuestran que novillos infectados sufren una caída severa en la ganancia diaria de peso (GDP) de entre 8% y 20%, aumentando significativamente el Índice de Conversión Alimenticia (ICA) y retrasando el tiempo de terminación para faena [30]. Asimismo, el decomiso sistemático de hígados lesionados en los mataderos genera una pérdida directa para la cadena cárnica; por ejemplo, en Perú las pérdidas anuales asociadas a la fasciolosis superan los 50 millones de USD [28], [25].

"El impacto de la fasciolosis en sistemas de confinamiento no se limita al decomiso de la víscera en planta; destruye la eficiencia de conversión del alimento concentrado en músculo, comprometiendo el margen financiero del feedlot." — Ubios, D., La Manna, A., Clariget, J. et al. [30]

En vacunos lecheros, la parasitosis altera el pico de lactancia y acorta la curva de producción. La merma en el volumen de leche oscila entre 0.5 kg y 2.5 kg por vaca/día (caídas acumuladas del 8% al 15% por lactancia). Además, la alteración metabólica induce una menor concentración de sólidos totales (grasa y proteína láctea), afectando el rendimiento quesero. A esto se suman importantes mermas reproductivas, como el incremento en el intervalo entre partos, anestro prolongado y reducción en las tasas de concepción al primer servicio debido al permanente balance energético negativo del animal parasitado [22].

Categoría AnimalParámetro Zootécnico AfectadoMagnitud del ImpactoImpacto Económico DirectoReferencia
Novillos de engordeGanancia Diaria de Peso (GDP)Reducción de 8% a 20%Mayor costo por kg producido y días de corral[30]
Vacas lecherasProducción total de lecheCaída de 8% a 15%Pérdida de litros/vaca/día y sólidos totales[22]
ReproductoresTasa de concepción / CeloReducción del 12% al 25%Aumento de días abiertos e intervalo entre partos[22]
Terneros de recríaCrecimiento y desarrollo muscularRetraso de 10 a 15 kg/añoMenor peso al destete y susceptibilidad a enfermedades[24]
Industria frigoríficaDecomiso de hígados en faenaRechazo del 15% al 70% del lotePérdida de valor de la víscera (>50M USD/año en Perú)[28]

Métodos de Diagnóstico Coprológico y Diferencial Ante Mortem

El diagnóstico oportuno y certero de la fasciolosis requiere integrar el historial epidemiológico de la finca, la sintomatología clínica y metodologías de laboratorio de alta especificidad.

Diagnóstico de Fasciola hepática: métodos y técnicas
Fig. 5: Evidencia Técnica — Diagnóstico de Fasciola hepática: métodos y técnicas (Gustavo A. Morales y Luz Pino de Morales)

El diagnóstico coprológico es el método tradicional más empleado en el campo. Sin embargo, debido a la elevada densidad específica de los huevos de Fasciola hepatica (aproximadamente 1.3 a 1.4 g/cm³), las técnicas estándar de flotación con soluciones salinas o azucaradas son ineficaces, ya que colapsan la estructura del huevo o impiden su ascenso. Por ello, se exige el uso obligatorio de técnicas de sedimentación coprológica (como la técnica de Sedimentación Modificada de Dennis o el Helminto Ovoscópico de Sedimentación) [24]. Los huevos de F. hepatica se identifican por ser operculados, de color amarillo o pardo-amarillento por la tinción biliar, y de gran tamaño (130-150 µm x 60-90 µm) [21].

Es fundamental advertir la limitación de la coprología durante la fase de patencia tardía: la técnica de sedimentación únicamente detecta infecciones por fasciolas adultas maduras presentes en los conductos biliares. Durante las primeras 8 a 10 semanas tras la infección (fase de migración inmadura parenquimatosa), no existe eliminación de huevos en la materia fecal, lo que genera falsos negativos en brotes agudos.

