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Enfermedades de las Gallinas Ponedoras: Guía Sanitaria de Diagnóstico, Bioseguridad y Tratamiento

El diagnóstico y tratamiento de las enfermedades de las gallinas ponedoras es la aplicación sistemática de protocolos sanitarios y farmacológicos para mitigar patologías respiratorias, metabólicas e intestinales. Su prevención y control se implementan mediante bioseguridad estricta y vacunación, manteniendo umbrales de amoniaco por debajo de 20 ppm y niveles de anticuerpos estables, lo que previene la mortalidad aguda y optimiza la tasa de postura por encima del 90% [23].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: Las enfermedades de las gallinas ponedoras y su tratamiento abarcan coinfecciones bacterianas, virales y metabólicas en lotes de postura comercial.
  • Impacto Cuantitativo: Caída de la tasa de postura de 92% a 68%, incremento de huevos de descarte hasta 12% y mortalidad acumulada superior al 15%.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Monitoreo por PCR/serología, aplicación de tilosina 20 mg/kg o enrofloxacina 10 mg/kg, y mantenimiento de amoniaco ambiental menor a 20 ppm.

Enfermedades Bacterianas y Respiratorias en Ponedoras (Coriza y Micoplasma)

Las infecciones respiratorias bacterianas reducen la producción de huevo entre un 10% y un 40% en lotes no inmunizados, incrementando la conversión alimenticia en más de 0.25 puntos.

Pérdidas por Micoplasma en Aves de Postura
Fig. 1: Evidencia Técnica — Pérdidas por Micoplasma en Aves de Postura (Javier Uriarte)

Etiología y Fisiopatología de Avibacterium Paragallinarum y Mycoplasma

El complejo respiratorio en ponedoras comerciales involucra interacciones sinérgicas entre patógenos bacterianos primarios y secundarios [2]. Avibacterium paragallinarum, agente causal de la Coriza Infecciosa, presenta tres serogrupos distintos (A, B y C) cuya hemoaglutinina destruye el epitelio ciliar nasal y senos infraorbitarios [23]. Esta pérdida de clearance mucociliar facilita la colonización profunda de Mycoplasma gallisepticum (MG) y Mycoplasma synoviae (MS), micoplasmas atípicos carentes de pared celular que se adhieren a la superficie mucosa mediante la adhesina pGAOP [10].

"Establecer un plan sanitario preventivo con vacunación temprana en pollitas BB usando bacterinas de 1x10^8 bacterias/dosis y aplicar antibióticos específicos, ajustando la dosificación para evitar resistencia, es indispensable para frenar la Coriza Infecciosa." — Dr. Arturo Salas, Especialista en Sanidad Aviar [23]

En el caso de Mycoplasma synoviae, la bacteria atraviesa la barrera mucosa traqueal e invade el sistema circulatorio, generando una viremia secundaria que le permite colonizar el útero y las articulaciones [12]. Esta colonización sistémica desencadena la inflamación aguda de la glándula cascarógena, produciendo alteraciones en el ápice de la cáscara y caídas severas en la resistencia mecánica del huevo [12].

Diagnóstico Diferencial y Lesiones Anátomopatológicas

El diagnóstico preciso requiere diferenciar la Coriza Infecciosa y la Micoplasmosis de patologías como la Bronquitis Infecciosa Aviar (BI), la Laringotraqueítis Infecciosa (LTI), el Cólera Aviar crónico y la infección por Ornithobacterium rhinotracheale (ORT) [7], [9].

ORT y Producción de Huevos en Ponedoras
Fig. 2: Evidencia Técnica — ORT y Producción de Huevos en Ponedoras (Javier Uriarte)

La necropsia sistemática revela exudado catarra-caseoso denso en senos infraorbitarios en casos de Coriza, mientras que la infección por MG se caracteriza por aerosaculitis fibrinosa bilateral y traqueítis hiperémica [10], [13]. Por su parte, el Cólera Aviar crónico se manifiesta mediante inflamación unilateral de barbillas con exudado caseoso endurecido y otitis media [9].

