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Leucosis Bovina Enzoótica (BLV): Síntomas, Transmisión, Diagnóstico y Protocolos de Control en Hatos Lecheros

La leucosis bovina enzoótica en hatos lecheros: síntomas, transmisión y control es una enfermedad oncogénica provocada por un Deltaretrovirus que infecta linfocitos B bovinos. Su prevención y control se implementan mediante diagnóstico por ELISA, desinfección de material iatrogénico y segregación serológica, manteniendo umbrales de prevalencia cero y leucocitos bajo 10.000/µL, lo que previene linfosarcomas y optimiza la producción láctea [1].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: La leucosis bovina enzoótica en hatos lecheros es causada por el Deltaretrovirus de la leucemia bovina que destruye la inmunidad celulomediada.
  • Impacto Cuantitativo: Pérdidas económicas de hasta $5.300 USD por vaca, extensión del intervalo entre partos en 21 días e incremento directo del descarte involuntario.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Diagnóstico serológico por ELISA y PCR proviral, recambio estricto de agujas e higienización a 65 °C del calostro materno.

Agente Causal y Patogenia del Virus de la Leucosis Bovina (BLV)

El Virus de la Leucosis Bovina es un deltaretrovirus envuelto que integra su ADN proviral directamente en el genoma de los linfocitos B del hospedador. La infección persistente altera los mecanismos de replicación celular, promoviendo una proliferación neoplásica incontrolada en los tejidos linforeticulares del ganado bovino [5].

Estrategia de Replicación Pro-Viral y Persistencia Inmunitaria

El virus utiliza las glicoproteínas de envoltura gp51 y p24 para unirse a los receptores de superficie celular e invadir linfocitos B de memoria. Una vez que la transcriptasa inversa viral sintetiza el ADN proviral, este se inserta en el genoma celular de forma irreversible, evadiendo la neutralización por anticuerpos circulantes y perpetuando la infección de por vida [5]. La tasa de carga proviral en sangre periférica dicta la probabilidad de progresión desde una fase asintomática hacia estadios linfoproliferativos [15].

Componente Genómico / ProteínaFunción Fisiopatológica en el HospedadorRepercusión en Inmunidad y PatogeniaCita Técnica
Glicoproteína de Envoltura (gp51)Mediador de unión a receptores de membrana en linfocitos BObjetivo primario en diagnóstico ELISA y neutralización humoral[17]
Proteína de Cápside (p24)Estructura del núcleo viral interna y empaquetamiento del ARNIndicador de replicación activa y maduración de partículas virales[5]
Integrasa ViralCataliza la inserción del ADN proviral en el cromosoma bovinoEstablecimiento de la infección latente e irreversible a escala hato[15]
Gen Tax/RexRegulación transcripcional y modulación del ciclo celular del leucocitoDesinhibición mitótica e inducción de linfocitosis persistente[5]

Modulación del Sistema Inmunitario y Sinergismo Metabólico

La infección crónica por el BLV deprime la respuesta inmune celular al alterar la señalización entre linfocitos T auxiliares (CD4+) y citotóxicos (CD8+). Este estado de inmunosupresión subclínica incrementa la susceptibilidad del hato a coinfecciones secundarias, como mastitis ambiental, metritis posparto y complejos respiratorios [5]. Adicionalmente, el estrés inmunofisiológico se ve catalizado por agentes inmunodepresores presentes en la ración diaria, principalmente micotoxinas.

"La inmunosupresión causada por micotoxinas y el estrés de confinamiento agrava la manifestación clínica de la enfermedad, haciendo crucial el control integral de la dieta en el rodeo." — Alfredo Delgado, Universidad Nacional Mayor de San Marcos [24]

Agente Inmunosupresor o Co-factorMecanismo de Sinergismo con BLVEfecto Zootécnico en la Vaca LecheraCita Técnica
Micotoxina T-2Inhibición de la síntesis proteica en tejido linfoide y macrófagosElevación de la carga proviral circulante y mermas en leche[25]
Aflatoxina B1Citotoxicidad hepática y alteración de la respuesta humoralFallos en la vacunación y mayor frecuencia de diarreas[22]
Estrés por ConfinamientoElevación de cortisol sérico y supresión de interferón gammaManifestación acelerada de enfermedades subclínicas[12]
Virus de la DVBCitopatogenia combinada con leucopenia de B-linfocitosInmunodepresión severa y fallas reproductivas masivas[23]
Efectos del BLV en inmunidad y producción lechera
Fig. 1: Evidencia Técnica — Efectos del BLV en la función inmune periférica y la síntesis láctea en animales infectados (Daniela Paternina B., Marco González T., Salim Mattar V.)

