El control de los problemas renales en aves de corral: gota úrica y urolitiasis es la gestión integral de la excreción de uratos y el equilibrio mineral en avicultura comercial. Su prevención y control se implementan mediante la regulación estricta del calcio digestible y la hidratación temprana, manteniendo umbrales de 0,45% a 0,50% de fósforo disponible y ratios calcio-fósforo de 2:1 en recría, lo que previene la hiperuricemia y optimiza la conversión alimenticia y supervivencia del lote [6].
- Desafío Técnico y Causa Primaria: La insuficiencia renal en aves de corral es causada por nefritis infecciosa, micotoxinas y desbalances minerales entre calcio y fósforo.
- Impacto Cuantitativo: Mortandad acumulada de 15% a 35% en pollos de engorde y caídas de 2,5% a 10% en la producción de huevo de ponedoras comercializadas.
- Protocolo de Intervención Verificado: Acidificación dietética con fosfato monocálcico al 0,30%, administración de polisacáridos marinos sulfatados (MSP) a 0,30 L/1000 L de agua y secuestrantes aluminosilicatos a 2,50 kg/t.
El sistema excretor de las aves de corral presenta adaptaciones anatómicas y metabólicas únicas que condicionan su susceptibilidad a nefropatías severas. A diferencia de los mamíferos, el riñón aviar es un órgano trilobulado situado en las fosas ilíacas del sincrotro: carece de pelvis renal definida y las aves no poseen vejiga urinaria [7]. La orina fluye directamente desde los túbulos colectores hacia los uréteres, desembocando en el urodeo del cloaca, donde ocurre una absorción retrógrada de agua y electrolitos hacia el ciego y el colon [8].
Anatómicamente, el parénquima renal aviar está constituido por dos tipos de nefronas. Las nefronas de tipo cortical (o reptiliano), que carecen de asa de Henle y representan entre el 70% y el 90% del total, y las nefronas de tipo medular (o mamífero), que poseen asas de Henle agrupadas en conos medulares. Debido a la predominancia de nefronas reptilianas, las aves tienen una capacidad limitada para concentrar la orina, logrando una osmolaridad máxima de solo 2 a 3 veces la del plasma sanguíneo.

Bioquímicamente, las aves son animales uricotélicos: metabolizan el 80% al 90% del nitrógeno sobrante en forma de ácido úrico en el hígado, eliminando solo pequeñas fracciones de amoníaco y urea [25]. La síntesis de ácido úrico requiere cantidades considerables de energía (ATP) y aminoácidos clave como glicina, serina y glutamina [30]. La eliminación renal del ácido úrico no depende primariamente de la filtración glomerular (que representa solo el 10%), sino de la secreción tubular activa (90%) a nivel de los túbulos contorneados proximales.
Cuando el flujo sanguíneo renal disminuye por deshidratación o cuando el epitelio tubular es destruido por toxinas o virus, la secreción tubular de uratos se colapsa. Al acumularse ácido úrico en el torrente sanguíneo por encima del umbral de solubilidad plasma-proteína (6,00 a 8,00 mg/dL), se precipitan cristales de urato monosódico en el parénquima renal y en las serosas orgánicas, desencadenando la cascada clínica de la gota aviar [9].
La gota aviar es la manifestación patológica terminal de un estado de hiperuricemia persistente en aves de producción. Clinical y patológicamente se clasifica en dos formas de presentación distintas: gota visceral y gota articular, cada una con etiologías y mecanismos lesionales diferenciados [15].

La gota visceral es una condición aguda caracterizada por el depósito irrumptivo de tiza blanca (cristales de urato monosódico) sobre la superficie de los órganos abdominales y torácicos. Afecta el pericardio, la cápsula hepática, el bazo, el mesenterio y los sacos aéreos [33]. Los riñones se presentan pálidos, hipertrofiados y distendidos con uratos en los túbulos y uréteres.