Patología RespiratoriaAgente EtiológicoLesión PatognomónicaImpacto en PosturaCita Técnica
Coriza InfecciosaAvibacterium paragallinarumExudado caseoso en senos infraorbitariosCaída de 15% a 40%[23]
Micoplasmosis (MG)Mycoplasma gallisepticumAerosaculitis fibrinosa y exudado traquealCaída de 10% a 25%[2]
Micoplasmosis (MS)Mycoplasma synoviaeSinovitis exudativa y anomalía en ápice del huevoCaída de 5% a 12%[12]
Cólera Aviar CrónicoPasteurella multocidaEdema de barbillas y otitis purulentaCaída de 10% a 30%[9]
Infección por ORTOrnithobacterium rhinotrachealeNeumonía fibrinopurulenta y pleuritisCaída de 8% a 20%[7]

Protocolos Farmacológicos y Terapéutica Antimicrobiana

La erradicación completa de patógenos bacterianos del tracto respiratorio resulta inviable mediante antibioterapia exclusiva debido a la formación de biofilms y la protección intracelular de ciertas cepas [1]. No obstante, los tratamientos antimicrobianos reducen la carga bacteriana, alivian los signos clínicos y frenan la transmisión horizontal en la nave [1].

  1. Tratamiento de Coriza Infecciosa: Enrofloxacina al 10% administrada en el agua de bebida a razón de 10 mg/kg de peso vivo durante 5 días consecutivos, u Sulfametoxazol + Trimetoprim a dosis de 30 mg/kg por 5 días [23].
  2. Tratamiento de Micoplasmosis (MG/MS): Tilosina tartrato a dosis de 50 mg/kg de peso vivo en el agua durante 3 a 5 días, o Tilvalosina (Aivlosin) a 20 mg/kg por 3 días consecutivos [10].
  3. Manejo de Secuelas Productivas: El uso de antibióticos controla la sintomatología pero la recuperación de la curva de postura presenta un desfase de 14 a 21 días posterior a la remisión clínica [1].

Síndrome de Hígado Graso Hemorrágico y Salud Hepática en Pico de Postura

El Síndrome de Hígado Graso Hemorrágico (FLHS) genera mortalidades repentinas de hasta un 5% mensual en gallinas ponedoras de alta tasa de postura, destruyendo el parénquima hepático.

Causas de Cáscaras Moteadas en Huevos
Fig. 3: Evidencia Técnica — Causas de Cáscaras Moteadas en Huevos (Teresa M. Agulles Teixidó)

Mecanismos Fisiopatológicos del Trastorno Metabólico Hepático

Durante la fase de pico de producción (semanas 22 a 40), el hígado de la gallina sintetiza diariamente grandes cantidades de lipoproteínas de muy baja densidad (VLDL) dirigidas al desarrollo folicular del ovario [28]. Un desequilibrio entre la lipogénesis hepática (estimulada por altos niveles de estrógenos y raciones con alta densidad energética) y la tasa de transporte de lípidos hacia la sangre deriva en una acumulación excesiva de triacilglicéridos en los hepatocitos [27].

Etapa FisiopatológicaProceso Bioquímico HepáticoAlteración HistológicaManifestación ClínicaCita Técnica
Fase 1: Lipogénesis IntensificadaExceso de carbohidratos en dieta incrementa la síntesis de VLDLEsteatosis microvesicular sin ruptura estructuralAumento sutil del peso del hígado[28]
Fase 2: Inflamación y Estrés OxidativoPeroxidación lipídica de membranas hepatocitarias por ROSFriabilidad celular y degeneración vacuolarCaída en la firmeza de albúmina[3]
Fase 3: Hematoma SubcapsularRuptura de sinusoides hepáticos por friabilidad extremaFormación de coágulos subcapsularesCianosis de cresta y flacidez abdominal[27]
Fase 4: Hemorragia FatalManejo o esfuerzo de postura rompe la cápsula de GlissonHemoperitoneo masivo y muerte súbitaMuerte de aves en buen estado corporal[27]

Esta infiltración grasa severa deteriora la integridad estructural de la cápsula de Glisson y de los sinusoides hepáticos [27]. Ante pequeños esfuerzos mecánicos (como la expulsión del huevo), los vasos friables se rompen, originando hematomas masivos subcapsulares que se extienden al peritoneo y causan colapso circulatorio irreversible [27].

