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Micotoxinas en Pasturas y Forrajes Bovinos: Impacto Productivo, Diagnóstico y Control

El control de micotoxinas en pasturas y forrajes bovinos es el conjunto de diagnósticos y mitigaciones zootécnicas para erradicar metabolitos fúngicos nocivos en la dieta. Su prevención y control se implementan mediante monitoreo foliar, ensilado anaeróbico estricto y aditivos secuestrantes, manteniendo umbrales de zearalenona por debajo de 250 ppb y aflatoxinas bajo 25 ppb, lo que previene síndromes estrogénicos y optimiza la tasa de concepción [34].

  • Desafío Técnico y Causa Primaria: La contaminación por micotoxinas en pasturas y forrajes bovinos deriva de hongos como Fusarium, Aspergillus y endófitos en rumiantes.
  • Impacto Cuantitativo: Reducción del 10% al 25% en la producción láctea, caída del 15% al 30% en la tasa de concepción y pérdidas mayores a US$225 millones en forrajes.
  • Protocolo de Intervención Verificado: Muestreo foliar cuantitativo por HPLC-MS/MS, control anaeróbico en silos y dosis de adsorbentes o biocatalizadores a 20-50 g/animal/día.

Efectos de las Micotoxinas de Fusarium en Pasturas Naturales

Las micotoxinas producidas por hongos del género Fusarium infestan las pasturas naturales de forma continua, registrando prevalencias superiores al 80% en humedales e induciendo cuadros inmunosupresores agudos o subclínicos en bovinos [10].

Alta prevalencia de micotoxinas Fusarium en pastos de Chaco
Fig. 1: Evidencia Técnica — Alta prevalencia de micotoxinas Fusarium en pastos de Chaco (Maria Julia Nichea, Adriana Torres y Maria Laura Ramirez)

El complejo fúngico del género Fusarium (Fusarium graminearum, Fusarium verticillioides, Fusarium oxysporum y Fusarium poae) prolifera en pasturas nativas e implantadas bajo condiciones de alta humedad relativa (>70%) y temperaturas templadas a cálidas [8]. A diferencia de las nociones tradicionales que atribuían el riesgo de micotoxinas exclusivamente a granos concentrados y silajes, las investigaciones epidemiológicas revelan que los pastos en pastoreo directo actúan como un reservorio permanente de toxinas secondary metabolizadas durante la fase vegetativa vegetal [7].

Entre las micotoxinas de Fusarium con mayor presencia en forrajes verdes destacan los tricotecenos de tipo A y B (desoxinivalenol o DON, toxina T-2, diacetoxiscirpenol), la zearalenona (ZEA) y las fumonisinas (FB1 y FB2) [35]. El desoxinivalenol actúa inhibiendo la síntesis proteica eucariota a nivel ribosomal, alterando la integridad morfológica y funcional del epitelio ruminal e intestinal [11]. Esta alteración entérica incrementa la permeabilidad de las uniones estrechas (tight junctions), permitiendo la translocación sistémica de patógenos entéricos y endotoxinas lipopolisacáridas (LPS) hacia la circulación portal [16].

"La presencia simultánea de múltiples metabolitos de Fusarium en pasturas naturales genera efectos sinérgicos que afectan la respuesta inmune del rumiante, superando ampliamente la toxicidad individual calculada en ensayos de laboratorio." — Dra. Maria Laura Ramirez, Universidad Nacional de Río Cuarto [7]

El impacto rumen-hepático de las micotoxinas de Fusarium depende directamente de la tasa de pasaje digestivo. En vacas lecheras de alta producción con consumos elevados de materia seca (IMS > 22 kg/día), el tiempo de permanencia del bolo alimenticio en el rumen se reduce de 50 a menos de 30 horas [27]. Esta aceleración de la tasa de pasaje sobrepasa la capacidad de detoxificación microbiana del rumen (realizada por protozoos ciliados y bacterias anaeróbicas estrictas), permitiendo que un alto porcentaje de DON, T-2 y ZEA pase inalterado al omaso, abomaso y duodeno, donde se absorbe sistémicamente [27].