Para superar esta limitación y lograr un diagnóstico ante mortem en fase prepatente, se recurre a:

  1. Perfiles Bioquímicos Hepáticos: Determinación de enzimas plasmáticas. La elevación drástica de la Glutamato Deshidrogenasa (GLDH) y de la Aspartato Aminotransferasa (AST) refleja daño activo al parénquima por fasciolas inmaduras. Posteriormente, el incremento persistente de la Gamma-Glutamil Transferasa (GGT) confirma daño e inflamación en los conductos biliares por estadios adultos [21].
  2. Pruebas Inmunológicas y Moleculares: El ensayo Copro-ELISA permite la detección de antígenos excretores-secretores de Fasciola en heces a partir de la cuarta semana post-infección, mucho antes de que inicie la postura de huevos.
  3. Diagnóstico Diferencial: Es prioritario diferenciar los huevos de Fasciola hepatica de los de paramfistómidos (Paramphistomum spp.). Aunque los huevos de ambos trematodos son de tamaño similar y operculados, los de Paramphistomum son transparentes/translucidos, carecen del tono amarillento característico y resisten coloraciones específicas como el azul de metileno [31].
Método DiagnósticoTipo de MuestraVentana de DetecciónSensibilidad / EspecificidadLimitación PrincipalReferencia
Sedimentación CoprológicaMateria fecal frescaA partir de semana 10-12Moderada (50-70%) / Alta (>95%)No detecta formas inmaduras en migración[24]
Copro-ELISAMateria fecalA partir de semana 4-5Alta (>90%) / Alta (>95%)Requiere equipamiento especializado de laboratorio[21]
Perfil Enzimático (GGT / GLDH)Suero / Plasma sanguíneoA partir de semana 2-3Alta para daño tisular / ModeradaMuestra daño hepático general, no específico del parásito[21]
ELISA Sérico (Anticuerpos)Suero sanguíneoA partir de semana 2-4Alta (>95%) / ModeradaPuede dar positivo por anticuerpos persistentes tras curación[21]
Hallazgos de NecropsiaHígado y cavidad abdominalInmediata100% en animales muertosDiagnóstico post mortem; no sirve para prevención individual[18]

Tratamiento de Fasciola hepatica y Manejo de Resistencia a Triclabendazol

La terapia química contra la fasciolosis requiere la selección rigurosa de principios activos según la fase evolutiva del parásito presente en el hato.

Disertante: David EspinoVer video completo »

Entre las moléculas disponibles, el Triclabendazol destaca por su espectro único, siendo eficaz contra fasciolas adultas, inmaduras tempranas (1 a 6 semanas) e inmaduras tardías (6 a 8 semanas) [12], [18]. Sin embargo, la dependencia exclusiva de este fármaco durante décadas ha generado cepas de F. hepatica resistentes en múltiples regiones ganaderas [27], [29]. Para superar las limitaciones farmacocinéticas orales y facilitar el trabajo de campo, desarrollos farmacológicos como Fasiject Plus combinan Triclabendazol inyectable con Ivermectina, garantizando niveles plasmáticos exactos y una cobertura simultánea contra nemátodos gastrointestinales y pulmonares [17].

"La vía inyectable para combinaciones de Triclabendazol e Ivermectina no solo agiliza el manejo en la manga, sino que asegura la administración de la dosis exacta por kilo de peso vivo, eliminando el riesgo de subdosificación por regurgitación oral." — David Espino [17]

Fármacos alternativos clave incluyen:

  • Closantel: Eficaz contra fasciolas adultas y formas inmaduras de más de 8 semanas. Administrado vía subcutánea (5 mg/kg) u oral (10 mg/kg), presenta un prolongado efecto residual ligado a su alta unión a proteínas plasmáticas [4]. No obstante, en cargas masivas, la lisis súbita de parásitos puede inducir toxicidad por detritus [5].
  • Nitroxinil: Excelente eficacia contra adultos e inmaduras de más de 6 semanas administrado por vía subcutánea (10 mg/kg).
  • Clorsulón: Administrado por vía parenteral (usualmente asociado con Ivermectina a razón de 2 mg/kg de clorsulón), es altamente efectivo contra estadios adultos [7].
  • Albendazol: Exclusivamente efectivo contra fasciolas adultas a dosis elevadas (10 mg/kg), sin acción sobre formas inmaduras parenquimatosas [31].