Huevos con exceso de calcio: Causas y manejo
Fig. 4: Evidencia Técnica — Huevos con exceso de calcio: Causas y manejo (Cristo Yang, Roy Zhang)

Diagnóstico Clínico y Necropsia en Lotes Infestados

El FLHS suele afectar a las gallinas de mayor peso y mejor producción dentro de la parvada [27]. Los signos clínicos previos a la muerte son escasos, detectándose crestas pálidas o cianóticas, depresión aguda de pocas horas y abdomen péndulo de consistencia blanda [27].

Hallazgos de necropsia característicos:

  • Cavidad celómica anegada por coagulos sanguíneos frescos o en descomposición (hemoperitoneo) [27].
  • Hígado agrandado, de bordes romos, color amarillo pálido o terroso, con consistencia extremadamente friable [27].
  • Abundante grasa abdominal y mesentérica con depósitos grasos en la cavidad visceral [28].

"La identificación temprana de síntomas como espíritu pobre, cianosis de cresta y flacidez abdominal, junto con la necropsia, permite diagnosticar el FLHS y aplicar ajustes inmediatos en la dieta para detener la mortalidad." — Eric Lee, Especialista en Nutrición y Salud Hepática Aviar [27]

Estrategias de Manejo Nutricional y Hepatoprotección

La prevención del FLHS exige equilibrar la relación energía-proteína de la dieta y adicionar agentes lipotrópicos que promuevan el transporte y metabolización de los ácidos grasos en el parénquima hepático [28].

  • Inclusión de Agentes Lipotrópicos: Suministrar Cloruro de Colina a razón de 1,000 ppm a 1,500 ppm en el alimento terminado, combinado con Metionina (0.45%) y Vitamina B12 (0.02 mg/kg) [28].
  • Adición de Ácidos Biliares y Extractos Botánicos: Incorporar ácidos biliares purificados (200 mg/kg a 300 mg/kg) o extracto de silimarina/cardomariano para reducir la peroxidación lipídica y regenerar los hepatocitos dañados [27].
  • Ajuste de la Calidad de la Cáscara: Controlar los excesos de calcio endógeno mediante un equilibrio en la relación Calcio:Fósforo disponible (4.0:1 en postura avanzada) para evitar disfunciones uterinas y metabólicas secundarias [14], [15].

Control de Salmonella Gallinarum y Programa de Vacunación en Postura

La Tifosis Aviar causada por Salmonella Gallinarum ocasiona mortalidades agudas de hasta un 80% en aves ponedoras de huevo marrón, destruyendo la viabilidad económica de las granjas.

Epidemiología y Transmisión de la Tifosis Aviar

Salmonella enterica serovar Gallinarum es un patógeno inmóvil, adaptado específicamente a las aves de corral, que carece de importancia zoonótica primaria en comparación con Salmonella Enteritidis o Typhimurium, pero genera estragos zootécnicos masivos [11]. La susceptibilidad genética varía sensiblemente entre líneas puras: las ponedoras comerciales de huevo marrón presentan una fragilidad inmunológica superior ante S. Gallinarum en comparación con las líneas de huevo blanco [11].

"La Tifosis Aviar es una enfermedad de portadoras que reaparece en granjas multi-edad. El verdadero control no consiste en abusar de los antibióticos, sino en cortar la cadena de transmisión mediante bioseguridad, control de vectores y eliminación de material contaminado." — Dr. Hebert Eduardo Trenchi Casal, Consultor en Avicultura Latinoamericana [11]

La transmisión ocurre por vía vertical (transovárica) y horizontal [11]. La transmisión horizontal se perpetúa en instalaciones avícolas mediante el canibalismo de aves muertas, la ingestión de heces contaminadas y la presencia de vectores mecánicos como Alphitobius diaperinus (escarabajo de la cama), Musca domestica y roedores sinantrópicos [11].