Micotoxina de FusariumHongos ProductoresMecanismo de Acción RumianteImpacto Zootécnico PrincipalReferencia
Desoxinivalenol (DON)F. graminearum, F. culmorumInhibición de la síntesis proteica; daño a enterocitosReducción de IMS; diarrea mucosa; inmunosupresión[11]
Zearalenona (ZEA)F. graminearum, F. crookwellenseAgonismo directo con receptores de estrógeno alpha y betaAnestro, quistes ováricos; anestro reproductivo[13]
Toxina T-2F. sporotrichioides, F. poaeCitotoxicidad celular masiva; necrosis epidérmica y mucosaCaída del 15% al 25% en producción de leche; hemorragias[34]
Fumonisina B1 (FB1)F. verticillioides, F. proliferatumInhibición de la esfinganina N-acetiltransferasaHepatotoxicidad, inmunosupresión; lesiones renales[35]

globalmente, el estrés inmunológico inducido por Fusarium desvía glucosa y aminoácidos metabólicos desde la síntesis de leche y masa muscular hacia la activación del sistema inmune inespecífico, derivando en caídas severas de la eficiencia de conversión alimenticia [17].

Síntomas de Micotoxicosis en Bovinos de Carne y Leche

Los síntomas clínicos por micotoxicosis bovina abarcan reducciones agudas del 10% al 30% en el consumo voluntario de materia seca, abortos embrionarios tempranos y necrosis hepáticas o vasculares fatales [5].

Ergovalina: Reducción de leche y concepción en lechería
Fig. 2: Evidencia Técnica — Ergovalina: Reducción de leche y concepción en lechería (Patricia Knass)

Manifestaciones Clínicas en Ganado Lechero de Alta Producción

En rebaños lecheros, la intoxicación subclínica por micotoxinas suele manifestarse como un problema de la masa del rodeo antes de ser diagnosticada individualmente [20]. Las vacas holstein y jersey expuestas a dietas con concentraciones de aflatoxina B1 superiores a 20-25 ppb muestran una caída súbita en el volumen diario de leche, acompañada de un incremento sostenido en el recuento de células somáticas (RCS) debido a la depresión inmunitaria [34]. Además, la aflatoxina B1 se metaboliza en el hígado por acción de enzimas del citocromo P450, transformándose en aflatoxina M1 (AFM1), la cual se excreta directamente en la leche con un factor de conversión promedio del 1% al 6%, representando un riesgo biológico crítico para la inocuidad alimentaria humana [16].

A nivel reproductivo, la ingestión de zearalenona (ZEA) simula la acción biológica del 17beta-estradiol [13]. Las novillas y vacas en lactancia expuestas a niveles >250 ppb de ZEA sufren hiperestrogenismo, caracterizado por vulvovaginitis edematosa, proestro prolongado, retención de folículos, desarrollo mamario prematuro en vaquillonas vírgenes y tasas de concepción reducidas del 15% al 30% en rodeos comerciales [3].

Cuadros Patológicos en Bovinos de Engorde y Feedlot

En bovinos de carne bajo sistemas de engorde a corral (feedlot) o pastoreo intensivo, las micotoxinas afectan directamente el rendimiento de la canal y la ganancia diaria de peso vivo (GDPV) [30]. La ingesta de tricotecenos induce un síndrome de alteración digestiva profunda, caracterizado por necrosis papilar en el rumen, edematización del abomaso y enteritis hemorrágica [35].

Adicionalmente, el consumo accidentado de plantas con alcaloides o la presencia concomitante de especies vegetales hepatotóxicas genera síndromes necróticos agudos [5]. El diagnóstico diferencial exige distinguir entre patologías toxicológicas puramente micóticas y fotosensibilizaciones secundarias derivadas de falla hepática necrótica centrolobulillar [5].

