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Enfermedad de Glässer en Cerdos: Guía Completa de Glaesserella parasuis, Síntomas, Diagnóstico y Tratamiento

El control de la enfermedad de Glässer es la gestión sanitaria integral frente a Glaesserella parasuis en granjas porcinas. Su prevención y control se implementan mediante vacunación materna, minimización del estrés térmico y metafilaxia guiada por antibiogramas, manteniendo umbrales de ventilación constante y temperatura de 24 °C, lo que previene la poliserositis fibrinosa y optimiza la ganancia diaria de peso [9].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: La enfermedad de Glässer por Glaesserella parasuis causa poliserositis, artritis y alta mortandad en lechones de recría durante el destete.
  • Impacto Cuantitativo: Disminución del 18% al 35% en la ganancia diaria de peso, incremento de mortandad hasta el 15% en baterías y tasa de decomisos en matadero superior al 8% por pleuritis exudativa.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Diagnóstico por PCR multiplex (genes vtaA), tratamiento de emergencia con ceftiofur (3,0 mg/kg/IM) o amoxicilina en agua (20 mg/kg/8 días) e inmunización de cerdas a las 5 y 3 semanas preparto.

Glaesserella Parasuis Patogenia y Etiología en Lechones

La colonización temprana de Glaesserella parasuis en las vías respiratorias superiores induce bacteriemia sistémica con tasas de morbilidad del 15% al 45% en lechones de recría [9].

Taxonomía y Características Microbiológicas del Agente

Glaesserella parasuis, previamente clasificada como Haemophilus parasuis, es un cocobacilo Gram-negativo pleomórfico dependiente del factor V (dinucleótido de nicotinamida y adenina) para su desarrollo in vitro [14].

Esta bacteria coloniza de forma comensal las cavidades nasales de los cerdos desde los primeros días de vida. Sin embargo, existe una marcada variación en su virulencia asociada a factores genéticos y de superficie, destacando las autotransportadoras de dominio trimérico (vtaA) y las proteínas de membrana externa [14]. Se han identificado hasta la fecha 15 serotipos inmunológicos distintos; los serotipos 1, 4, 5, 12 y 13 están catalogados como altamente virulentos y causantes de muerte súbita y poliserositis aguda en animales no inmunizados [9].

Vías de Infección y Cascada Fisiopatológica Sistémica

La invasión endotelial por G. parasuis desencadena vasculitis, aumento de permeabilidad vascular y depósito masivo de fibrina en cavidades serosas durante las primeras 48 horas post-infección [9].

Etapa PatogénicaMecanismo FisiológicoImpacto ClínicoCita Técnica
Colonización NasalAdhesión a epitelio ciliado mediada por fimbrias y proteínas vtaA.Portación asintomática en lechones lactantes.[14]
Invasión VascularTranslocación a través de la barrera mucosa y resistencia a fagocitosis.Infección sistémica y bacteriemia febril.[9]
Respuesta InflamatoriaLiberación de citoquinas proinflamatorias (TNF-α, IL-1β, IL-6).Vasculitis generalizada y daño endotelial.[12]
Exudación FibrinosaSalida de fibrinógeno y formación de exudado fibrinoso en serosas.Poliserositis, pleuritis y artritis purulenta.[15]
Enfermedad de Glässer: Etiología y Patogenia en Porcinos
Fig. 1: Evidencia Técnica — Enfermedad de Glässer: Etiología y Patogenia en Porcinos (Jhonatan Fernel Reyes)

Síntomas de Poliserositis Fibrinosa y Artritis en Cerdos

Los síntomas característicos de la enfermedad de Glässer incluyen fiebre sobre los 40,5 °C, claudicación severa, disnea abdominal y temblores musculares en lechones entre 4 y 10 semanas de vida [15].

Manifestación Clínica Aguda e Hiperaguda en Granja

En cuadros hiperagudos, la bacteria provoca septicemia fulminante y muerte súbita en menos de 12 horas sin sintomatología respiratoria previa [11].