"La gota visceral aguda en pollos de engorde y reproductoras surge cuando la capacidad funcional renal cae por debajo del 20%, provocando la precipitación masiva de uratos sobre el pericardio y el hígado en menos de 24 horas." — Dr. D. Verma, Technical Manager BIOMIN India [15]
Las causas primarias de gota visceral incluyen:
La gota articular es una forma patológica de evolución lenta y crónica, observada con mayor frecuencia en reproductoras pesadas adultos y gallinas de postura comercial [24]. Se caracteriza por la acumulación de tofos uráticos en las cavidades sinoviales de las articulaciones metatarsianas, interfalángicas y codos.

A diferencia de la gota visceral, la gota articular guarda una relación directa con defectos genéticos en los sistemas de transporte de uratos a nivel tubular renal, combinada con dietas hiperproteicas prolongadas o exposición crónica a dosis subclínicas de micotoxinas nefrotóxicas [15]. Las articulaciones afectadas sufren una respuesta inflamatoria granulomatosa con necrosis tisular, impidiendo la movilidad del ave y causando un severo descarte operativo en la granja.
La urolitiasis aviar es un trastorno obstructivo del sistema urinario que afecta principalmente a gallinas ponedoras en jaula y sistemas en piso durante la fase de postura activa o prepostura [6]. La afección se caracteriza por la formación de cálculos minerales (urolitos) en uno o ambos uréteres, lo que desencadena una atrofia renal por presión en el segmento afectado e hipertrofia compensatoria en el tejido renal remanente.
Los urolitos aviares están compuestos principalmente por urato de calcio dihidratado mezclado con matriz orgánica proteica. El proceso de litogénesis se desencadena cuando la orina aviar alcanza concentraciones sobresaturadas de calcio y el pH urinario se alcaliniza superando un valor de 7,20 [6].
Las causas nutricionales determinantes de la urolitiasis incluyen:
La uratosis neonatal o nefropatía del pollito recién nacido es un problema crítico que ocurre entre el día 1 y el día 5 de vida en las granjas de engorde [26]. Esta condición causa mortalidades iniciales que oscilan entre el 2,00% y el 8,00% del lote, afectando severamente los parámetros de uniformidad y peso a los 7 días.

La patogenia de la uratosis en aves neonatas está íntimamente ligada a la deshidratación aguda sufrida durante el proceso de incubación, nacedora o transporte [26]:
El diagnóstico preciso de las afecciones renales en avicultura requiere una correlación rigurosa entre las lesiones observadas durante la necropsia, el historial de nutrición y los análisis de laboratorio toxicológicos y serológicos.

Durante la apertura de la cavidad celómica en aves afectadas por problemas renales, el patólogo veterinario debe evaluar tres aspectos clave en los riñones: tamaño, coloración y presencia de depósitos minerales.
A continuación se presentan las matrices técnicas de diagnóstico diferencial y desbalances minerales para identificar y corregir patologías renales en aves de producción:
| Parámetro Mineral / Dieta | Nivel Crítico / Desbalance | Vía de Lesión Fisiológica | Diagnóstico Clínico / Lesión | Referencia |
|---|---|---|---|---|
| Calcio Dieta Recría | Cifras superiores a 2,50% antes sem 15 | Sobrecarga de excreción renal y alcalinización urinaria | Urolitiasis uretérica y atrofia renal | [6] |
| Fósforo Disponible | Cifras inferiores a 0,25% en postura | Pérdida del efecto inhibidor de fosfato sobre calcio | Precipitación de cálculos de urato cálcico | [6] |
| Sodio Dietético | Cifras superiores a 0,30% en pienso | Polidipsia, sobrecarga de presión e hidronefrosis | Camas húmedas renales e hipertrofia | [8] |
| Relación Ca:P Disp. | Relación superior a 3,0:1 en recría | Bloqueo de solubilidad de fitatos y precipitación | Depósitos de uratos e insuficiencia renal | [4] |
| Proteína Bruta | Cifras superiores a 24,00% en inicio | Exceso de catabolismo de nitrógeno a ácido úrico | Saturación tubular renal y gota visceral | [25] |
