Estudios Serológicos en Avicultura: Guía de Monitoreo, Pruebas e Interpretación de Resultados

El estudio serológico en avicultura es una evaluación inmunológica cuantitativa de los títulos de anticuerpos en suero o yema para diagnosticar patologías y verificar vacunas. Se implementa mediante ELISA e Inhibición de la Hemaglutinación, manteniendo umbrales de coeficiente de variación inferiores al 30% y títulos geométricos protectores, lo que previene brotes infecciosos subclínicos y optimiza el desempeño zootécnico [13].

Técnicas y Métodos de Estudio Serológico (ELISA e HI)

Las metodologías serológicas en la avicultura comercial miden la concentración cuantitativa de inmunoglobulinas circulantes para determinar el perfil de inmunidad poblacional. La elección de la prueba inmunológica debe alinearse estrictamente con la estructura antigénica del patógeno, el isotipo de anticuerpo involucrado (IgM o IgY/IgG) y la ventana epidemiológica del muestreo [6].

Aglutinación Rápida en Placa y Diagnóstico Presuntivo

La prueba de Aglutinación Rápida en Placa (ARP) detecta de forma precoz los anticuerpos pentaméricos IgM producidos entre los días 4 y 7 post-infección. Por su alta sensibilidad primaria, la ARP se utiliza como método de tamizaje masivo para patógenos bacterianos como Mycoplasma gallisepticum (MG), Mycoplasma synoviae (MS) y Salmonella Gallinarum [22]. Sin embargo, la presencia de reacondicionadores lipídicos o el uso de vacunas oleosas inactivadas puede provocar reacciones inespecíficas y falsos positivos en hasta un 15% de los sueros evaluados [7].

"La aglutinación rápida en placa detecta IgM temprana a los 4 o 5 días de la infección. No obstante, para confirmar la positividad en planteles reproductores, es indispensable inactivar el suero a 56°C durante 30 minutos o diluirlo 1:5 antes de proceder con pruebas confirmatorias como ELISA o PCR." — Raúl Cerdá, Conferencia de Ponedoras Pesadas [7]

Inhibición de la Hemaglutinación en Virus Hemaglutinantes

La Inhibición de la Hemaglutinación (HI) mide cuantitativamente la capacidad de los anticuerpos específicos para bloquear los sitios de unión de la hemaglutinina viral sobre los eritrocitos. Es la prueba de referencia internacional estandarizada por la Organización Mundial de Sanidad Animal (OMSA) para cuantificar la inmunidad contra el virus de la Enfermedad de Newcastle (ENC), la Influenza Aviar (IA) y el Metapneumovirus Aviar [15], [28].

El procedimiento utiliza 4 u 8 Unidades Hemaglutinantes (UHA) del virus estandarizado (ejemplo: cepa LaSota para Newcastle o ag. H7N3/H5N2 para Influenza). Los resultados se expresan en potencias logarítmicas de base 2 (log₂). Un título ≥ 4 log₂ (1:16) se considera el umbral mínimo protector contra la mortalidad clínica en Newcastle, mientras que en Influenza Aviar se buscan títulos de 6 log₂ a 8 log₂ para mitigar la replicación y la excreción viral al ambiente [15], [26].

Ensayos Inmunoenzimáticos ELISA Indirecto y Competitivo

El ensayo ELISA es la tecnología serológica dominante en la avicultura industrial debido a su alta procesabilidad automatizada y reproducibilidad analítica. Existen dos formatos principales utilizados en el monitoreo rutinario:

1. ELISA Indirecto: Diseñado para la detección masiva de inmunoglobulinas IgY en suero o yema de huevo. La placa se sensibiliza con el antígeno purificado, se incuba el suero del ave y posteriormente un anticuerpo secundario anti-IgY de pollo conjugado a la enzima peroxidasa (HRP). La intensidad del color desarrollado es directamente proporcional a la concentración de anticuerpos específicos en la muestra [6].
2. ELISA Competitivo o de Bloqueo: Utilizado frecuentemente para patógenos de alta variabilidad o cuando se evalúan anticuerpos en diferentes especies aviares (pollos, pavos, patos). En esta modalidad, los anticuerpos presentes en la muestra compiten con un anticuerpo monoclonal específico provisto por el kit comercial. A menor desarrollo de color, mayor es la concentración de anticuerpos en la muestra evaluada [6].