"La necrosis hepática centrolobulillar y el edema perivesicular en necropsias de bovinos son hallazgos contundentes que confirman hepatotoxicosis agudas, las cuales desestabilizan metabólicamente al animal antes de manifestar ictericia evidente." — Dr. Ernesto Odriozola, INTA Balcarce [5]

Para mitigar estos riesgos de forma sistemática en granjas lecheras y ganaderas, es indispensable aplicar un protocolo estricto de Puntos Críticos de Control (PCC) focalizado en el vector forrajero y la dieta integral [20].

Etapa / PCCPunto Crítico de ControlParámetro Límite / MetodologíaImpacto ZootécnicoReferencia
PCC 1Evaluación visual y fúngica en potreroAusencia de manchas foliares e hifas vistosasPrevención de micotoxinas de campo (Fusarium)[18]
PCC 2Monitoreo del momento de siembra y corteCosecha en pre-floración o madurez óptimaMaximización de proteína (>20%) y menor hongo[1]
PCC 3Verificación de humedad al picado de siloMateria Seca (MS) diana: 33% al 38%Fermentación láctica rápida; inhibición de mohos[26]
PCC 4Proceso de compactación del silajeDensidad de compactación >220 kg MS/m³Eliminación del O2; bloqueo de Aspergillus[26]
PCC 5Velocidad de sellado y cobertura plásticaSellado hermético <4 horas tras picadoPrevención de zonas aeróbicas y micotoxinas[20]
PCC 6Inspección de extracto de cara de siloAvance de desbalance de cara >30 cm/díaPrevención de re-calentamiento por levaduras[23]
PCC 7Almacenamiento de subproductos húmedosUso de burlanda húmeda <5 días en veranoPrevención de Aspergillus flavus y aflatoxinas[24]
PCC 8Muestreo cuantitativo periódico en mixerControl por ELISA o HPLC cada 30 díasDetección precoz de picos de ZEA / DON[25]
PCC 9Dosificación de adsorbente en raciónInclusión de 20 a 50 g/animal/día de secuestranteNeutralización de toxinas en luz digestiva[27]
PCC 10Evaluación de efluentes y desechoExtracción de bordes mohosos del siloCero ingesta de forraje podrido o visiblemente infectado[22]

Endófitos Tóxicos y Zearalenona en Forrajes Bajo Sequía

El estrés hídrico y térmico por sequía estimula la concentración de alcaloides endófitos como la ergovalina en Festuca arundinacea y la acumulación de zearalenona en pasturas nativas [3].

Momento Clave: «El cambio climático altera los patrones de riesgo de distribución de micotoxinas y favorece la aparición de nuevas toxinas emergentes.»
Disertante: Dra. Sofia Noemi Chulze (Presidenta de la Sociedad Argentina de Micología e investigadora del Instituto de Micología y Micotoxicología)Ver video completo »

La relación simbiótica entre gramíneas forrajeras y hongos endófitos del género Epichloë (anteriormente Neotyphodium) constituye un mecanismo evolutivo de adaptación al estrés abiótico [4]. Sin embargo, cepas endófitas silvestres como Epichloë coenophiala en festuca y Epichloë uncinata en raigrás (Lolium perenne) sintetizan alcaloides ergóticos extremadamente tóxicos para el ganado rumiante, principalmente la ergovalina [3].

Simbiosis de endófitos y micorrizas en pasturas de lechería
Fig. 3: Evidencia Técnica — Simbiosis de endófitos y micorrizas en pasturas de lechería (Lanati M., Omacini M., Grimoldi A.A.y García-Parisi P.A.)

Durante períodos de sequía severa y olas de calor, la planta de festuca concentra estos alcaloides en la base de los macollos y en las vainas foliares [3]. La ergovalina actúa como un potente agonista de los receptores dopaminérgicos D2 y adrenérgicos alpha1 en las arterias periféricas, induciendo una vasoconstricción periférica severa y sostenida [3]. Este fenómeno impide la termorregulación fisiológica del bovino, desencadenando el síndrome de "festucosis" o "estrés por calor inducido", donde los animales buscan sombras o piletas de agua, reducen el consumo alimenticio, hiperventilan y sufren caída en la producción láctea de más del 20% [3]. En climas fríos, esta misma vasoconstricción periférica extrema en las extremidades deriva en necrosis y gangrena seca de pezuñas y cola ("pie de festuca") [3].