| Anión Cloro | Cifras superiores a 0,40% en dieta | Acidosis metabólica hiperclorémica e imbalanced DEB | Alteración de la matriz ósea y cascarón | [29] |
| Magnesio en Agua | Cifras superiores a 125 ppm en agua | Efecto laxante osmótico e irritación epitelial | Excreta líquida y pérdida de electrolitos | [8] |
| Sulfatos en Agua | Cifras superiores a 250 ppm en agua | Reducción de absorción de agua e insuficiencia | Deshidratación clínica y nefropatía | [8] |
| Potasio Dietético | Cifras superiores a 1,20% (Soja) | Excreción renal obligada y pérdida de balance | Diuresis osmótica y exudado de cama | [8] |
| Pérdida de Agua (Nacedora) | Pérdida de masa corporal superior a 8,00% | Colapso de filtración glomerular y cristalización | Uratosis neonatal y mortalidad en 5 días | [26] |
| Agente / Etiología | Especie Afectada | Lesión Macroscópica Renal | Prueba de Laboratorio / Diagnóstico | Referencia |
|---|---|---|---|---|
| Ocratoxina A (OTA) | Broilers / Ponedoras | Nefromegalia pálida con depósitos blancos tubulares | HPLC / ELISA en pienso (Cifras >100 ppb) | [9] |
| Citrinina | Broilers neonatos | Hipertrofia renal severa y diuresis con heces acuosas | Cromatografía en capa fina en cereales | [20] |
| IBV Nefrotrópico | Pollos / Reproductoras | Nefritis intersticial, uréteres distendidos de urato | RT-PCR de tejido renal o secuenciación | [12] |
| Exceso de Calcio | Ponedoras / Pollitas | Urolitiasis obstructiva y compensación renal | Determinación de Ca y P en dieta (ICP-OES) | [6] |
| Deshidratación Aguda | Pollitos de 1-5 días | Tumefacción con uratos en túbulos y microcristales | Histopatología renal (necrosis tubular) | [26] |
| Oosporeína | Broilers / Reproductoras | Gota visceral grave con necrosis tubular aguda | HPLC en insumos alimenticios contaminados | [15] |
| Exceso de Sodio/Sal | Aves comerciales | Tumefacción húmeda, diuresis y exudado abdominal | Valoración de ion sodio en agua y pienso | [8] |
| Virus Anemia Aviar | Reproductoras / Broiler | Atrofia tímica y renal con anemia aplásica | Serología ELISA / PCR de tejido linfoide | [33] |
| PCC # | Etapa Productiva | Factor Crítico de Control | Límite Operativo / Parámetro Térmico o Químico | Acción Correctora Verificada | Referencia |
|---|---|---|---|---|---|
| PCC 1 | Incubación / Nacedora | Tiempo de espera en nacedora | Período máximo de 24 h post-nacimiento | Ajuste de ventana de transferencia e incubación | [26] |
| PCC 2 | Transporte de Pollito | Humedad y temperatura | Temperatura de 24,0 °C a 26,0 °C y Humedad >65% | Control de climatización en camiones de pollito | [26] |
| PCC 3 | Recepción en Granja | Disponibilidad de agua limpia | Presión de 15 a 20 cm columna de agua en nipple | Purgado de tuberías y estimulación de consumo | [26] |
| PCC 4 | Formulación Recría | Calcio total en dieta <15 sem | Cifras de 0,90% a 1,20% de Ca total | Retiro inmediato de raciones tipo prepostura | [6] |
| PCC 5 | Formulación Prepostura | Calcio total semana 15-17 | Cifras de 2,20% a 2,50% de Ca digestible | Ajuste progresivo de 0,10% por semana | [6] |
| PCC 6 | Suplementación P | Fósforo disponible en postura | Cifras de 0,35% a 0,45% de P digestible | Adición de fosfato monocalcico al 0,30% | [2] |
| PCC 7 | Calidad de Ingredientes | Micotoxinas nefrotóxicas (OTA) | Cifras inferiores a 20 ppb en pienso terminado | Uso de aluminosilicatos a 2,50 kg/t | [10] |
| PCC 8 | Programa Vacunal | Protección contra IBV nefrotrópico | Cobertura serológica contra cepas regionales | Vacunación con cepa homóloga en incubadora | [23] |
| PCC 9 | Calidad del Agua | Concentración de Sodio y Cloro | Sodio <200 ppm y Cloro libre 2,00 a 4,00 ppm | Filtración por ósmosis o dosificación de ácidos | [8] |
| PCC 10 | Manejo de Cama | Niveles de Amoníaco en caseta | Concentración de amoníaco inferior a 20 ppm | Incremento de ventilación mínima en caseta | [3] |
La prevención y resolución clínica de los brotes de gota úrica y urolitiasis aviar requieren una intervención zootécnica coordinada sobre la nutrición, el agua de bebida y el microclima del galpón.