Protocolos de Bioseguridad y Erradicación en Planteles Multi-Edad

El mantenimiento de múltiples edades dentro de una misma unidad de producción es la causa principal de la endemicidad de la Tifosis Aviar [11]. Las aves adultas portadoras asintomáticas excretan bacterias intermitentemente en periodos de estrés, infectando a las pollitas de reemplazo recién ingresadas [11].

  1. Eliminación de Maples y Envases Reciclados: Queda estrictamente prohibido el reuso de bandejas de cartón o cajas de madera no desinfectadas provenientes del circuito comercial de huevo, ya que albergan bacterias viables por más de 120 días [11].
  2. Proceso de Limpieza y Desinfección Estricto: Lavado a presión con detergente alcalino para retirar la materia orgánica, seguido de enjuague y aplicación de desinfectantes de amonio cuaternario + glutaraldehído al 2% [11]. Desinfectar sobre materia orgánica anula en un 90% la efectividad química del producto [11].

Inmunización Eficaz y Uso Racional de Antimicrobianos

El tratamiento de la Tifosis Aviar con antibióticos debe sustentarse obligatoriamente en antibiogramas previos, debido a la rápida selección de cepas bacterianas resistentes [5], [11].

Prebiótico reduce mortalidad en gallinas
Fig. 5: Evidencia Técnica — Prebiótico reduce mortalidad en gallinas (Carlos De Oliveira)

El uso ciego de antimicrobianos enmascara la infección, transforma aves enfermas en portadoras crónicas y genera pérdidas económicas elevadas sin eliminar el foco infeccioso de la granja [5].

  • Uso de Vacunas Vivas Mutedas: Aplicación de la cepa atenuada Salmonella Gallinarum 9R vía subcutánea u oral en las semanas 6, 10 y 14 de recría.
  • Inmunomodulación Intestinal: Incorporar prebióticos a base de mananoligosacáridos (MOS) y pared celular de levadura en el alimento, o bien biopromotores microbiológicos en el agua de bebida para inhibir la adherencia de Salmonella en las vellosidades cecales [4], [6].

Impacto de Micotoxinas y Niveles de Amoniaco en la Salud del Ave

Concentraciones de amoniaco superiores a 20 ppm provocan la parálisis del aparato mucociliar traqueal en 48 horas, aumentando la incidencia de infecciones bacterianas secundarias.

Citotoxicidad de Micotoxinas y Compromiso Intestinal

Las micotoxinas metabólicamente activas (T-2, Diacetoxiscirpenol, Aflatoxina B1, Ocratoxina A y Deoxinivalenol) actúan en sinergia destruyendo las uniones estrechas (tight junctions) del epitelio entérico [21], [26]. La toxina T-2 ejerce un efecto cáustico directo sobre la mucosa oral y la molleja, produciendo úlceras y necrosis focal que impiden el consumo normal de alimento y reducen el tamaño del huevo [17], [26].

Por su parte, la Aflatoxina B1 es metabolizada en el hígado a Aflatoxina 8,9-epóxido, un compuesto altamente reactivo que se une al ADN hepático, bloqueando la síntesis proteica y la producción de albúmina [21], [24]. Esto deriva en una caída aguda del índice Haugh en el huevo y promueve el síndrome del intestino permeable, permitiendo la translocación de patógenos entéricos como Escherichia coli a la cavidad celómica [4], [21].

Efecto Destructivo del Amoniaco en el Epitelio Ciliar

El amoniaco (NH3) es un gas irritante soluble en agua que se genera por la degradación bacteriana de la úrea y el ácido úrico de la gallinaza por acción de la enzima ureasa [8], [31].