Para mitigar la resistencia antihelmíntica se debe adoptar un Control Integrado Parasitario (CIP) basado en la rotación estratégica de familias químicas según el ciclo epidemiológico, la calibración estricta de dosificadores para evitar la subdosificación, y la restricción de tratamientos a momentos de alta carga parasitaria comprobada por laboratorio [14], [29], [35].

Principio ActivoVía de AdministraciónDosis RecomendadaEficacia Inmaduras (1-6 sem)Eficacia Inmaduras (6-8 sem)Eficacia Adultos (>10 sem)Referencia
TriclabendazolOral / Subcutánea12 mg/kg (Oral) / 6 mg/kg (SC)Alta (>90%)Muy Alta (>98%)Excelente (99%)[12], [17]
ClosantelSubcutánea / Oral5 mg/kg (SC) / 10 mg/kg (Oral)Nula (<10%)Moderada (60-80%)Excelente (>98%)[4], [5]
NitroxinilSubcutánea10 mg/kg (SC)Baja (<30%)Alta (>85%)Excelente (>98%)[35]
ClorsulónSubcutánea (con Ivermectina)2 mg/kg (SC)Nula (<10%)Moderada (50-70%)Excelente (>98%)[7]
AlbendazolOral10 mg/kg (Oral)Nula (0%)Baja (<30%)Alta (80-90%)[31]

Medidas de Control Ambiental Manejo de Riego y Pastoreo

El control sostenible de la fasciolosis es imposible si se confía únicamente en la quimioterapia antihelmíntica; resulta biológicamente obligatorio intervenir el ambiente para interrumpir la población del hospedador intermediario.

El manejo hidrológico de los potreros es el pilar central del control ambiental. La presencia de agua estancada, zanjas sin drenaje, bebederos con fugas y charcos permanentes crea el microhábitat idóneo para la reproducción descontrolada del caracol Lymnaea [1], [3]. En sistemas con riego, el diseño por inundación promueve la diseminación masiva de metacercarias en toda la superficie de pastoreo; por el contrario, los sistemas de riego por aspersión bien diseñados, combinados con una red adecuada de canales de drenaje, reducen la formación de biótopos limneicos [1], [3].

"La corrección topográfica y el drenaje de pequeñas áreas anegadas en los potreros eliminan los criaderos permanentes del caracol intermediario, reduciendo en más de un 80% la necesidad de tratamientos químicos en los animales." — Lilian Damarys Gelvez [3]

Las medidas higiénico-sanitarias e infraestructura de control incluyen:

  1. Cercado de Áreas de Riesgo: Aislar mediante cercas eléctricas o permanentes las zonas pantanosas, humedales o bordes de arroyos para impedir el acceso del ganado a las áreas con alta densidad de metacercarias [19].
  2. Control Químico y Físico del Molusco: La aplicación de molusquicidas debe realizarse con cautela por su impacto sobre la fauna acuática no objetivo [2]. Se puede utilizar Sulfato de Cobre placing 250 g en bolsas de yute cada 60-100 metros en canales de riego o humedales delimitados durante la estación lluviosa [6]. Asimismo, el encalado de bebederos, comederos y zonas de sesteo (250 g de cal viva por cada 100 litros de agua o esparcida en corrales) altera el pH e inactiva a las poblaciones de caracoles [7], [33].
  3. Manejo del Pastoreo y Fuentes de Infección: Evitar el ingreso de ganado joven (altamente susceptible) a potreros de riesgo. En hatos cerrados donde no hay ingreso de animales externos, debe vigilarse el forraje verde cortado en zonas húmedas o la paja importada, ya que son fuentes frecuentes de introducción de metacercarias [11].
  4. Perspectivas de Inmunización: Investigaciones europeas y latinoamericanas dentro del Proyecto DELYVER avanzan en el desarrollo de vacunas compuestas por antígenos recombinantes (como la Glutatión S-Transferasa o la Catepsina L), las cuales buscan brindar una protección duradera sin generar residuos farmacológicos ni seleccionar cepas resistentes [8].
Punto Crítico de Control (PCC)Etapa del Ciclo / ÁreaParámetro de Control / Limite OperativoAcción Correctiva InmediataReferencia
PCC 1: Calidad del Agua de BebidaBebederos y tanquesBebederos limpios; pH corregido con calLimpieza y encalado (250g cal/100L agua)[7]
PCC 2: Drenaje de PotrerosPraderas con riegoAusencia de agua estancada >48 horasConstrucción de canales de drenaje o sangrías[3]
PCC 3: Aislamiento de HumedalesZonas bajas y ciénagasCero acceso de animales a zonas pantanosasCercado perimetral con alambre o cerca eléctrica[19]
PCC 4: Control de Moluscos en CanalesCanales de riegoDensidad de Lymnaea cercana a ceroAplicación localizada de sulfato de cobre en yute[6]
PCC 5: Diagnóstico Pre-tratamientoHato completoMuestreo coprológico (min. 10% del lote)Sedimentación fecal para confirmar fasciolosis[24]
PCC 6: Elección del FasciolicidaPrograma de desparasitaciónMolécula ajustada al estadio parasitarioUsar Triclabendazol si se sospecha de inmaduras[12]
PCC 7: Dosificación por PesoManga de manejoCalibración de pistola según el animal más pesadoPesaje individual o con cinta torácica[29]
PCC 8: Rotación de MoléculasCalendario zoosanitarioCambio de familia química cada 12-24 mesesAlternar Triclabendazol con Nitroxinil o Closantel[14], [35]
PCC 9: Control de Forraje AportadoAlimentación en pesebreForraje libre de metacercariasNo cortar forraje en bordes de acequias infectadas[11]
PCC 10: Monitoreo Post-TratamientoHato tratadoTest de Reducción de Conteo de Huevos (TRCH)Evaluar TRCH a los 14 días (>95% de eficacia)[10], [29]

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Qué provoca la Fasciola hepatica? A: Provoca la fasciolosis o distomatosis hepática en rumiantes, caracterizada por destrucción del parénquima hepático, fibrosis de los conductos biliares, anemia, hipoproteinemia, severa pérdida de peso y caídas drásticas en la producción de carne y leche [9], [22].

Q: ¿Cómo se elimina la Fasciola hepatica? A: Se elimina administrando fármacos fasciolicidas específicos como Triclabendazol, Nitroxinil o Closantel, complementado con el control ambiental del caracol intermediario mediante drenaje de potreros y encalado de agua [4], [12], [18].

Q: ¿Cómo saber si el ganado tiene parásitos en el hígado? A: Se confirma mediante análisis coprológico por la técnica de sedimentación para detectar huevos, evaluación enzimatica en sangre (GGT y GLDH) para medir daño hepático, o mediante pruebas inmunológicas como Copro-ELISA [21], [24].

Q: ¿Qué caracol transmite la Fasciola hepatica? A: La enfermedad es transmitida por caracoles gasterópodos de agua dulce pertenecientes a la familia Lymnaeidae, siendo las especies más comunes Lymnaea viatrix, Lymnaea cubensis y Lymnaea truncatula [18], [20].