Los animales clínicamente afectados presentan una postura encorvada, erizamiento del pelo, apatía profunda y anorexia total [15]. La temperatura corporal se eleva rápidamente alcanzando rangos de 40,5 °C a 41,8 °C. La respiración se vuelve acelerada y superficial, progresando hacia un patrón puramente abdominal (thumping) a medida que el exudado fibrinoso restringe la expansión pulmonar en la cavidad torácica [15].

Soplos Cardíacos, Cojeras y Trastornos Neurológicos

La fijación del exudado fibrinoso en las articulaciones carpo-tarsianas y el líquido cefalorraquídeo genera cojeras con dolor agudo e incoordinación motora grave [15].

  • Compromiso Articular: Las articulaciones (especialmente tarsos y carpos) se observan calientes, hinchadas y dolorosas al tacto, obligando al lechón a permanecer en decúbito.
  • Signos Neurológicos: La inflamación de las meninges genera opistótonos, temblores focales, nistagmo, pedaleo en decúbito lateral y parálisis.
  • Soplos Cardíacos y Cianosis: La pericarditis fibrinosa causa alteración de los ruidos cardíacos y cianosis periférica distal en orejas y extremidades.
Signos y Lesiones de Haemophilus parasuis (Glässer)
Fig. 2: Evidencia Técnica — Signos y Lesiones de Haemophilus parasuis (Glässer) (Francisco Rosales Espinoza)

Diagnóstico Diferencial y Lesiones Anatomopatológicas de Glässer

El diagnóstico anatomopatológico confirmatorio exige la presencia de poliserositis fibrinopurulenta caracterizada por pericarditis, pleuritis y peritonitis en la necropsia [20].

Hallazgos Macroscópicos e Histopatológicos de Necropsia

A la apertura de la cavidad torácica, se observan adherencias pleuropericárdicas con fibrina amarillo-amarillenta en galletas espesas cubriendo los lóbulos pulmonares [15].

El peritoneo suele presentar depósitos de fibrina que adhieren las asas intestinales entre sí y al bazo. Microscópicamente, se evidencia vasculitis necrotizante con trombosis fibrinoide en pequeños vasos e infiltración masiva de neutrófilos segmentados en el espacio subaracnoideo y membranas sinoviales [20].

Diferenciación con Mycoplasma hyorhinis y Streptococcus suis

El diagnóstico diferencial molecular mediante PCR multiplex resulta obligatorio debido a la superposición sintomática con Mycoplasma hyorhinis y Streptococcus suis en salas de transición [10].

Momento Clave: «Muchas veces vemos poliserositis y decimos es Glässer. Mycoplasma hyorhinis da lesiones similares, por lo que debemos incluirlo en el diagnóstico diferencial.»
Disertante: Javier UriarteVer video completo »

"Muchas veces vemos poliserositis y decimos es Glässer... Bueno, Mycoplasma hyorhinis da lesiones similares, no digo iguales, pero similares. Entonces tenemos que meterlo dentro del diagnóstico diferencial de este complejo. Cuando tenemos una infección combinada de dos bacterias tan distintas como un micoplasma y un hemófilo, no podemos pensar que con el mismo antibiótico vamos a controlar eficientemente las dos." — Javier Uriarte, Especialista en Sanidad Porcina [10]

Diagnóstico de enfermedades sistémicas en recría porcina
Fig. 3: Evidencia Técnica — Diagnóstico de enfermedades sistémicas en recría porcina (Dr. Javier Cappuccio)

Tratamiento Antibiótico de la Enfermedad de Glässer

La intervención antimicrobiana temprana mediante ceftiofur inyectable a 3,0 mg/kg o amoxicilina soluble a 20 mg/kg reduce la mortalidad aguda a menos del 2% en granja [12].

Esquemas Antimicrobianos de Emergencia e Inyectables

La aplicación parenteral de ceftiofur de depósito o enrofloxacina combinada con dexametasona detiene la tormenta inflamatoria meníngea y articular en cerdos clínicamente afectados [12].