Interpretación de Títulos de Anticuerpos e Inmunidad en Aves

La correcta lectura de los informes serológicos requiere transcender el análisis individual de una muestra aislada y evaluar la dinámica estadística de la población avícola. La interpretación se fundamenta en la interrelación del Título Medio Geométrico (GMT), el Coeficiente de Variación porcentual (CV%) y la distribución del histograma de respuesta [6], [14].

Título Medio Geométrico y Coeficiente de Variación

El Título Medio Geométrico (GMT) reduce el sesgo derivado de valores extremos o atípicos dentro del lote, ofreciendo una métrica representativa de la masa de anticuerpos del grupo. Sin embargo, un GMT elevado no garantiza por sí solo inmunidad uniforme si no se correlaciona con el Coeficiente de Variación (CV%), el cual mide el grado de dispersión de los títulos entre las aves muestreadas [6], [20].

Fórmula: CV% = ( (Desviación Estándar / Media Aritmética) ) × 100

• CV% < 30% (Excelente Uniformidad): Indica una aplicación homogénea de la vacuna (ej. en agua de bebida, spray o inyección individual). La totalidad del lote presenta una protección colectiva coordinada [6].
• CV% 30% - 50% (Uniformidad Moderada): Refleja pequeñas fallas en la dosificación, variaciones en la ingesta del inmunógeno o decaimiento heterogéneo de anticuerpos maternos [6].
• CV% > 50% (Alta Heterogeneidad / Desafío de Campo): Sugiere fallas graves en la técnica de aplicación, aves no inmunizadas, o bien la coexistencia de dos poblaciones serológicas bien definidas: aves vacunadas y aves infectadas por una cepa salvaje de campo [6], [14].

"Un coeficiente de variación sumado a títulos promedio desproporcionadamente elevados para la edad del ave es la firma serológica clásica de un pasaje de virus de campo. Una vacuna viva de Bronquitis Infecciosa aplicada al día 1 debe generar títulos moderados a los 45 días; encontrar un GMT de 8,000 con un CV del 38% confirma la circulación viral no controlada en la granja." — Pablo Sansalone, Especialista en Sanidad Aviar [6]

Distribución Inmunológica en Histogramas de Frecuencia

El análisis gráfico de los histogramas de ELISA (divididos habitualmente en bloques de vacunación del 0 al 10 o del 0 al 17 segun el software analítico) revela la arquitectura inmunológica del lote:

1. Curva Monomodal Estrecha: Representa la respuesta inmunitaria uniforme deseada tras la aplicación de vacunas parenterales inactivadas o vectorizadas. El 90% de las muestras se agrupan en dos o tres barras contiguas [6].
2. Curva Bimodal (Dos Picos): Evidencia la presencia de aves receptores de vacuna frente a aves expuestas a desafíos patogénicos tempranos, o bien la mezcla inadvertida de pollitos provenientes de lotes de reproductoras de edades dispares (jóvenes vs. viejas) con diferentes niveles de anticuerpos maternos (MDA) [5], [6].
3. Aplanamiento de Curva (Dispersión Ancha): Característico de fallas en la cadena de frío de vacunas vivas, boquillas de aspersión tapadas o deficiencias severas en el manejo del agua durante la vacunación oral [6].

Toma de Muestras y Extracción de Sangre en Pollos y Ponedoras

La integridad analítica de los resultados serológicos depende en un 80% del rigor aplicado en el muestreo, el volumen sanguíneo extraído y la conservación del suero previo al ensayo en el laboratorio [13], [19].

Tamaño Muestral Estadísticamente Significativo

Para garantizar un nivel de confianza del 95% en la detección de seroconversión o prevalencia de infección en parvadas comerciales (ge 10,000 aves), el tamaño muestral debe calcularse siguiendo parámetros estadísticos estandarizados [13], [18]:

• Monitoreo de Rutina y Post-Vacunación: Se requiere un mínimo de 18 a 22 muestras de suero por galpón o lote [13]. Muestrear menos de 15 aves invalida el cálculo del CV% y desvirtúa la representatividad del GMT.
• Diagnóstico de Patologías y Evaluación de Reproductoras: Se recomienda recolectar 25 a 30 muestras por lote, asegurando que el muestreo abarque de forma aleatoria los diferentes sectores del galpón (frente, centro, fondo y niveles de jaula) [18].

