Diagnóstico de la paratuberculosis bovina en Jalisco, mediante técnicas de biología molecular y estandarizadas

Publicado: 18 de agosto de 2020

Por: Hugo Castañeda Vázquez*1 Martha Alicia Castañeda Vázquez1 Carlos Bedolla Cedeño2 Erika Patricia Salas Castañeda1, Wilfried Wolter 3, Raymundo Ventura Angulo. 1 Padilla Ramirez Francisco J1. 1Centro Universitario de Ciencias Biológicas y Agropecuarias, Universidad de Guadalajara Jalisco, México. 2Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo Morelia, Michoacán. 3Landesbetrieb Hessisches Landeslabor, Giessen Hessen, Germany.

Resumen

En el presente trabajo analizamos diferentes métodos de diagnóstico, bacteriológico, por PCR y serológico por pruebas de ELISA, tomas de 25 diferentes establos lecheros en la zona de los Altos de Jalisco. Se tomaron 100 muestras de heces fecales directamente del recto de las vacas, estas fueron sembradas utilizando el medio de Herrold con Micobactina J (0.2 μg/ml), e incubadas a 37° C durante un periodo de 8 a 20 semanas, obteniendo crecimiento con características de M. paratuberculosis en 23 de los tubos cultivados (23%). De esas 23 muestras se realizó tinción con la técnica de Ziehl-Neelsen, obteniendo resultados positivos en 18 de los casos (18% del total de muestras sembradas). En el caso de la prueba de PCR de 25 cultivos sospechosos, obtuvimos 3 resultados positivos. Y en la prueba de ELISA de los 25 sueros sospechosos se obtuvo una muestra positiva. Mediante las pruebas diagnósticas realizadas en el presente trabajo, pudimos observar que el problema de la paratuberculosis es una enfermedad infecciosa importante en bovinos lecheros en el estado de Jalisco y por reportes de otros autores en el País. Son necesarios más investigaciones para conocer de forma más detallada la epidemiologia de la enfermedad de Johne.

Palabras clave; Mycobacterium avium subespecies paratuberculosis, Diagnostico, vacas lecheras, reacción en cadena de la polimerasa PCR, prueba de ELISA.

INTRODUCCIÓN

La Paratuberculosis o enfermedad de Johne es una enfermedad infecciosa que se describió por primera vez en Alemania en 1895. La enfermedad causa una enteritis granulomatosa infecciosa específica, principalmente en los rumiantes, que se manifiesta en diarreas persistentes o recurrentes, las que no remiten a los tratamientos, con presencia de bacilos ácido alcohol resistente en las heces.

En el año de 1978 fue descrito por primera vez el aislamiento del microorganismo Mycobacterium avium subesp. paratuberculosis, en el ganado bovino de México.

Ha sido observado que uno de los principales problemas para el control y tratamiento o eliminación de la enfermedad, es la detección diagnóstica de los animales enfermos subclinicamente, estas dificultades limitan el conocimiento de su distribución geográfica.

En el estado de Jalisco no existen estudios que nos muestren la dimensión del problema de Paratuberculosis, y hoy día existe más interés por parte de los médicos veterinarios y los ganaderos productores de leche, por conocer la presencia de la enfermedad y poner en práctica alternativas sustentables para su diagnóstico y control.

Para la Paratuberculosis o Enfermedad de Johne, se han desarrollado pruebas de diagnóstico para identificar el agente causal, sin embargo algunas no son evaluadas en condiciones de campo para relacionar la respuesta inmunológica con los signos clínicos de animales infectados por Mycobacteruim avium subespecie paratuberculosis (bacilo de Johne), y desarrollar un programa de control efectivo.

Por lo que se plantea la utilización de algunas pruebas como el cultivo de tejidos o fecal, tinción de Ziehl-Neelsen, enzimas inmunoabsorbentes (ELISA) y prueba de reacción en cadena de la polimerasa en heces (PCR), que han demostrado ser efectivas, aunque no por si solas. El presente trabajo pretende eficientar la combinación de estas técnicas y el esquema de su utilización.

Jalisco es actualmente productor de más de 5 millones de litros de leche diarios y cuenta con más de 400,000 vacas lecheras, lo cual destaca la importancia de esta actividad económica para el Estado. El presente trabajo, plantea, la investigación de M. paratuberculosis en el ganado bovino lechero del Estado de Jalisco, debido a que actualmente se desconoce la epidemiología de la enfermedad, logrando con ello realizar un control adecuado de la misma.

Aislar e identificar el Mycobacterium avium subespecie paratuberculosis, mediante técnicas, bacteriológicas, serológicas y de biología molecular, de muestras de bovinos lecheros en el estado de Jalisco. Mediante comparación, resaltar el método diagnóstico más efectivo para M. paratuberculosis en ganado bovino lechero.