Mecanismo de daño tisular por amoniaco:

  1. Solución Tisular: El NH3 ambiental disuelto en la película acuosa de la mucosa ocular y traqueal forma hidróxido de amonio (NH4OH), una sustancia fuertemente alcalina [8].
  2. Ciliostasis y Desnudamiento Epitelial: A niveles >25 ppm, se produce la pérdida irreversible de cilios en el traqueobronquio y la hiperplasia de las células caliciformes [8].
  3. Pérdida del Clearance Mucociliar: Incapaz de expulsar el moco y las partículas de polvo en suspensión, el ave queda expuesta a la penetración de micoplasmas y bacterias patógenas en los sacos aéreos abdominales [8].

Estrategias Integrales de Mitigación Ambiental y Nutricional

El control del microclima en la nave exige combinar estrategias de ventilación, manejo de excretas y aditivos nutricionales [8], [31].

  • Extracto de Yucca Schidigera: Adición de 120 ppm a 200 ppm de extracto de Yucca schidigera en el alimento para inhibir la enzima ureasa bacteriana en la gallinaza, reduciendo la emisión de gas amoniaco en un 35% a 50% [8].
  • Acidificación y Secado de la Cama/Gallinaza: Aplicación de bisulfato de sodio a razón de 250 g/m² o tratamiento térmico/químico de las excretas en fosas para controlar el pH por debajo de 5.5, evitando la volatilización del nitrógeno amoniacal [8], [31].
  • Secuestrantes Enzimáticos e Inactivadores de Micotoxinas: Incluir secuestrantes de amplio espectro (aluminosilicatos hidratados de sodio y calcio modificados + enzimas inactivadoras de tricotecenos) a dosis de 1.0 kg/t a 2.5 kg/t de alimento terminado [26].

Plan Sanitario Preventivo y Bioseguridad en Granjas Avícolas

Un programa integral de bioseguridad reduce en más de un 85% el riesgo de ingreso de patógenos epizootiológicos en planteles de postura comercial.

Matriz de Puntos Críticos de Control en Bioseguridad Aviar

A continuación se detalla la matriz tabular de los 10 Puntos Críticos de Control (PCC) obligatorios para la sanidad y prevención de patologías en granjas de ponedoras comerciales.

N° PCCEtapa / Punto de ControlPeligro / Patógeno AsociadoLímite Crítico OperativoMedida Preventiva y MonitoreoCita Técnica
1Control de Vehículos y Camiones de CargaSalmonella spp., Newcastle, Influenza AviarMínimo 15 min de desinfección en rodiluvio/arcoFumigación con glutaraldehído + amonio cuaternario a 800 ppm[11]
2Duchas y Cambio de Ropa del PersonalAvibacterium paragallinarum, Mycoplasma spp.Baño obligatorio y uso de ropa 100% limpiaControl de registro diario de ingreso de personal y visitas[23]
3Calidad Microbiológica del AguaE. coli, Salmonella, Pseudomonas0 UFC/ml Coliformes; Cloro residual 3.0-5.0 ppmCloración continua u ozonización con análisis mensual[4]
4Tratamiento de Cama y GallinazaSalmonella Gallinarum, Parásitos internospH < 5.5 o fermentación aeróbica > 55 °CSecado, acidificación o adición de Biosentry X-185[31]
5Programa de Desinsectación y PlagasAlphitobius diaperinus, Musca domesticaMenos de 5 escarabajos/m² en trampasAplicación rotativa de piretroides e insecticidas organofosforados[11]
6Control Estricto de RoedoresSalmonella Gallinarum, Salmonella Enteritidis0% de consumo activo en cebaderos de controlEstaciones cebaderas perimetrales cada 15 metros con bromadiolona[11]
7Limpieza y Vacío Sanitario entre LotesCoccidia, Clostridium perfringensMínimo 14 a 21 días de vacío sanitario continuoProtocolo: Secado, Barrido, Lavado, Desinfección y Flameado[11]
8Manejo y Recolección de HuevosContaminación bacteriana de cáscaraHuevos sucios/fisurados menores al 1.5%Recolección mínima 4 veces/día y desinfección con peróxidos[29]
9Monitoreo Serológico y VacunaciónFallo de inmunidad contra Newcastle/BITítulos serológicos homogéneos (CV < 20%)Muestreo de sangre cada 6 semanas e inmunización de retén[20]
10Disposición Final de Aves MuertasProliferación de gérmenes esporuladosRetiro de carcasas en menos de 2 horasNecropsia diaria, compostaje cerrado o incineración técnica[13]