Para disolver los cálculos de urato cálcico en el sistema tubular y uréteres de las ponedoras, el protocolo clínico exige acidificar la orina sin alterar la reserva alcalina plasmática:
El Balance Electrolítico Dietético (DEB), calculado mediante la fórmula:
Fórmula: DEB (mEq/kg) = Na+ + K+ - Cl^-
debe mantenerse en el rango de 200 a 250 mEq/kg en climas templados, y elevarse a 250-280 mEq/kg durante eventos de estrés calórico [29].
En periodos calurosos, el jadeo del ave provoca alcalosis respiratoria al eliminar CO2. Para compensar, el riñón excreta iones bicarbonato (HCO3^-) reteniendo hidrógeno (H+), lo que eleva el pH urinario y favorece la precipitación de urolitos [16]. El uso de bicarbonato de sodio en dosis moderadas, asegurando niveles de sodio en agua no superiores a 150 ppm, ayuda a mantener el filtrado sin saturar la capacidad renal [8].
Q: ¿Cómo quitar la comezón por insuficiencia renal? A: En avicultura, la insuficiencia renal no produce prurito cutáneo como en humanos, sino pododermatitis y claudicación por depósitos de uratos sinoviales (gota articular). Su control requiere reducir la proteína dietética a 17%-18%, administrar acidificantes urinarios y aplicar hepatoprotectores solubles [15].
Q: ¿Qué puede causar fallas renales? A: Las fallas renales en aves son causadas por micotoxinas nefrotóxicas (Ocratoxina A, Citrinina), virus nefrotrópicos (Bronquitis Infecciosa), deshidratación neonatal temprana y desbalances minerales con exceso de calcio (>3,80%) o deficiencia de fósforo disponible (<0,25%) [6], [9].
Q: ¿Cuáles son las 5 etapas de la insuficiencia renal? A: En aves se identifican 5 fases anatomofuncionales: 1) Estrés tubular sin lesión; 2) Nefritis/desgeneración tubular inicial; 3) Pérdida de función excreta con hiperuricemia (>8 mg/dL); 4) Cristalización tubular y nefromegalia; y 5) Colapso renal agudo con gota visceral o urolitiasis terminal [9], [15].
Q: ¿Por qué las aves toman agua y no orinan? A: Las aves no orinan líquido separado porque carecen de vejiga; expulsan los uratos semisólidos blancos mezclados con la excreta digestiva. Si un ave consume agua pero no elimina uratos, presenta atrofia u obstrucción uretérica completa por urolitos o deshidratación tubular severa [6], [8].
Q: ¿Cómo previene la adición de fosfatos la urolitiasis en gallinas ponedoras? A: La adición de fosfato monocálcico aporta aniones fosfato solubles que inhiben la cristalización del calcio en la orina, bajando el pH urinario y disolviendo los microcálculos obstructivos en los uréteres [2], [6].
Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:
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Gonzalo Gonzalez Mateos: Urolitiasis en Ponedoras: Fósforo y Calcio Nocturno
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Manuel Contreras, MV, MS, Diplomado ACPV. Special Nutrients, Miami, Florida, USA: Daño Renal por Ocratoxina en Aves
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Dr. Aristóteles Malo Vergara: Efectos sistémicos de Bronquitis Infecciosa en aves
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