Momento Clave: «Para cerdos clínicamente afectados, el tratamiento de emergencia es ceftiofur o enrofloxacina intramuscular, a veces con dexametasona. Luego, amoxicilina o penicilina en agua/alimento para grupos.»
Disertante: Dra. Maria José Clavijo (Investigadora Porcina)Ver video completo »

"Lo primero es un tratamiento de emergencia con ceftiofur o enrofloxacina intramuscular, y en algunos casos los veterinarios deciden utilizar dexametasona. Esto se aplica a cerdos clínicamente afectados. Luego, se debe considerar aplicar un tratamiento en el agua o alimento con amoxicilina o penicilina a los grupos afectados." — Dra. Maria José Clavijo, Investigadora Porcina [12]

Fármaco AntimicrobianoVía y DosificaciónPeríodo de TratamientoEficacia In VitroReferencia
Ceftiofur Clorhidrato3,0 mg/kg IM3 días consecutivosSensibilidad > 95%[19]
Amoxicilina Trihidrato20 mg/kg Oral / Agua8 días continuosSensibilidad > 90%[33]
Enrofloxacina2,5 mg/kg IM3 días consecutivosResistencia variable[19]
Tilmicosina200 ppm en alimento15 días continuosPrevención de brotes[11]

Medicación Metafiláctica en Agua y Alimento

La administración oral de amoxicilina al 50% a dosis de 20 mg/kg durante 8 días en agua asegura la ingesta del bactericida en animales febriles [33].

Dado que los animales enfermos mantienen la ingesta de agua pero rechazan el alimento, la vía hídrica representa la única alternativa metafiláctica efectiva para controlar la diseminación horizontal en el corral. Se recomienda el uso complementario de antipiréticos solubles como paracetamol o dipirona para restaurar rápidamente la vitalidad y el consumo [33].

Resistencia de H. parasuis a antimicrobianos en cerdos
Fig. 4: Evidencia Técnica — Resistencia de H. parasuis a antimicrobianos en cerdos (López A.G., Guzman N., Zavaleta M., Huerta A., y Galvan E.P.)

Enfermedad de Glässer en Lechones de Recría y Destete

La fase de recría entre los 28 y 60 días de vida concentra el 85% de los brotes clínicos debido a la caída de los anticuerpos maternales calostrales [18].

Factores Ambiental y Desencadenantes de Estrés en Baterías

Las oscilaciones térmicas superiores a 4 °C en 24 horas y el exceso de amoniaco por encima de 15 ppm paralizan el sistema mucociliar respiratorio del lechón [31].

El momento del destete somete al lechón a un estrés multifactórial: mezcla de camadas, cambio de dieta líquida a sólida, transporte y reordenamiento de jerarquías sociales. Este choque fisiológico deprime la respuesta inmune celular y permite que las cepas virulentas colonizadoras de la mucosa nasal invadan el torrente circulatorio [18].

Matriz de Puntos Críticos de Control en el Manejo de Recría

La implementación de una matriz de 10 Puntos Críticos de Control (PCC) reduce la incidencia de poliserositis en un 70% durante la fase de transición [31].

PCCEtapa / Punto CríticoRiesgo SanitarioMedida Correctiva OperativaReferencia
PCC1Calostrado TempranoBaja inmunidad pasivaGarantizar 250 g de calostro por lechón en primeras 12 horas.[28]
PCC2Edad al DesteteInmunidad heterogéneaDestetar con mínimo 21 días de edad y 6,0 kg de peso vivo.[32]
PCC3Temperatura de RecepciónEstrés térmico fríoMantener sala de destete a 26 °C con piso seco al ingreso.[31]
PCC4Calidad del AireParálisis mucociliarMantener amoniaco < 10 ppm y CO2 < 1.500 ppm mediante extracción.[33]
PCC5Flujo de Agua de BebidaDeshidratación febrilCalibrar bebederos a 1.400 ml/minuto (1 chupón por 10 cerdos).[33]
PCC6Densidad de AlojamientoAumento de presión infectivaProporcionar al menos 0,30 m² por lechón en la sala de recría.[31]
PCC7Mezcla de CamadasEstrés por dominanciaAgrupar por tamaño al destete evitando remezclas posteriores.[23]
PCC8Vacío Sanitario EstrictoContaminación cruzadaAplicar protocolo Lavado-Detergente-Desinfectante y secado.[23]
PCC9Inyección Precoz de FármacosInterferencia inmunológicaEvitar antibióticos de larga acción antes de los 14 días de vida.[12]
PCC10Manejo de EnfermeríaAnimales reservorioAislar lechones deprimidos a corral enfermería con calefacción.[23]