Protocolos de Monitoreo Serológico y Examen Post-Mortem

La detección temprana de patologías asintomáticas mediante diagnósticos sistemáticos evita desplomes catastróficos de la postura [13], [20]. El monitoreo serológico por ELISA debe evaluar periódicamente los títulos contra Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Gumboro, Mycoplasma gallisepticum y synoviae [10], [20].

[Evaluación Externa de la Carcasa] -> [Inspección Ocular y Cavidad Nasal] -> [Apertura y Diagnóstico Anatómico]
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       Palpación Abdominal                 Exudado Nasal / Ocular               Examen Visceral Completo
 (Separación Esternón-Coxal)              (Coriza vs Micoplasma)              (Hígado, Oviducto, Intestino)
  1. Examen Clínico y Palpación: Palpar la distancia entre el esternón y las apófisis coxales para determinar la madurez sexual y la condición corporal de las aves [25]. Una distancia menor a 3 dedos indica regresión folicular o desnutrición severa [25].
  2. Necropsia Sistemática: Muestrear mínimo 5 aves enfermas o recién muertas por nave [13]. Inspeccionar la mucosa traqueal, sacos aéreos, masa hepática, bazo, parénquima renal y la integridad funcional del oviducto (presencia de quistes o salpingitis) [13], [30].
  3. Monitoreo Parasitológico: Realizar recuentos de huevos por gramo de heces (HPG) para evaluar la presencia de Ascaridia galli, Heterakis gallinarum y coccidias (Eimeria tenella, acervulina, necatrix), previniendo enteritis crónicas y peritonitis prolapsadas [16], [19].

Gestión Operativa Diaria y Vacío Sanitario

El cumplimiento estricto de las rutinas de manejo en la nave garantiza el máximo bienestar animal y la preservación del estatus sanitario del lote [29].

  • Rutina Operativa Diaria: Inspeccionar bebederos (verificar caudal de nipples a 60-80 ml/min), ajustar comederos para evitar el desperdicio, registrar la temperatura máxima y mínima ambiental, y recolectar inmediatamente las aves muertas [29].
  • Detección de Falsas Ponedoras: Retirar periódicamente las aves que presentan plumaje impecable, cresta pálida o pequeña, y postura de "pingüino" (distensión abdominal celómica), provocada por quistes en el oviducto resultantes de infecciones tempranas con el virus de Bronquitis Infecciosa [30].
  • Vacío Sanitario Efectivo: Mantener la nave completamente despoblada por un período no menor a 14 días (idealmente 21 días) tras la salida del lote viejas, aplicando desinfección continua de paredes, techos, fosa de gallinaza y tuberías de agua con soluciones desincrustantes ácidas [11].

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cuál es el plan sanitario para las gallinas ponedoras? A: El plan sanitario abarca vacunaciones contra Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Coriza, Gumboro y Viruela durante las semanas 1 a 16 de recría, complementado con bioseguridad, monitoreos serológicos y tratamientos preventivos específicos [20], [23].

Q: ¿Cuál es la enfermedad bacteriana más común en las aves? A: La enfermedad bacteriana más prevalente en gallinas ponedoras es la Colibacilosis (Escherichia coli), frecuentemente secundaria a Micoplasmosis o Coriza Infecciosa, produciendo aerosaculitis, peritonitis fibrinosa y salpingitis [4], [23].

Q: ¿Cuáles son las causas de muerte de las gallinas ponedoras? A: Las principales causas incluyen el Síndrome de Hígado Graso Hemorrágico (FLHS), bacteriosis agudas como Tifosis Aviar y Cólera, prolapsos uterinos, peritonitis por yema de huevo y cuadros respiratorios severos combinados [9], [11], [27].