MATERIAL Y MÉTODOS

Toma de muestras

El presente trabajo se realizó en la región de los altos de Jalisco y en el área conurbada de Guadalajara, siendo la primera una de las cuencas lecheras más importantes del País.

Se llevaron a cabo 25 muestreos durante un periodo de seis meses, en el 2008, 20 en el área de los altos de Jalisco y 5 en al área conurbada de Guadalajara.

Tipo de muestras

En cada uno de los 25 diferentes ranchos se tomaron muestras de sangre y heces fecales.

Asépticamente y con el sistema vacutainer, se tomaron en cada establo 5 muestras de sangre de 5 vacas al azar. De las mismas vacas se tomaron 5 muestras de heces fecales réctales.

En cada establo se identificaron a las vacas para enseguida tomar 10 muestras de heces fecales de 10 vacas y enseguida 10 muestras de sangre.

Aislamiento microbiológico

Las muestras de las heces fecales tomadas de vacas lecheras fueron sembradas utilizando el medio de Herrold con Micobactina J (0.2 μg/ml), e incubadas a 37° C durante un periodo de 8 a 20 semanas.

Técnicas de Biología Molecular

El aislamiento del ADN geonómico se realizó recolectando de 3 a 5 colonias de un cultivo reciente de M. paratuberculosis. Las colonias fueron homogenizadas en 50 μL de solución amortiguadora TE (10 mmol de Tris HCl/L, 1 mmol de EDTA/l, pH 8.0), enseguida se agregó 1 μL de lysostafina (1.8 U/μl). Después de incubar 1 h a 37°C, se añadió 1 μL de proteinasa K (15.1 mg/mL) y la suspensión se re incubó durante 2 h a 56°C. La proteinasa K fue finalmente inactivada mediante la ebullición de la mezcla durante 10 min. Después de centrifugar a 10 000 g durante 5 min, el sobrenadante fue enfriado en hielo para posteriormente utilizarlo en PCR.

Para la amplificación mediante PCR, la mezcla de reacción (20 μL) contendrá 0.7 μL del cebador 1 (10 pmol/μL), 0.7 μL del cebador 2 (10 pmol/μL), 0.4 μL del trifosfato desoxinucleósido (10 mmol/L; MBI), 2.0 μL del amortiguador termofílico 10 x, 1.2 μL de MgCl2 (25 mmol/L), 0.1 μL de la Taq ADN polimerasa (5 U/μL), y 12.9 μL de agua destilada. Finalmente se agregaran 2.0 μL del ADN preparado a cada uno de los tubos de 0.2 mL.

Primers para la identificación: 5‘TGG ACA ATG AGC GTT ACG GAG GTG G-3‘ y 5‘-GAT CGG AAC GTC GGC TGG TCA GGA T-3‘, fueron diseñados a partir de la secuencia de inserción IS900. Las condiciones de los ciclos son las que se indican a continuación: Desnaturalización inicial 94° C/ 3min; 93° C/ 1 min.; 65° C / 1 min.; 72° C/ 1 min., 30 repeticiones, una extensión final de 72° C por 3 minutos.

Los productos amplificados se corrieron en un gel de agarosa al 2%, siendo los productos finales del amplificado de 453 pares de bases.

RESULTADOS

De las 100 muestra tomadas de heces fecales de vacas lecheras directamente del recto del animal, se realizaron cultivos en medios de Herrold con Micobactina J, previa purificación del excremento,obteniendo crecimiento con características de M. paratuberculosis en 23 de los tuboscultivados (23%).

De esas 23 muestras se realizó tinción con la técnica de Ziehl-Neelsen, obteniendo resultados positivos en 18 de los casos (18% del total de muestras sembradas).

La prueba de ELISA en las 25 muestras de sangre obtenidas dio como resultado únicamente 1 muestra positiva (0.25%)

De 25 cultivos sospechosos de M. paratuberculosis, se les realizó la extracción de ADN para su procesamiento en PCR, obteniendo 3 muestras positivas en la PCR.

DISCUSIÓN

Dadas las diferencias significativas obtenidas en los resultados de las cuatro pruebas diagnósticas para Mycobacterium paratuberculosis, de ganado bovino como agente causal de la Paratuberculosis bovina, concluimos que es necesaria la combinación de todas estas pruebas para realizar un diagnóstico y control más efectivo del patógeno en dicha enfermedad.

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Referencias

Chávez, Gris G., F.J. Trigo Tavera, P. Svastova y I. Pavlik. 2004.

Identificación del polimorfismo genético de aislamientos de Mycobacterium avium subespecies paratuberculosis de caprinos del centro de México. Vet. Mex. 35 (1): 75-82.