Prevención y Protocolos de Vacunación contra Haemophilus Parasuis

La inmunización activa de cerdas reproductoras en el preparto incrementa los títulos de anticuerpos en calostro y protege a la camada hasta las 6 semanas de edad [22].

Inmunización de Cerdas Reproductoras y Transferencia de Calostro

La aplicación de vacunas bacterianas entre las semanas 5 y 3 preparto maximiza la concentración de IgG en la secreción láctea maternal [12].

La vacunación materna es la herramienta preventiva más costo-efectiva en sistemas donde el brote ocurre durante las primeras semanas post-destete. Los anticuerpos específicos transferidos por el calostro no solo previenen la invasión sistémica y el desarrollo de poliserositis, sino que modulan la microbiota nasal del lechón, reduciendo la prevalencia de cepas virulentas en la cavidad oral [22].

Vacunas Comerciales Frente a Autovacunas Autógenas

La heterogeneidad de los 15 serotipos de G. parasuis exige la tipificación molecular previa para elegir entre bacterinas comerciales o autovacunas de granja [8].

Momento Clave: «Si una vacuna comercial no funciona, es bueno cambiar hasta acertar, sobre todo si el problema es grave y en ausencia de serotipificación. Las vacunas autógenas pueden ser una opción.»
Disertante: Javier SarradellVer video completo »

"Las vacunas contra Glässer son efectivas, pero no hay buena inmunidad cruzada entre serotipos. Si tenemos la suerte de que la vacuna comercial contiene los serotipos de la granja, va a andar muy bien. Eventualmente, las vacunas autógenas pueden ser una buena opción cuando no hay protección cruzada." — Dr. Javier Sarradell, Catedrático e Investigador Porcino [8]

Vacunación de madres mejora microbiota nasal de lechones
Fig. 5: Evidencia Técnica — Vacunación de madres mejora microbiota nasal de lechones (Virginia Aragón y Flor Correa Fiz)

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cuál es el tratamiento para la enfermedad de Glässer? A: El tratamiento efectivo requiere ceftiofur inyectable a 3,0 mg/kg o enrofloxacina para casos agudos, acompañado de amoxicilina soluble a 20 mg/kg en el agua de bebida para el lote afectado [12].

Q: ¿Cuál es la causa de la enfermedad de Aujeszky? A: La enfermedad de Aujeszky o pseudorrabia es causada por el Alphaherpesvirus porcino 1, un virus DNA neurotrópico que genera cuadros respiratorios, reproductivos y neurológicos graves en la piara [13].

Q: ¿Cómo se cura la erisipela porcina? A: La erisipela porcina provocada por Erysipelothrix rhusiopathiae se cura eficazmente mediante la administración parenteral de penicilina G procainica a dosis de 11.000 a 22.000 UI/kg durante 3 a 5 días consecutivos [19].

Q: ¿Cuál es el mejor antibiótico para la neumonía en cerdos? A: El mejor antibiótico depende del patógeno primario aislado; sin embargo, el florfenicol (15 mg/kg), la tulatromicina (2,5 mg/kg) y el ceftiofur muestran la mayor eficacia frente al Complejo Respiratorio Porcino [10].