Síntomas Clínicos y Lesiones Histopatológicas por Leucosis Enzoótica Bovina

Los síntomas de la leucosis bovina oscilan desde infecciones asintomáticas en más del 65% de los animales infectados hasta linfosarcomas fulminantes en el 5% del hato lechero. La forma tumoral genera cuadros multiorgánicos severos atribuibles a la infiltración neoplásica de tejidos linfoides y parenquimatosos [15].

Fases Clínicas y Expresión Patológica del Complejo BLV

La enfermedad se manifiesta en tres fases principales:

  1. Fase Asintomática o Portador Silencioso: El animal presenta seropositividad a anticuerpos o provirus positivo sin alteraciones en la fórmula leucocitaria.
  2. Linfocitosis Persistente (LP): Ocurre en el 30% a 35% de los animales infectados mayores de 3 años, caracterizada por una elevación permanente del conteo absoluto de B-linfocitos por encima de 10.000 células/µL sin signos tumorales evidentes [13].
  3. Linfosarcoma Maligno: Presente en un 1% a 5% de los bovinos adultos, con infiltración neoplásica metastásica que culmina en la muerte del animal [7].
Secuencia Fisiológica / EtapaDinámica Metabólica / Mecanismo Operativo
Etapa / Eslabón del ProcesoDinámica Operativa / Mecanismo
Fase Asintomática (65%)Leucocitos > 10.000/µL persistentes
Linfocitosis Persistente (30-35%)Infiltración tumoral sistémica y muerte clínica
Linfosarcoma Maligno1-5%

Hallazgos Anatomopatológicos y Diagnóstico Diferencial

Las lesiones neoplásicas microscópicas y macroscópicas afectan predominantemente a los linfonodos periféricos y retroperitoneales, abomaso, corazón (aurícula derecha), espacio epidural espinal y matriz uterina [17]. La presión mecánica provocada por masas tumorales de consistencia blanco-cremosa induce cuadros específicos según el órgano infiltrado.

Órgano o Tejido AfectadoSignología Clínica ManifestadaLesión Macroscópica / HistopatológicaCita Técnica
Linfonodos PeriféricosLinfoadenomegalia bilateral o unilateral sin calor ni dolorHiperplasia folicular neoplásica e invasión del estroma[17]
Abomaso (Pared de la mucosa)Úlceras abomasales, melena, atony ruminal y emaciaciónEngrosamiento difuso de la pared abomasal con tumores[15]
Aurícula Derecha / MiocardioInsuficiencia cardíaca congestiva, edema en papada y yugularInfiltrados linfoides blanquecinos infiltrando fibras[17]
Canal Canalicular / Canal EspinalParaplejía progresiva, ataxia y paresia de miembros posterioresCompresión extradural por masa linfosarcomatosa[15]

"Para un diagnóstico preciso de leucosis bovina se deben enviar muestras de suero para ELISA y tejido tumoral para histopatología, diferenciándola estrictamente de tuberculosis y hematuria enzoótica." — Alfredo Delgado, Universidad Nacional Mayor de San Marcos [17]

Es vital no confundir los síntomas de la leucosis enzoótica con la Hematuria Enzoótica Bovina (causada por el consumo prolongado de helecho macho Pteridium aquilinum) [33] ni con afecciones podales o infecciosas sistémicas como la linfangitis, la cual disminuye la producción de leche en un 58,6% por causas bacterianas no asociadas a retrovirus [35].

Vías de Transmisión Parenteral, Vertical e Iatrogénica del BLV

La transmisión del Virus de la Leucosis Bovina requiere la transferencia física de células linfocíticas viables infectadas con el provirus de un animal a otro. La vía iatrogénica mediante prácticas veterinarias sin desinfección es el vector de dispersión epidemiológica más destructivo en los sistemas lecheros intensivos [4].

Transmisión Iatrogénica y Vectores Hematófagos

El volumen de sangre microescala (tan pequeño como 1 microlitro) transferido en una aguja reutilizada contiene suficiente número de linfocitos infectados para transmitir el provirus a una vaca receptora susceptible [19].