Q: ¿Cuáles son las medidas de bioseguridad que se deben implementar en las granjas de gallinas ponedoras? A: Se debe controlar estrictamente el acceso de personas y vehículos, desinfectar el agua de bebida, eliminar plagas y roedores, mantener el sistema de edad única y desinfectar rigurosamente las instalaciones entre lotes [11], [31].

Q: ¿Cómo afecta la calidad del agua a la salud intestinal de la ponedora? A: El agua contaminada con coliformes o con pH elevado altera la microbiota intestinal, reduciendo la absorción nutricional y favoreciendo brotes de disbacteriosis y cáscara de huevo frágil [4], [21].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Pat Blackall: Antibiotics & Egg Drop in Poultry Coryza

  2. Javier Uriarte: Pérdidas por Micoplasma en Aves de Postura

  3. Teresa M. Agulles Teixidó: Causas de Cáscaras Moteadas en Huevos

  4. Carlos De Oliveira: Biopromotores para Colibacilosis en Reproductoras Pesadas

  5. Vladimir Pinheiro Do Nascimento: Costo de tratamientos ineficaces en Tifosis Aviar

  6. Carlos De Oliveira: Prebiótico reduce mortalidad en gallinas

  7. Javier Uriarte: ORT y Producción de Huevos en Ponedoras

  8. Mario Plano: Amoníaco y Salud Respiratoria Aviar

  9. Luis Alzamora: Cólera Aviar Crónico: Signos Atípicos en Aves

  10. Martin Cardaci: Monitoreo de Mycoplasma en Aves Ponedoras

  11. Hebert Eduardo Trenchi Casal: Prevención de Salmonella Gallinarum en Avicultura

  12. John Jairo Salazar. MVZ. MSc: Control de Mycoplasma synoviae en ponedoras

  13. MV Rafael Montero: Examen post-mortem para diagnóstico aviar

  14. Cristo Yang, Roy Zhang: Huevos con exceso de calcio: Causas y manejo

  15. Steven He: Enfermedades y cáscara de huevo frágil

  16. Nancy Yang: Síntomas y Necropsia de Coccidiosis

  17. Ing.Agr. Daniel Carlos Besso: Sanidad y consumo de alimento en ponedoras

  18. Nancy Yang: Severidad de caída y recuperación de huevos

  19. Javier Ortiz R. MVZ: Daños de Parásitos en Ponedoras: Mortalidad y Nutrición

  20. Rocky Li, lachance: Enfermedades y Calidad de Cáscara en Ponedoras

  21. Plusvet Animal Health: Patologías Digestivas Reducen Productividad en Ponedoras

  22. Mvz Jose Antonio Olmedo Sanchez: BI: Baja producción y calidad de huevo

  23. Dr. Arturo Salas: Prevención y Tratamiento Coriza Infecciosa

  24. John Jairo Salazar. Esp. Medico Veterinario Zootecnista, MSc. Colombia: Enfermedades que afectan calidad de albúmina

  25. Ebrahim Babaahmady: Evaluación de condición corporal en ponedoras

  26. Phytobiotics: Causas de diarrea y desuniformidad en gallinas jóvenes

  27. Eric Lee: Síntomas y Prevalencia de FLHS en Ponedoras

  28. LACHANCE, Rocky Lee: Enfermedad Hepática y Mortalidad en Ponedoras

  29. Andres Pedro Collahuazo Culcay: Actividades diarias en granjas de gallinas ponedoras

  30. Karina Gaviña: Identificación de Falsas Ponedoras por Bronquitis Infecciosa

  31. Luis Fernando Quintana Mena: Procesamiento de Gallinaza para Ponedoras

  32. Nathalia Maria Del Pilar Correa Valencia: Manejo de Enfermedades en Ponedoras

  33. Hugo Diaz Villegas: Secreción cloacal blanquecina en gallinas: causas y diagnóstico

  34. Francisco Aspée B.: Diagnóstico y Tratamiento de Moquillo Ocular en Ponedoras

  35. danny zuleima sanchez muñoz: Enfermedad respiratoria en ponedoras: síntomas y baja postura

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