Chávez, Gris G. 2001. Control de la Paratuberculosis en ovinos y caprinos. Memorias de la novena reunión anual de CONASA. Octubre 22-24. Puebla, Puebla, México. Consejo Nacional de Sanidad Animal: p. 88-93.

Chiodini, RJ., H.L. Van Kruiningen, R.S. Merkal. 1984. Ruminant Paratuberculosis (Johnes Diseases). The current status and future prospects. Cornell vet.: 74, 218-262.

Manning, E.J.B., M.T. Collins, 2001. Mycobacterium avium subesp. paratuberculosis pathogen: pathogenesis and diagnosis. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 20: 133-150.

Martínez Covarrubias A. G., Santillán Flores M.A.. 2012. Desarrollo de un inmuno–ensayo enzimático (ELISA) para el diagnóstico de paratuberculosis en bovinos. Rev. mex. de cienc. pecuarias vol.3 no.1, enero-febrero 2012, Mérida.

Mortier RA, Barkema HW, De Buck J. 2015. Susceptibility to and diagnosis of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis infection in dairy calves: A review. Preventive Veterinary Medicine. 121(34):189-98.

Jubb, K.V. and P.C. Kennedy. 1970. Pathology of domestic animals. Academic Press Inc., New York. Manning, EJB., Collins MT.. 2001. Mycobacterium avium subesp. paratuberculosis: pathogen, pathogenesis and diagnosis. Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. 20: 133-150.

Lisle G W, Seguin P, Samagh BS, Corner AH and Duncan JR 1980. Bovine

Paratuberculosis I. A Herd Study Using Complement Fixation and Intradermal Tests. Can. J. comp. Med. 44:177-182.

Martinis Mercado DS., M.E. Cicuta, S.I. Boehringer, C. Morsella, F. Paolicchi, 2001. La paratuberculosis y los bovinos lecheros de la provincia de Corrientes. UNNE-Comunicaciones Científicas y Tecnológicas, 2001;007.

Ramírez V, Nicolás; Rodríguez, Berardo; Fernández S, Jorge.2011. Diagnóstico clínico e histopatológico de paratuberculosis bovina en un hato lechero en Colombia. Revista MVZ Córdoba, vol. 16, núm. 3, septiembre-diciembre, 2011, pp. 2742-2753.

Ramírez, PC., T.E. Trigo, G.F. Suarez y R.S. Merkal. 1979. Aislamiento e identificación de Mycobacterium paratuberculosis en México. Técnica Pecuaria en México. 36: 74-75.

Ramírez, P.C., G.V. Tenorio, E.G. Valero, T.E. Trigo, R.S. Merkal. 1982. Presencia de anticuerpos contra Mycobacterium paratuberculosis en ovinos y caprinos. Memorias de la reunión de investigación pecuaria en México D.F. p. 177.

Ramírez, I.C.C., R.S. González, J.T. De Lucas. 1984 Uso de tres métodos diferentes en el diagnostico de Paratuberculosis en Cabras. Memorias del X Congreso Nacional de Buiatria: p. 632-635.

Roussel AJ. 2011.Control of paratuberculosis in beef cattle. Veterinary Clinics of North America Food Animal Practice. 27(3):593-8.

Sosa, P. S., Travería, G. E., & Alvarado Pinedo, M. F. (2019). Desarrollo y aplicación de métodos diagnósticos de paratuberculosis bovina a partir de muestras de leche, calostro, suero sanguíneo y materia fecal. Investigación Joven Vol. 6 (especial), 141 (2019). Resúmenes – Ebec UNLP 2018

Valero, G. E., I.C. Ramírez y S. Madrigal. 1984 Uso de la tinción de aureamina O (tetrametildiamidifenilcetoina) en el diagnostico de la paratuberculosis ovina y caprina. Memorias del X Congreso Nacional de Buiatria: p. 628-631.

Valentin, Weigand P.S. and R. Goethe. 1999. Pathogenesis of Mycobacterium avium subesp. paratuberculosis infections in ruminants; still more questions than answers. Microbes and Infection. 1: 1121-1127.

Villar, C.L., M.A. García, J.M. Zamora y C. Ramírez. 1984. Estudio de un brote de Paratuberculosis en ganado de lidia en el estado de Michoacán. Memorias del X Congreso Nacional de Buiatria: p. 429-432.

Wolter, Wilfried, Hugo Castañeda Vázquez, Kloppert Bärbel y Michael Zschöck, 2004. Mastitis Bovina, Control, Diagnostico y Tratamiento. Editorial Universidad de Guadalajara. ISBN 970270487-1.

Zapata MM, Arroyave O, Ramírez R, Piedrahita C, Rodas JD, Maldonado JG. Identifi cation of Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis by PCR techniques and establishment of control programs for bovine paratuberculosis in dairy herds. Rev Colomb Cienc Pecu 2010; 23:17-27.

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