Q: ¿Cómo prevenir la resistencia al triclabendazol en el hato? A: Previene la resistencia alternando familias químicas (como Nitroxinil o Closantel), ajustando la dosis exacta al peso corporal vivo para evitar la subdosificación y aplicando un Control Integrado Parasitario basado en diagnósticos previo [14], [29].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Jorge Fabian Ruiz Herrera: Impacto del Riego en Fasciola Hepática: Aspersión vs. Inundación

  2. Rodriguez Vargas José Fernando: Riego por Aspersión: ¿Beneficio contra Metacercarias?

  3. Lilian Damarys Gelvez: Diseño de Riego y Control de Caracoles Intermediarios

  4. Dr. Iván Cíntora: Closantel: Dosis y espectro de acción

  5. Paulo César Romero Garcìa: Closantel: Acción y desventajas en fasciolasis

  6. Pedro Arenas Florez: Sulfato de Cobre: Control de Caracoles en Humedales

  7. mvz enrique bañuelos vidauri: Alternativas Farmacológicas para Fasciola Hepática

  8. Giovanni Ibañez Diaz: Vacunas contra Fasciola: Avances y Perspectivas

  9. José María Balsa: Causas y Diagnóstico de Hipoproteinemia en Bovinos

  10. Carlos Alberto Vergara Obando: Estudios de Resistencia Antihelmíntica en Ganadería Lechera

  11. Alfredo Delgado: Identificación de fuentes de infección de Fasciola en hatos cerrados

  12. Alfredo Delgado: Triclabendazole: Eficacia contra Fasciola hepática inmadura y efectos

  13. Ivan Minchala: Estrategias para el control del caracol hospedador de Fasciola

  14. Wilson Julio Shimizu LLerena: Rotación de fasciolicidas: Estrategia contra la resistencia de Fasciola

  15. André Díaz Pino: Incidencia y control de Fasciola hepática en ganado estabulado de sierra

  16. Angel Villavicencio: Prevalencia de Fasciolosis en bovinos de sierra: Ecuador y Perú

  17. David Espino: Fasiject Plus: Solución inyectable para Fasciola hepática en bovinos

  18. Daylis Almeida, Mildrey Soca, Patricia G. Cardoso, O. López y A. Sanavría: Métodos efectivos para diagnosticar y tratar Fasciola hepatica

  19. Dr. Federico de Freitas: Estrategias de control de Fasciola hepática en ganado

  20. Artículos de ganadería por Agrovet Market: Ciclo de vida Fasciola hepatica

  21. Gustavo A. Morales y Luz Pino de Morales: Diagnóstico de Fasciola hepática: métodos y técnicas

  22. César Fiel: Impacto económico de Fasciola hepática

  23. M. Pérez-Orphee: Reproducción y ciclo de Fasciola hepatica

  24. Y. Díaz-Ferrá: Alta prevalencia de Fasciola hepatica en bovinos de Viñales

  25. Juan De Dios Rojas Moncada: Pérdidas económicas por fasciolosis en bovinos Perú

  26. Gustavo A. Morales y Luz Pino de Morales: Infestación prenatal de Fasciola en becerros

  27. Apóstolo R. et al.: Factores de Resistencia a Antiparasitarios en Fasciola

  28. Juan de Dios Rojas Moncada: Fasciolosis: 50 Millones USD en Pérdidas Anuales

  29. Juan de Dios Rojas Moncada: Causas de la resistencia a triclabendazol en Fasciola hepatica

  30. Ubios, D., La Manna, A., Clariget, J., Canozzi, M. E., Saravia, A. y Banchero, G.: Impacto de Fasciola hepática en conversión alimenticia de novillos

  31. Silvia Paucar S., Amanda Chávez V., Eva Casas A., Fidel Suárez A.: Antiparasitarios para Fasciola y Paramfistómidos

  32. gislen jhamil vallejos ferrufino: Fasciola hepática: Ciclo de vida y impacto en bovinos

  33. Hector Lopez Acosta: Fases de Fasciola Hepática: Estrategias de Combate

  34. gislen jhamil vallejos ferrufino: Transmisión y prevención de Fasciola hepática

  35. Vidal Torres Bernal: Manejo Integral de Fasciola: Fármacos y Control Ambiental

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Silvia Marise Stavis
Silvia Marise Stavis
Jefe Departamento de Microbiologia · Facultad de Ciencias Veterinarias UNA
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