Prevención de transmisión iatrogénica de VLB
Fig. 2: Evidencia Técnica — Control de la contaminación cruzada iatrogénica en maniobras profilácticas y sanitarias (Dr. Rodrigo Puentes)

Las principales maniobras de riesgo en la rutina diaria del tambo incluyen:

  • Reutilización de agujas hipodérmicas en aplicaciones vacunales o infectomejo masivo [19].
  • Guantes de palpación rectal compartidos entre vacas durante el diagnóstico de gestación [2].
  • Instrumental de descorné, marcaje, descole, o instrumental quirúrgico desprovisto de esterilización entre usos [2].
  • Vectores biológicos hematófagos, como tábanos (Tabanidae) y mosca de los cuernos (Haematobia irritans), que transportan células sanguíneas en sus piezas bucales [14].

"Cada animal debe ser inoculado con una aguja nueva y descartable. La reutilización de instrumental es el vehículo primario de dispersión de la leucosis, anaplasmosis y paratuberculosis en el tambo." — Luis Felipe Ruiz Garcia, Especialista en Sanidad Bovina [19]

Transmisión Vertical y Perinatal por Calostro y Leche

La transmisión vertical in utero ocurre en un 4% a 18% de los terneros nacidos de madres seropositivas con alta carga proviral. No obstante, el mayor riesgo posnatal radica en el suministro de calostro crudo o leche entera infectada proveniente de vacas positivas [6].

+-- In Utero (4% - 18% Transplacentaria en Madres de Alta Carga)

Categoría ACategoría B
Transmisión --+-- Perinatal (Paso por el Canal del Parto y Contacto Hemático)—
Categoría ACategoría B
Posnatal (Ingestión de Calostro / Leche Entera Infectada)—

La ingesta de calostro crudo con linfocitos viables representa la ruta principal de infección en la crianza artificial de terneras, por lo que su tratamiento térmico es mandatorio [6], [31].

Métodos de Diagnóstico Para Leucosis Bovina: ELISA, PCR y Títulos Antibody

El diagnóstico preciso del Virus de la Leucosis Bovina exige discriminar entre la respuesta inmune humoral y la presencia directa del ADN proviral en la célula leucocitaria. La selección del método analítico depende de la edad del bovino, el estado fisiológico y la prevalencia global del hato [17].

Técnicas Serológicas y Moleculares de Laboratorio

Las pruebas estándar para la detección de la infección por el BLV son:

  1. ELISA Indirecto / De Competición (Suero o Leche de Tanque): Presenta una sensibilidad >98% y especificidad >99% para detectar anticuerpos IgG1 contra las proteínas gp51 y p24 [17].
  2. PCR en Tiempo Real (qPCR): Identifica y cuantifica las copias del ADN proviral integrado en los leucocitos sanguíneos. Es la técnica de elección para diagnosticar terneros menores de 6 meses que presentan anticuerpos calostrales pasivos y para clasificar animales portadores de alta viremia [5].
  3. Inmunodifusión en Gel de Agar (IDGA): Método clásico de menor sensibilidad, reservado históricamente para certificación internacional [17].
Método de DiagnósticoTipo de Muestra RequeridaLímite de Detección / SensibilidadAplicación Zootécnica RecomendadaCita Técnica
ELISA en Leche ColectivaLeche del tanque de fríoDetecta hasta 1% de prevalencia en el tanqueMonitoreo epidemiológico continuo del tambo[17]
ELISA en Suero IndividualSangre entera / SueroAlta sensibilidad en animales >6 mesesCribado individual y segregación de positivos[17]
qPCR Proviral en SangreSangre con anticoagulante EDTADetecta <10 copias de ADN proviral/µgEvaluación en terneros y vacas en periparto[5]
HistopatologíaBiopsia tumoral en formol 10%Diagnóstico confirmatorio en necropsiasIdentificación de linfosarcoma neoplásico[17]

Consideraciones Críticas en el Período Peripartal

El diagnóstico serológico en vacas lecheras sufre interferencias drásticas durante la ventana peripartal debido a la transferencia masiva de inmunoglobulinas séricas hacia la glándula mamaria para la formación del calostro [27].