Protocolo Clínico de Venopunción y Separación de Suero

La venopunción en aves comerciales se efectúa sobre la vena braquial (cutánea ulnar) en la cara ventral del ala, o mediante punción del seno venoso yugular en aves jóvenes [19].

1. Extracción Sanguínea: Utilizar jeringas estériles de 3 ml con aguja 21G x 1" para reproductoras y ponedoras, o 23G x 3/4" para pollos de engorde. Extraer entre 1.5 y 2.5 ml de sangre por ave [19].
2. Coagulación y Retracción de Clatrato: Disponer los tubos sin anticoagulante en posición inclinada (ángulo de 45°) a temperatura ambiente (22 °C - 25 °C) durante 30 a 45 minutos. Posteriormente, incubar a 35 °C - 37 °C durante 30 a 60 minutos para acelerar la retracción del coágulo [19].
3. Prohibición de Refrigeración Precoz: Queda estrictamente prohibido refrigerar la sangre entera con el coágulo no separado; la refrigeración inmediata induce hemólisis masiva. La hemoglobina libre degrada las enzimas conjugadas en la prueba de ELISA y genera falsas lecturas de densidad óptica [19].
4. Centrifugación y Almacenamiento: Centrifugar las muestras a 2,500 - 3,000 RPM durante 10 minutos. Decantar el suero traslúcido y ámbar hacia criotubos estériles de 1.5 ml. Refrigerar a 2 °C - 8 °C si el ensayo se realiza dentro de las 72 horas, o congelar a -20 °C para almacenamiento prolongado en el banco de sueros [8], [19].

Detección Alternativa en Yema de Huevo

En lotes de gallinas ponedoras y reproductoras en fase de postura, la medición de anticuerpos IgY transferidos a la yema de huevo representa una alternativa no invasiva de alta precisión [3]. Los títulos de anticuerpos en yema mantienen una correlación lineal directa (r > 0.92) con los niveles séricos maternos, reduciendo el estrés por manipulación física y eliminando riesgos de bioseguridad asociados al sangrado en galpón [3].

Monitoreo Serológico para la Evaluación de Vacunas Avícolas

La serología post-vacunación permite comprobar cuantitativamente la eficacia de la inmunización, evaluar la cinética de la seroconversión y medir la transferencia pasiva de anticuerpos maternos (MDA) a la progenie [1], [5].

Transferencia Inmunitaria Materna y Catabolismo Sérico

Las gallinas reproductoras transfieren inmunoglobulinas IgY a la yema de huevo durante la vitelogénesis. Tras la incubación, el pollito absorbe el saco vitelino, alcanzando su nivel máximo de anticuerpos maternos (MDA) entre las 24 y 48 horas post-nacimiento [5], [6].

La tasa de transferencia varía significativamente según el patógeno aviar:

• Alta Eficiencia de Transferencia (60% - 80% de los títulos maternos): Enfermedad de Gumboro (IBD) y Enfermedad de Newcastle (ENC) [5].
• Eficiencia Moderada / Intermedia (25% - 35% de los títulos maternos): Bronquitis Infecciosa (IBV), Reovirus Aviar e Influenza Aviar [5].
• Transferencia Baja y Heterogénea (< 20%): Virus de la Anemia Infecciosa Aviar (CAV) y Mycoplasma gallisepticum [5].

El catabolismo de los MDA sigue una cinética de vida media constante (t₁/2). Para la Enfermedad de Gumboro, los anticuerpos séricos maternos sufren una reducción del 50% cada 3 a 3.5 días. En pollos de engorde con títulos iniciales de 6,000 en el ELISA al día 1, la ventana de susceptibilidad (títulos < 500) para la vacunación con cepas intermedias o intermedia plus se sitúa entre los 14 y 21 días de vida [5], [25].