Simultáneamente, el estrés climático altera la ecología fúngica microscópica del suelo y la filosfera vegetal [2]. En condiciones de sequía prolongada seguidas de lluvias esporádicas de alta intensidad, las especies de Aspergillus (como Aspergillus flavus) superan a otros competidores microscópicos, incrementando la biosíntesis de aflatoxinas [12]. Por el contrario, cuando la humedad relativa se eleva sobre el 85% con temperaturas moderadas (15°C a 25°C), las cepas de Fusarium dominan el dosel vegetal, disparando la síntesis de zearalenona (ZEA) en pastos naturales [13]. La presencia de ZEA en pasturas nativas es un hallazgo ecológico recurrente que puede conducir a diagnósticos erróneos en la detección de promotores de crecimiento en carne bovina debido a la producción de metabólitos estrogénicos similares en orina [13].

Además de la ergovalina y la zearalenona, las micotoxinas tremorgénicas como la paxilina y el lolitrem B, producidas por endófitos en Lolium perenne, afectan el sistema nervioso central del ganado rumiante [14]. Los animales intoxicados presentan hiperexcitabilidad, ataxia, temblores musculares incontrolables ("el vértigo del raigrás" o ryegrass staggers) e incapacidad para desplazarse hacia los bebederos, provocando deshidratación y muertes accidentadas en el potrero [14].

Monitoreo y Muestreo de Micotoxinas en Pasto en Directo

El monitoreo efectivo exige protocolos de muestreo representativo multicanal en potrero, priorizando la detección cuantitativa de desoxinivalenol como biomarcador de riesgo fúngico generalizado [11].

DON: Marcador clave de micotoxinas en forrajes
Fig. 4: Evidencia Técnica — DON: Marcador clave de micotoxinas en forrajes (Lic. Qca. Mónica Gaggiotti, Ing. Agr. Luis Romero (INTA))

El principal obstáculo en la evaluación del riesgo por micotoxinas radica en la distribución heterogénea o "en focos" (hotspots) que presentan los hongos en el campo y en las reservas forrajeras [21]. Un error común en las granjas ganaderas es la toma de una muestra puntual en una sola zona del potrero o silo, lo cual conduce a errores analíticos graves por subestimación o sobreestimación de la contaminación real [25].

Para garantizar un diagnóstico representativo en pasturas verdes bajo pastoreo directo, se debe implementar el protocolo de muestreo en patrón de "W" o "X" [21]. El técnico o médico veterinario debe recorrer el potrero recolectando entre 15 y 20 sub-muestras de pasto a la misma altura de corte a la que el bovino consume la pradera (evitando arrancar la raíz con tierra, la cual aporta contaminación por hongos saprófitos del suelo) [21]. Estas sub-muestras deben homogeneizarse en un recipiente limpio para conformar una muestra compuesta de aproximadamente 1 a 1,5 kg de materia verde [21].

En el caso de forrajes conservados (silajes de maíz, sorgo o alfalfa y henos en rollos/mega-fardos), el protocolo exige el uso de caladores de acero inoxidable específicos [26]. En silos trincheras o bolsa, se deben realizar al menos 8 a 12 perforaciones distribuidas en diferentes profundidades y sectores de la cara de extracción, descartando los primeros 5 cm expuestos al aire para evitar muestras alteradas por secado aeróbico [26].

[ Muestra Compuesta de Forraje ]

| Métodos de Detección

v v

---------+ +---------

ELISA | | HPLC-MS

---------+ +---------

Una vez recolectada, la muestra de forraje verde o silaje húmedo debe congelarse inmediatamente a -20°C o enviarse al laboratorio en cajas térmicas con refrigerante para detener la actividad metabólica fúngica de post-muestreo [25].