"Se debe evitar la toma de muestras suero para diagnóstico serológico de Leucosis Bovina entre los 20 días previos al parto y los 60 días posparto para prevenir falsos negativos causados por la inmunosupresión e inmunodepleción del periparto." — Dra. Ana Meikle, Universidad de la República [27], [28]

Window de Diagnóstico Inválido por Inmunosupresión e Immunodepleción de IgG:

[ ---------- 20 Días Preparto ---------- PARTO ---------- 60 Días Posparto ---------- ]

^ NO MUESTREAR SUERO ^

Impacto de la Leucosis Bovina en la Producción de Leche y Parámetros Reproductivos

La leucosis bovina no es únicamente una patología tumoral, sino un flagelo económico subclínico que socava el margen bruto de la empresa lechera. El deterioro progresivo de la inmunidad y la disfunción celular reducen el pico de lactancia, extienden los días abiertos y acortan la vida útil de la vaca [3], [9].

Cuantificación de Pérdidas Económicas en el Tambo

El costo financiero de la seropositividad a BLV en rodeos lecheros comprende mermas directas e indirectas:

  • Pérdida en Litros de Leche: Reducción comprobada del 2,5% al 5% de la producción total por lactancia en animales subclínicos de alta carga proviral [5], [9].
  • Extensión del Intervalo Entre Partos (IEP): Las vacas seropositivas jóvenes (1 y 2 lactancias) experimentan un retraso promedio de 21 días en la concepción en comparación con sus pares seronegativas [8].
  • Descarte Prematuro Involuntario: Incremento sustancial en las tasas de reemplazo anuales, superando el promedio nacional del 30%-35% debido a fallas reproductivas y bajas producciones [10], [11].
  • Muerte por Linfosarcoma: Pérdida patrimonial directa valorada en hasta $5.300 USD por vaca muerta o descartada por tumores en rodeos de alta genética [3], [7].
LBE y IEP en Lechería: Diferencia de 21 días en vacas jóvenes
Fig. 3: Evidencia Técnica — Proyección de la brecha en el Intervalo Entre Partos (IEP) entre vacas seropositivas y seronegativas (Juan José Romero Zúñiga)
Parámetro Productivo / ReproductivoImpacto en Animales Sanos (BLV-)Impacto en Animales Infectados (BLV+)Pérdida Económica / ZootécnicaCita Técnica
Rendimiento Lácteo por Lactancia100% de la curva esperadaCaída de 2,5% a 5,0% del volumenPérdida de 250 a 500 L/vaca/año[5]
Intervalo Entre Partos (IEP)Baseline de 380-395 díasRetraso adicional de 21 díasIncremento de días abiertos y costos IATF[8]
Tasa de Descarte Involuntario25% a 30% anualElevación al 38% - 45% anualReemplazo prematuro de vaquillonas[10]
Valor de Desecho / Muerte TumoralValor pleno de carne en frigoríficoPérdida total por decomiso sanitarioPérdida neta de hasta $5.300 USD/caso[3], [7]
Pérdidas por LVB en Lechería: Leche, Becerros, Días Abiertos y Diagnóstico
Fig. 4: Evidencia Técnica — Estructura del impacto económico integral de la leucosis viral bovina en la empresa lechera (L.R. Godoy)

Aunque el virus no causa abortos de forma directa por citopatogenia fetal (a diferencia de Neospora caninum o el virus de la DVB), la desnutrición progresiva y la falla multiorgánica generada por los linfosarcomas provocan la pérdida de la gestación en la fase terminal del bovino [21].

Medidas de Prevención, Bioseguridad y Control de la Leucosis Bovina

El control efectivo de la leucosis bovina exige un protocolo estructurado de bioseguridad que erradique las vías de contagio iatrogénico, impida la transmisión vertical a la guachera y aplique un esquema de segregación física o manejo diferenciado de los animales seropositivos [1], [2].

Matriz de Puntos Críticos de Control (PCC) en Bioseguridad

A continuación se detalla la matriz de 10 Puntos Críticos de Control para contener y erradicar el BLV en rodeos de leche:

Punto Crítico de Control (PCC)Acción Bioseguridad RequeridaParámetro Operativo u ObjetivoCita Técnica
PCC 1: Inoculaciones y VacunaciónCambio estricto de aguja por animal1 aguja descartable por vaca tratada[19]
PCC 2: Manejo Reproductivo / PalpaciónGuantes rectales de un solo uso1 guante de manguita por vaca palpada[2]
PCC 3: Alimentación de la GuacheraPasteurización del calostroCalentamiento a 60 °C a 65 °C por 30 min[6]
PCC 4: Sustituto Lácteo en TernerasReemplazo de leche entera no tratadaUso de alimentador en polvo o acidificado[31]
PCC 5: Descorne e Instrumental QuirúrgicoDesinfección química entre animalesInmersión en amonio cuaternario o fuego[2]
PCC 6: Control de Vectores HematófagosAplicación de insecticidas/repelentesReducción de tábanos y mosca de cuernos[14]
PCC 7: Reposición de VaquillonasCuarentena y doble prueba ELISACero ingreso de animales seropositivos[11]
PCC 8: Segregación del RodeoSeparación de animales de alta viremiaAgrupamiento físico de positivos y negativos[1]
PCC 9: Eliminación GradualCriterios de descarte de seropositivosSalida prioritaria de vacas con LP[1]
PCC 10: Monitoreo de Tanque de FríoELISA en leche colectiva semestralSeguimiento de la seroprevalencia hato[17]
Control de LVB: Segregación y eliminación gradual de positivos
Fig. 5: Evidencia Técnica — Protocolo de segregación por grupos y eliminación progresiva de vacas lecheras seropositivas (Montaño M.F.G. et al.)

Erradicación Frente a Convivencia Manejada

En tambos con seroprevalencias elevadas (>50%), la eliminación inmediata de todos los animales positivos es inviable desde el punto de vista financiero. La estrategia recomendada consiste en la "convivencia limpia": cortar la transmisión iatrogénica y vertical para garantizar que las vaquillonas de reposición ingresen 100% libres al rodeo en ordeñe, reemplazando progresivamente a las vacas viejas infectadas [1], [3], [16].

"La estrategia para combatir la leucosis debe enfocarse en limpiar el rodeo sin sacrificar masivamente animales, interrumpiendo el ciclo de contagio con baja inversión y cambios estrictos de manejo." — Karina G. Trono, Instituto de Virología INTA [3]

Debates sobre Leucosis Enzoótica Bovina y Salud Humana: Evaluación de Zoonosis y Bioseguridad

El potencial zoonótico del Virus de la Leucosis Bovina ha sido objeto de investigaciones epidemiológicas internacionales debido a su cercanía filogenética con el virus T-linfotrópico humano (HTLV-1).

Evidencia Científica y Posición Sanitaria Oficial

La Organización Mundial de la Salud (OMS), la Organización Mundial de Sanidad Animal (OMSA) y las autoridades sanitarias de referencia (como el SENASA y el SAG) no consideran formalmente al BLV como un agente zoonótico patógeno directo para la especie humana. Las razones técnicas clave incluyen:

  1. Ausencia de Replicación Efectiva en Tejido Humano: Aunque se han identificado secuencias parciales de ADN proviral mediante técnicas ultrasensibles de PCR en bioptatos mamarios humanos en estudios aislados, no se ha demostrado la presencia de viriones infecciosos con capacidad replicativa.
  2. Inactivación Térmica Completa en Procesos Industriales: La pasteurización estándar de la leche (72 °C durante 15 segundos o 63 °C durante 30 minutos) destruye irreversiblemente la envoltura lipídica del retrovirus y la viabilidad de los leucocitos infectados [6].
  3. Barreras de Inmunidad Inespecífica y Envoltura Viral: El jugo gástrico y los mecanismos de digestión enzimática destruyen la cápside viral p24 en caso de ingestión accidental de leche cruda.

Sin embargo, el control de la leucosis bovina se mantiene como una prioridad de salud pública e inocuidad alimentaria. El aseguramiento de leche sana proveniente de rodeos libres garantiza estándares internacionales de comercialización y protege la sustentabilidad biológica de la cadena láctea [11].

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cómo se transmite la leucosis bovina entre las vacas del tambo? A: Se transmite mediante la transferencia de sangre o fluidos con linfocitos infectados, provocada por agujas compartidas, manguitas de palpación reusadas, ingestión de calostro crudo y picaduras de insectos hematófagos [4], [19].

Q: ¿Existe algún tratamiento curativo para la leucosis bovina? A: No existe ningún tratamiento médico, antiviral ni vacuna comercial curativa para la leucosis bovina. El control se fundamenta exclusivamente en bioseguridad, diagnóstico serológico y segregación de infectados [1], [2].