Día 01: [¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦] Título GMT: 6,000 (Inmunidad Materna Alta)
Día 04: [¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦¦]       Título GMT: 3,000 (Catabolismo: t1/2 = 3.5 días)
Día 08: [¦¦¦¦¦¦¦¦]             Título GMT: 1,500 (Decaimiento pasivo)
Día 12: [¦¦¦¦]                 Título GMT:   750 (Umbral de neutralized vacunal)
Día 16: [¦¦]                   Título GMT:   375 (Ventana Óptima Vacunación Viva)
Día 21: [¦]                    Título GMT:   180 (Suscetibilidad a Desafío / Respuesta Activa)

Respuestas Serológicas Según la Tecnología Vacunal

La interpretación serológica debe considerar la plataforma biológica de la vacuna utilizada, ya que cada tecnología induce perfiles inmunológicos sustancialmente distintos [1], [15]:

1. Vacunas Vivas Atenuadas: Inducen respuestas humorales de magnitud moderada pero estimulan de forma potente la inmunidad celular y de mucosas (IgA local). Un título ELISA bajo post-vacunación viva no implica falta de protección si la inmunidad celular activa está consolidada [2], [6].
2. Vacunas Inactivadas Emulsionadas (Oleosas): Generan títulos séricos masivos, uniformes y sostenidos en el tiempo, alcanzando picos serológicos entre las 4 y 6 semanas post-inyección. Son fundamentales en reproductoras y ponedoras para proteger el aparato reproductor y asegurar la inmunidad de la progenie [1], [5].
3. Vacunas Vectorizadas Recombinantes (ej. rHVT-ND, rHVT-IBD, rHVT-AI): Expresan únicamente proteínas inmunogénicas específicas (como la proteína VP2 de Gumboro o la hemaglutinina H5 de Influenza) sobre un vector viral (Herpesvirus de Pavo). Estas vacunas inducen una seroconversión más lenta pero prolongada. Los kits comerciales de ELISA estándar de cuerpo entero pueden registrar títulos bajos o negativos en las primeras semanas, requiriendo kits de ELISA diseñados específicamente para la proteína recombinante expresada (ej. ELISA VP2) [1], [6].

Enfermedades Avícolas Detectadas por Serología

El monitoreo serológico permite diagnosticar la exposición clínica y subclínica a los principales patógenos virales y bacterianos que amenazan la avicultura comercial [10], [23].

Influenza Aviar e Inmunodiagnóstico Regulado

El diagnóstico serológico de la Influenza Aviar (IA) de Alta y Baja Patogenicidad está estrechamente fiscalizado por las autoridades sanitarias oficiales [10], [12]. Se emplean dos metodologías complementarias:

1. Inmunodifusión en Gel de Agar (IDGA): Detecta anticuerpos dirigidos contra las proteínas internas conservadas de la nucleoproteína (NP) y de la matriz (M) del virus de la Influenza A. Es una prueba cualitativa ideal para la vigilancia epidemiológica global en todas las aves [26].
2. Inhibición de la Hemaglutinación (HI) Subtipo-Específica: Utiliza antígenos homólogos para identificar anticuerpos contra los subtipos hemaglutinantes H5, H7 o H9. En parvadas vacunadas con vacunas inactiva de cepas específicas, se busca mantener títulos HI ≥ 6 log₂ para prevenir mortalidad e inhibir la transmisión horizontal en la granja [1], [15].

Enfermedad de Newcastle y Evaluación Inmunológica

La Enfermedad de Newcastle (ENC) requiere un monitoreo continuo mediante HI y ELISA [16], [20]. Títulos HI de 4 log₂ a 6 log₂ protegen contra signos clínicos mortales; sin embargo, en zonas de alta endemicidad con circulación de cepas velogénicas viscerotrópicas, se requieren títulos mínimos de 8 log₂ (1:256) para detener la replicación traqueal e intestinal del virus [15], [20].

Bronquitis Infecciosa Aviar y Desafío de Campo

El virus de la Bronquitis Infecciosa (IBV) presenta una amplia variedad de serotipos y cepas variantes (Massachusetts, 793B, QX, Variant 2). El ELISA detecta anticuerpos contra la nucleoproteína viral conservada, por lo que una seroconversión masiva (títulos superiores a 10,000 en ELISA) en aves de más de 35 días indica indiscutiblemente un desafío de campo por un serotipo salvaje [5], [6]. Para identificar el serotipo específico actuante, se requiere complementar la serología con RT-PCR y secuenciación del gen S1 de la espícula viral [6], [23].