A nivel de laboratorio, se emplean dos metodologías principales:

  1. Inmunoensayo Enzymático (ELISA): Es una técnica rápida, económica y de alta sensibilidad, ideal para pruebas de tamizaje (screening) en granja o plantas de acopio. Permite determinar la presencia de grandes familias de toxinas (Aflatoxinas totales, DON, ZEA, Fumonisinas) en pocas horas [25].
  2. Cromatografía Líquida de Alta Eficiencia equipada con Espectrometría de Masas en Tándem (HPLC-MS/MS): Es el método de referencia (gold standard). Permite la separación, identificación y cuantificación exacta de decenas de micotoxinas y metabolitos emergentes de forma simultánea, alcanzando límites de detección en partes por billón (ppb) [25].

"El desoxinivalenol (DON) debe ser utilizado como el marcador fúngico primario en análisis de forrajes; su presencia cuantitativa confirma la contaminación simultánea con un cóctel de tricotecenos y zearalenona en la dieta del rumiante." — Lic. Qca. Mónica Gaggiotti, INTA Rafaela [11]

Estrategias de Profilaxis y Secuestrantes de Micotoxinas en Rumiantes

La profilaxis integral combina el manejo anaeróbico en silos con la adición dietética de adsorbentes inorgánicos y biocatalizadores enzimáticos específicos calibrados según el perfil toxicológico del forraje [27].

Pérdidas por Aflatoxinas en Maíz: US225 Millones Anuales
Fig. 5: Evidencia Técnica — Pérdidas por Aflatoxinas en Maíz: US225 Millones Anuales (Radka Borutova)
Momento Clave: «Habrá una ronda de novedades donde empresas productoras de inoculantes para silo, entre otros sectores, presentarán sus innovaciones.»
Disertante: Daniel Basigalup (INTA)Ver video completo »

La gestión exitosa del riesgo por micotoxinas en la nutrición bovina se fundamenta en un enfoque defensivo multicapa que abarca desde el cultivo en campo hasta la digestión ruminal [15]. En la fase de conservación forrajera, la prevención primaria exige asegurar un picado homogéneo, una compactación que elimine bolsas de oxígeno microcelular y la inoculación con bacterias ácido-lácticas heterofermentativas (Lactobacillus buchneri) para estabilizar el pH por debajo de 4.2 e inhibir la germinación de esporas fúngicas [26].

Cuando el forraje contaminado debe ser incluido inexorablemente en la ración de ganado lechero o de engorde, la neutralización de las toxinas en el tracto digestivo se convierte en la última línea de defensa zootécnica [27]. Los aditivos secuestrantes de micotoxinas operan mediante dos mecanismos principales:

Adsorción Física Inorgánica y Orgánica

Los adsorbentes inorgánicos, como los aluminosilicatos de sodio y calcio hidratados (HSCAS) y las bentonitas purificadas, poseen una estructura cristalina porosa cargada eléctricamente [21]. Estos minerales atrapan selectivamente a las aflatoxinas (moléculas polares de estructura plana) mediante fuerzas de atracción electrostática e hidrofóbica en la luz del rumen e intestino, formando un complejo toxina-adsorbente estable que se excreta inalterado en las heces [21]. Sin embargo, los aluminosilicatos muestran una eficacia reducida (<20%) frente a micotoxinas no polares o de estructura tridimensional compleja, como la zearalenona, el DON y las fumonisinas [27].

Para neutralizar estas toxinas complejas, se utilizan adsorbentes orgánicos derivados de la pared celular de levaduras (Saccharomyces cerevisiae), ricos en beta-D-glucanos y glucomananos esterificados [33]. Los glucomananos ofrecen una amplia superficie de contacto porosa que se une mediante enlaces de hidrógeno a la zearalenona y al DON, reduciendo significativamente su biodisponibilidad digestiva [33].