Q: ¿La leucosis bovina provoca abortos directos en las vacas lecheras? A: El virus no es un agente abortivo directo, pero la falla orgánica terminal y el deterioro metabólico causado por los linfosarcomas pueden ocasionar la pérdida de la gestación.


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Montaño M.F.G1., Godoy L.R.F1., Rentería, T.B.E1., Montaño M.F.H2 ., Vega M.A.C1., Melendrez J.L1., Valenzuela R.M.P1., Arango M.L.P.1, Corral A.M.,1 y Sanchez, L.R.S1.: Control de LVB: Segregación y eliminación gradual de positivos

  2. Ing. Jhezabel Santamaría, Julio Paredes Muñoz: Bioseguridad para control de BLV en lechería

  3. Trono, Karina G.: Pérdidas por LBE en Lechería: $5300 USD/vaca en Argentina

  4. Dr. Rodrigo Puentes: Prevención de transmisión iatrogénica de VLB

  5. Daniela Paternina B., Marco González T., Salim Mattar V.: Efectos del BLV en inmunidad y producción lechera

  6. Franklin Riet Correa: Pasteurización de Calostro para Leucosis

  7. Karina Trono: Pérdidas por Leucosis Bovina en Lechería

  8. Juan José Romero Zúñiga: LBE y IEP en Lechería: Diferencia de 21 días en vacas jóvenes

  9. L.R. Godoy: Pérdidas por LVB en Lechería: Leche, Becerros, Días Abiertos y Diagnóstico

  10. Juan José Romero Zúñiga: BLV Aumenta Tasa de Descarte en Lechería

  11. Claudio E. Glauber: Enfermedades Prevalentes y Prevención en Tambos

  12. Claudio E. Glauber: Impacto del Estrés por Confinamiento en Vacas Lecheras

  13. E. Montejo Cuenca; O. Martínez Yero; F. Pérez Freeman; O. Mendoza Porras; J. Duvergel Rosseaux y W. Ramirez Sánchez. y W. Sosa Tamayo.: Diagnóstico temprano de estrés nutricional en bovinos por sequía

  14. Servelio Hernandez: Prevención de Leucosis Bovina: Bioseguridad y Manejo

  15. Alfredo Delgado: Leucosis Bovina Enzoótica: Diagnóstico y Manejo en Lechería

  16. Dr. Patricio Sandoval: Leucosis Bovina: Convivencia vs. Erradicación

  17. Alfredo Delgado: Diagnóstico de Leucosis Bovina: ELISA y Diferenciales

  18. Enrique Loor M: Impacto Económico y Reproductivo de la Leucosis Bovina

  19. Luis Felipe Ruiz Garcia: Riesgo de transmisión de Leucosis Bovina por agujas

  20. Arturo Jacinto Guala: Factores Multifactoriales en Leucosis Bovina

  21. Alfredo Delgado: Leucosis Bovina: ¿Causa de Abortos en Ganado Lechero?

  22. Edgardo Grenon: Micotoxinas y Leucosis Bovina: Impacto en la Salud del Ganado

  23. Dr. Gonzalo Leaniz: Interacción de Micotoxinas, Leucosis y BVD en Lechería

  24. Alfredo Delgado: Leucosis Enzootica Bovina: Impacto en el Sistema Inmune

  25. Marien Albertina Murillo Ruiz: Micotoxinas T2: Catalizador de Leucosis en Ganado

  26. Alfredo Delgado: Relación Leucosis Enzoótica y IBR en Bovinos

  27. Meikle Ana: Inmunosupresión periparto y diagnóstico de Leucosis

  28. D. Guggeri et al.: Evitar diagnóstico de Leucosis Bovina en periparto

  29. Jose Fernando Jaramillo Noguera: Enfermedades Transmitidas por Calostro en Terneras

  30. Cristian Dieterich: Síntomas y Efectos de Micotoxicosis en Lechería

  31. Umberto Francesa: Riesgos de Enfermedades por Leche Contaminada en Terneras

  32. Hector Jaime Aricapa Giraldo: Micotoxicosis: Diarrea, baja leche y quistes en bovinos

  33. Hugo Sanchez Guerrero: Hematuria Enzoótica Bovina: Causa y Riesgos

  34. Avimetría: Transmisión y patogenicidad de Leucosis Aviar

  35. Paz–Calderón M.1, Caicedo R.E.1: Linfangitis reduce producción lechera en 58.6%

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