Q: ¿Cómo influye el micoplasma en la severidad de la enfermedad de Glässer? A: Mycoplasma hyopneumoniae y M. hyorhinis alteran el aparato mucociliar y modulan citoquinas, incrementando drásticamente la virulencia y capacidad invasiva de Glaesserella parasuis en el pulmón [27].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. María Inés Lozada: Factores predisponentes de Actinobacillus suis en cerdos

  2. María Inés Lozada: Actinobacillus suis: Reemergencia en granjas de alta sanidad

  3. María Inés Lozada: Lesiones macroscópicas de Actinobacillus suis en cerdos

  4. María Inés Lozada: Diagnóstico de Actinobacillus suis en cerdos de engorde

  5. Estefania Perez: Agentes causales de diarreas en cerdos de crecimiento y terminación

  6. Maria Alejandra Quiroga: Diagnóstico TGE: Inmunohistoquímica y hallazgos histopatológicos

  7. Maria Alejandra Quiroga: TGE: Brotes en todas las estaciones, no solo en invierno

  8. Javier Sarradell: Eficacia Vacunal Glässer y Streptococcus suis

  9. Jhonatan Fernel Reyes: Enfermedad de Glässer: Etiología y Patogenia en Porcinos

  10. Javier Uriarte: Mycoplasma hyorhinis: Lesiones y diagnóstico diferencial

  11. Norma Pereyra; Picatto, G; Cane, V; Fernando Cane: Enfermedad de Glässer: Causas, Síntomas y Tratamiento en Cerdos

  12. Dra. Maria José Clavijo: Tratamiento de emergencia en cerdos

  13. Luis Angel Medina Carlos: Enfermedades Secundarias del Complejo Respiratorio Porcino

  14. Virginia Aragón: Diagnóstico y control de la enfermedad de Glässer en cerdos

  15. Francisco Rosales Espinoza: Signos y Lesiones de Haemophilus parasuis (Glässer)

  16. Ramiro Erazo: Patologías clave en lechones: respiratorias y gastrointestinales

  17. DMV. Bosco Quintero: Haemophilus parasuis y Enfermedad de Glasser

  18. Javier Ortiz Rodriguez: Factores de riesgo de Haemophilus parasuis en cerdos

  19. López A.G., Guzman N., Zavaleta M., Huerta A., y Galvan E.P.: Resistencia de H. parasuis a antimicrobianos en cerdos

  20. Dr. Javier Cappuccio: Diagnóstico de enfermedades sistémicas en recría porcina

  21. S. C. Kang, B. J. Kim, I. S. Oh, J. K. Song, S. Shin, H. Kim: Actinobacillus suis Septicemia in Growing Pigs: Diagnosis & Treatment

  22. Virginia Aragón y Flor Correa Fiz: Vacunación de madres mejora microbiota nasal de lechones

  23. Juan Luís Criado: Signos y efectos del PMWS en cerdos

  24. María Inés Lozada; Estefania Perez; Ibar,M; Fernando Bessone; Maria Alejandra Quiroga; Javier Cappuccio; Mariana Machuca; Jose Luis Cancer; Gustavo Carlos Zielinski; Dr. Carlos Perfumo.: Diagnóstico de Actinobacillus suis: Métodos y hallazgos

  25. Dr. Bosco Quintero: Streptococcus suis: patógeno clave en cerdos y zoonosis

  26. Virginia Aragón Fernandez: Antibióticos y microbiota nasal en lechones

  27. M. Sibila, Abel Ciprian Carrasco, Virginia Aragón Fernandez, A. Dereu y Joaquim Segalés: Sinergia patogénica: Mycoplasma hyorhinis y Haemophilus parasuis en neumonía porcina

  28. Victor Atilio Parodi: Causas de mortalidad en lechones lactantes

  29. Lucy Salazar: Enfermedad de Glasser: Síntomas y diagnóstico en lechones

  30. Jose Alberto Flores Pontones: Enfermedad de Glässer en lechones

  31. Luis Abel Buitrago Manjarrés: Manejo ambiental y bioseguridad contra Glasser

  32. Germán Elí Estrada León: Control integral de la enfermedad de Glässer

  33. Hector Gutierrez Gonzalez: Coinfecciones y micotoxinas: Agravantes de Glasser

  34. Marco Jacho López: Estrategias de prevención de Glasser en cerdos

  35. Luis Velasquez C: Parálisis en lechones: causas y manejo post-destete

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