Biotransformación Enzimática y Biocatalítica

Dado que los tricotecenos (DON, T-2) poseen un anillo 12,13-epóxido responsable de su citotoxicidad, la simple adsorción física resulta insuficiente e inestable en el gradiente de pH del abomaso e intestino [22]. La tecnología de biotransformación emplea enzimas purificadas (como de-epoxidasas y esterasas hidrolíticas) y microorganismos detoxificantes (Eubacterium BBSH 797, Trichosporon mycotoxinivorans) [22]. Estas enzimas escinden catalíticamente el anillo epóxido o el grupo lactona de la zearalenona, convirtiendo a las micotoxinas en metabolitos no tóxicos inofensivos para la fisiología del rumiante [22].

Aditivo / TecnologíaComposición / OrigenTasa de Inclusión DietéticaEspectro de NeutralizaciónMecanismo de AcciónReferencia
Aluminosilicatos (HSCAS)Arcillas bentoníticas y ceolitas20 a 50 g/animal/díaAlta especificidad por Aflatoxinas (B1, B2, G1)Adsorción física por carga electrostática[21]
Wall Cell de Levaduras (MOS)beta-glucanos de S. cerevisiae10 a 20 g/animal/díaZearalenona, T-2, FumonisinasUnión por puentes de hidrógeno y van der Waals[33]
Enzimas BiotransformadorasDe-epoxidasas y Esterasas5 a 15 g/animal/díaDesoxinivalenol (DON), Zearalenona, T-2Escisión enzimática de grupos funcionales tóxicos[22]
Mezclas MulticomponentesArcillas + MOS + Biocatalizadores30 a 60 g/animal/díaAncho espectro (Policontaminación)Sinergia de adsorción e inactivación enzimática[27]

El éxito en el uso de aditivos secuestrantes radica en mantener la dosificación continua en la ración mezclada total (TMR), garantizando que el secuestrante esté presente de forma homogénea en la luz ruminal en el momento exacto en que la partícula de forraje contaminado es ingerida por el bovino [27].

Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Cómo afectan las micotoxinas de las pasturas la producción de leche y ganancia de peso? A: Las micotoxinas de pasturas reducen el consumo voluntario de materia seca, alteran la fermentación ruminal e inducen estrés inmunológico sistémico, provocando caídas del 10% al 25% en producción de leche y reduciendo sensiblemente la ganancia diaria de peso [17].

Q: ¿Cuáles son los síntomas clínicos de intoxicación por micotoxinas en ganado bovino? A: Los síntomas clínicos abarcan diarreas mucosas o hemorrágicas, anestro reproductivo, vulvovaginitis por zearalenona, abortos embrionarios, mastitis recurrentes por inmunosupresión y síndromes necróticos en extremos vasculares por alcaloides ergóticos de festuca [3].

Q: ¿Qué hongos producen micotoxinas en pastos naturales y forrajes conservados? A: En pastos naturales predominan hongos de campo como Fusarium y endófitos como Epichloë, mientras que en forrajes conservados de mala compactación proliferan Aspergillus y Penicillium, sintetizadores de aflatoxinas, ochratoxina y PR-toxina [12].

Q: ¿Cómo prevenir y controlar la presencia de micotoxinas durante el pastoreo? A: La prevención en pastoreo requiere la rotación estratégica de potreros para evitar la sobre-ingesta de la base foliar, el uso de variedades de forraje con endófitos amigables no tóxicos y la inclusión de adsorbentes en sales minerales [4].

Q: ¿Cuál es la dosis recomendada de secuestrantes de micotoxinas en la dieta bovina? A: La dosis estándar oscila entre 20 y 50 gramos por animal al día de adsorbentes inorgánicos o mezclas enzimáticas en la ración mezclada total, ajustando el nivel según la concentración cuantitativa detectada en el laboratorio [27].


Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

  1. Daniel Basigalup: Argentina: Potencial exportador de heno de alfalfa de alta calidad

  2. Dra. Sofia Noemi Chulze: Cambio Climático y Micotoxinas Emergentes

  3. Patricia Knass: Ergovalina: Reducción de leche y concepción en lechería

  4. Lanati M., Omacini M., Grimoldi A.A.y García-Parisi P.A.: Simbiosis de endófitos y micorrizas en pasturas de lechería

  5. Ernesto Odriozola: Diagnóstico de hepatotoxicosis aguda en bovinos

  6. Radka Borutova: Pérdidas por Aflatoxinas en Maíz: US$225 Millones Anuales

  7. Dra. Maria Laura Ramirez: Interacción de micotoxinas y salud bovina

  8. Adriano Olnei Mallmann: Factores ambientales clave para micotoxinas en forrajes lecheros

  9. Fernando Clemente: Micotoxinas: Impacto en reproducción y productividad bovina

  10. Maria Julia Nichea, Adriana Torres y Maria Laura Ramirez: Alta prevalencia de micotoxinas Fusarium en pastos de Chaco

  11. Lic. Qca. Mónica Gaggiotti, Ing. Agr. Luis Romero (INTA): DON: Marcador clave de micotoxinas en forrajes

  12. Mónica Gaggiotti, Carolina Andrea Chiericatti, Juan Carlos Basilico y Luis Alberto Romero: Clima y micotoxinas: Aspergillus en sequía, Fusarium en humedad

  13. Leonor Carrillo: Zearalenona en Pastos Naturales

  14. Patricia Knass: Paxilina: efectos y detección en bovinos

  15. Dra. Evangelina Zárate: Mitigación de micotoxinas en rumiantes

  16. Ignacio J. Gamietea: Efectos de Micotoxinas en Productividad Bovina y Salud Pública

  17. Gustavo Clemente: Efectos de micotoxinas en ganado: consumo, producción y reproducción

  18. Alfredo Mendiola Carrasco: Roya en pasturas: Impacto en salud animal y micotoxinas

  19. Miguel Angel Hernandez: Control de roya en pasturas: Opciones de fungicidas

  20. Pedro Melendez: Control de micotoxinas en ganado lechero

  21. Mónica Gaggiotti: Micotoxinas en Ganado: Impacto y Detección

  22. Pedro Sueldo: Diagnóstico y Control de Micotoxinas en Lechería

  23. Pedro Melendez: Micotoxinas y Levaduras: Amenazas Ocultas

  24. Marcelo De Leon: Riesgos y Prevención de Micotoxinas en Burlanda Almacenada

  25. Mónica Gaggiotti: Diagnóstico de Micotoxinas en Argentina

  26. Dr. Juan Roberto Vega: Micotoxinas en Silos: Prevención y Secuestrantes

  27. Mónica Gaggiotti: Rumen: Detoxificación y Micotoxinas

  28. Rubén Jaime Rivera Sarabia: Micotoxinas y eficiencia productiva en bovinos

  29. Gaggiotti, Mónica y Romero, Luis (INTA Rafaela); Basílico, Juan Carlos (Fac. Ing. Química de la Universidad Nacional del Litoral). INTA Rafaela.: Diagnóstico de Micotoxinas en Forrajes para Lechería

  30. TecNews - Provimi: Micotoxinas: Riesgo en Rentabilidad de Feedlots

  31. Ing. Agr. Miriam Gallardo: Límites de micotoxinas en forrajes de leche

  32. Aníbal Fernández Mayer: Identificación de Micotoxinas en Granos para Bovinos

  33. Lic.Química Mónica Gaggiotti e Ing. Agr. Miriam Gallardo: Soja con micotoxinas en lechería

  34. Alexander Dietrich Yorg Varela: Efectos de Micotoxinas en Bovinos y Límites Dietéticos

  35. Hector Jaime Aricapa Giraldo: Límites de micotoxinas: Fumonisinas >100 ppb, Tricotecenos >50 ppb

Usuarios destacados en Micotoxinas en pasturas
Adriana Salvat
Adriana Salvat
Ing. Agrónomo
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Martha Díaz De Ackermann
Martha Díaz De Ackermann
Fitopatologa/INIA La Estanzuela
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Dra. Maria Laura Ramirez
Dra. Maria Laura Ramirez
Directora IMICO Investigadora principal CONICET - Prof. Titular UNRC
Argentina
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