Enfermedad de Gumboro y Anemia Infecciosa Aviar

• Enfermedad de Gumboro (IBD): El monitoreo mediante ELISA permite establecer la curva de decaimiento de los anticuerpos maternos para programar el día exacto de vacunación con cepas vivas intermedias o evaluar la respuesta a las 6 u 8 semanas de vida [5], [25]. Títulos por debajo de 396 en kits comerciales estándar indican susceptibilidad a la infección.
• Anemia Infecciosa Aviar (CAV): La serología en reproductoras antes de las 18 a 20 semanas de vida es crítica. Todos los lotes de reproductoras deben ser 100% seropositivos antes del inicio de la postura (mediante vacunación o exposición natural) para prevenir la transmisión vertical del virus a la progenie y la consecuente inmunosupresión severa en los pollito bebé [18], [21].

Frecuencia y Diseño del Calendario de Muestreo Serológico

Un programa de monitoreo serológico eficiente debe basarse en la construcción de líneas de base históricas y en un cronograma de muestreo estructurado por etapas productivas [8], [24].

Establecimiento de la Línea de Base Serológica de Granja

Una línea de base serológica es la representación gráfica e histórica de los títulos de anticuerpos esperados para cada enfermedad, edad y programa de vacunación dentro de una empresa avícola específica [5], [24].

"No existen valores serológicos universales válidos para todas las granjas. Cada empresa debe construir su propia línea de base recopilando datos de al menos 10 a 15 parvadas sanas de alto rendimiento durante un periodo de 12 a 18 meses. Cualquier desviación futura respecto a esta curva patrón funcionará como un sistema de alerta temprana." — Dr. Lucas Sara, Especialista en Diagnóstico Serológico [5]

Para construir una línea de base confiable:

1. Consolidar datos utilizando el mismo kit comercial de ELISA (ejemplo: IDEXX o BioChek), ya que no es técnicamente válido comparar valores numéricos entre marcas distintas [5].
2. Agrupar los resultados por rangos de edad fijos (ej. semanas 1, 4, 10, 18, 25, 35, 45, 55 y 65) [5], [24].
3. Calcular la media, la desviación estándar y el coeficiente de variación promedio para cada hito del calendario [5].

Cronograma Recomendado de Muestreo por Especie y Fin Zootécnico

1. Pollos de Engorde (Broilers)

• Día 1 (Planta de Incubación / Recepción): 18 a 22 muestras para evaluar el nivel y la uniformidad de los anticuerpos maternos (MDA) contra Gumboro, Newcastle, Bronquitis y Reovirus [5], [13].
• Día 36 a 54 (Edad de Faena): 18 a 22 muestras para verificar la seroconversión vacunal y descartar circulación de cepas de campo subclínicas (especialmente IBV y ENC) [5].

2. Reproductoras Pesadas y Ponedoras Comerciales

• Día 1 (Recepción): Evaluativo de la calidad de transferencia materna [5].
• Semana 6 a 8: Control de la respuesta a las vacunas primarias vivas (Bronquitis, Newcastle, Gumboro) [5].
• Semana 18 a 20 (Pre-Postura): Muestreo crítico obligatorio. Confirmación de seroconversión contra Anemia Infecciosa (100% positivos), comprobación de seronegatividad contra Mycoplasma y establecimiento del nivel base pre-postura inducido por vacunas inactivadas oleosas [8], [22].
• Semana 25 a 30 (Pico de Postura): Evaluación del pico máximo de anticuerpos séricos [5].
• Cada 6 a 8 semanas durante la postura: Monitoreo periódico de mantenimiento para detectar caídas en la tasa de postura asociadas a desafíos infecciosos e identificar el momento idóneo para revacunaciones estratégicas [8], [27].

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Preguntas Frecuentes (FAQ)

Q: ¿Qué significa estudio serológico? A: Es una prueba inmunológica cuantitativa que mide la concentración de anticuerpos en suero o yema de huevo para evaluar la respuesta vacunal, medir inmunidad materna o diagnosticar la exposición a patógenos en las aves [6], [13].

Q: ¿Qué pasa si la serología sale positiva? A: Indica que el ave posee anticuerpos específicos producidos por vacunación exitosa o por exposición a un agente patógeno de campo, requiriendo evaluar el título y el coeficiente de variación para diferenciar ambos procesos [5], [17].

Q: ¿Qué enfermedades se detectan en la serología? A: Detecta patologías virales como Influenza Aviar, Newcastle, Bronquitis Infecciosa, Gumboro y Anemia Infecciosa, así como infecciones bacterianas por Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma synoviae y Salmonella [7], [10], [15].

Q: ¿Qué es una prueba serológica? A: Es un ensayo de laboratorio estandarizado, como ELISA, Inhibición de la Hemaglutinación o Aglutinación en Placa, que identifica la interacción específica entre antígenos y anticuerpos en muestras biológicas aviares [6], [28].

Q: ¿Cómo se establece una línea de base serológica en granjas avícolas? A: Se construye consolidando datos históricos de 10 a 15 parvadas sanas con el mismo kit ELISA durante 12 a 18 meses, graficando los títulos esperados según la edad y programa vacunal [5], [24].

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Fuentes y Referencias Técnicas

Este artículo fue construido utilizando exclusivamente conocimiento empírico validado de la comunidad de expertos:

1. Manolo Fernandez Diaz: Monitoreo Serológico Post-Vacunación Aviar

2. Dr. Brian Jordan: Efficacy of IBV vaccines: clinical signs vs. viral load

3. Richard Gast: Egg Yolk Antibody Test for Salmonella

4. Francesca Falconi: Proteína 2SB: Diagnóstico eficaz de Adenovirus Aviar

5. Dr. Lucas Sara: Momento Óptimo para Serología de Bronquitis Infecciosa

6. Pablo Sansalone: Detección de Bronquitis Infecciosa por Serología

7. Raúl Cerdá: PCR: Diagnóstico Confiable de Mycoplasma en Ponedoras

8. Fernando Vargas: Monitoreo Serológico Clave en Sanidad Respiratoria de Ponedoras

9. José Poveda: Metodología Evaluación Respuesta Humoral Mycoplasma

10. Ricardo Cuetos: Aislamiento Viral y Serología en Influenza Aviar

11. Ricardo Cuetos: Serología post-vacunación Influenza Aviar

12. Ricardo Cuetos: Monitoreo Serológico IAAP

13. Dr Luiz Eduardo Ristow: Muestreo Serológico Óptimo en Avicultura

14. Dr Luiz Eduardo Ristow: Títulos bajos ELISA en enfermedades avícolas no vacunales

15. Luiz Sesti, Andrés Soto, Samuel Lopez, Rocío Fernández, Vilmos Palya. Ceva Salud Animal: Protocolo serología HI en avicultura

16. MONTANA Perú: Evaluación Inmunitaria Post-Vacunación Newcastle

17. MVZ MC Juan Carlos Valladares de la Cruz: Diferenciación Serológica Vacuna vs. Campo Avicultura

18. Haroldo Toro: Tamaño de Muestra para Monitoreo Serológico CAV

19. Marìa Luisa Sandro Morales: Manejo de Suero para ELISA en Avicultura

20. M.V. Carlos Vasquez: Interpretación Serológica ELISA e HI en Newcastle Aviar

21. Celina Buscaglia: Detección Serológica de VAIP en Aves

22. John Jairo Salazar. MVZ. Msc. Soporte Tecnico. Novartis AH. Colombia: Eficacia de Pruebas Serológicas para MG

23. Dra. Eliana Icochea: Herramientas Auxiliares para Diagnóstico Respiratorio Aviar

24. Carlos Vasquez: Línea de Base Serológica Aviar

25. Carmen Laura Perera, Julia Noda, Sandra Cuello y Pastor Alfonso: Resultados Vacunación EIB Asistida por Serología

26. Equipo técnico Tryadd: Pruebas de Anticuerpos para Influenza Aviar

27. Dr Luiz Eduardo Ristow: Monitoramento Sanitário de Poedeiras em Recria

28. Alma Flor Islas Rueda: Relevancia de serología en aves

29. Sergio Higuera, Dr. Mario Lechuga y G Mercado: Interpretación serología LTI aviar

30. Prof. Dr. Carlos Tadeu Salle: Modelos matemáticos para serología avícola

31. Julio Cesar Franco Garcia; Nadia Romero Gallegos, Ingrid Borja López, Vladimir Morales Erasto José Francisco Robles González, Lilia Castellanos Novoa, Carlos González Hernández: Evaluación Serológica Vacunas Coriza Aviar

32. MVZ MC Juan Carlos Valladares de la Cruz: Correlación histopatología-serología en Gumboro

33. Dr. John R. Glisson: Future of Avian Disease Control: From Pasteur to Genomics

34. Avicapp Web App: Alertas Tempranas Avícolas para Diagnóstico Rápido

35. Erick Rolón: Evaluación de Vacunación de Bronquitis Aviar