Cancro del tallo en girasol (Helianthus annus L.) causado por el complejo Diaporthe/Phomopsis helianthi Munt.-Cvetk.

El cancro del tallo en girasol (CTG) es causado por el complejo Diaporthe/ Phomopsis helianthi Munt.-Cvetk. (1981). En Argentina el CTG fue observado en la zona centro-norte de la provincia de Buenos Aires en 1994 (Ivancovich y Porfiri, 1994), y en Entre Ríos (Falico de Alcaraz et al., 1994; Formento, 1995). En Argentina esta enfermedad no es frecuente ni su regularidad predecible (Ridao, 1994), pero su potencial destructivo es importante. En la ex Yugoslavia, en el año 1983, con infecciones que oscilaron entre el 50 y el 80 % de incidencia en una red de ensayos de producción, se realizaron aplicaciones de fungicidas los cuales presentaron diferencias de rendimiento entre 500 a 1500 kg ha^-1 respecto al testigo (Masirevic and Gulya, 1992).

Posteriormente a la detección del CTG en 1994 (Ivancovich y Porfiri, 1994) no se observó la presencia de la enfermedad durante muchos años hasta que en Febrero de 2016 Ivancovich y Lavilla la identificaron en lotes de girasol de las zonas de Azul y Trenque Lauquen, de la provincia de Buenos Aires, con altos valores de prevalencia (número de lotes afectados) y severidad. El diagnóstico de la enfermedad fue realizado a campo y corroborado en el laboratorio de Fitopatología del INTA Pergamino, mediante estudios morfológicos de las colonias y sus esporas que permitieron identificar a Phomopsis helianthi, como agente causal de la enfermedad observada.

Durante Febrero de 2016 el CTG fue detectado en el sur y oeste de la provincia de Buenos Aires (comunicación personal Ing. F. Quiróz, INTA Balcarce, Buenos Aires) y en la provincia de La Pampa (comunicación personal Ing. Andrés Corro Mollas, INTA Gral. Pico, La Pampa).

Figura 1. Ciclo patológico de Diaporthe/Phomopsis helianthi.

 

Los síntomas de la enfermedad comienzan con manchas en el borde de las hojas, en forma triangular y de coloración pardo-oscuro (foto 1). Una vez que la infección del agente causal del CTG llega al punto de inserción del pecíolo de la hoja con síntomas, se generan cancros de tamaño variable, de color castaño claro a oscuro (foto 2). Una vez que se produce el cancro, el tallo pierde turgencia en los tejidos, se ablanda y provoca la rotura y/o quebrado del mismo (foto 3), reduciendo el número de plantas, capítulos y granos por m², y ende el rendimiento kg ha^-1.

En etapas posteriores a R1 el CTG puede afectar directamente al capítulo (foto 4), causando necrosis en forma de triángulo e infectar los granos (aquenios), reduciendo su peso (mg).

El signo que presenta el patógeno en su fase asexual (Phomopsis helianthi) son picnidios de color oscuro ubicados sobre los cancros de los tallos del girasol (foto 5). Bajo determinadas condiciones ambientales se pueden desarrollar sobre los tallos del rastrojo peritecios oscuros en su faz sexual (Diaporthe helianthi).

 

La propagación del agente causal del CTG, es principalmente por el viento y las salpicaduras por precipitaciones. La humedad relativa cercana al 90% y temperaturas en el rango de 20 hasta 24 °C favorecen el desarrollo de la enfermedad (Muntanola-Cvetkovic et al., 1981; Acimovic & Straser, 1982; Muntanola-Cvetkovic et al., 1985). Según Maric et al., (1988), la severidad de la enfermedad, depende de la susceptibilidad de los cultivares, de estado de crecimiento de la plantas y de las condiciones climáticas. La abundante disponibilidad de agua hasta floración favorece la infección, mientras que la temperatura no parece ser un factor limitante para la misma. La infección del hongo se ve favorecida por las condiciones que conducen a un buen desarrollo vegetativo, como las siembras tempranas y alta fertilidad (Regnault, 1985).

 

La incidencia de la enfermedad se puede reducir adoptando el siguiente manejo de cultivo:

 

Se recomiendan tratamientos foliares con una primera aplicación al estado de V6-V8 (Schneiter & Miller, 1981) y una segunda en R4 (Schneiter & Miller, 1981), con fungicidas a base de benzimidazoles mas fungicidas de contacto o fenarimol (Iliescu et al., 1983).

En Croacia se realizaron ensayos con fungicidas aplicados durante la floración y a los 20 días posteriores, observando una reducción significativa en la severidad de la enfermedad, y un incremento en los rendimientos (Maric et al, 1982a; Masirevic y Maric, 1988).

 

Observaciones preliminares indican que la resistencia al patógeno depende de unos pocos genes con dominancia parcial, y parece ser de tipo horizontal y general (Sackston, 1992).

En varios países de Europa se han desarrollado métodos que han permitido detectar líneas portadoras de genes de resistencia, habiéndose producidos híbridos con resistencia a cancro y con buenos resultados agronómicos (Masirevic and Gulya, 1992).

Cultivares resistentes a la enfermedad, los estudios han demostrado que los mecanismos genéticos de resistencia corresponden a unos pocos genes con efectos aditivos (Masirevic and Gulya, 1992). La evaluación de híbridos puede realizarse bajo infección natural, pero la prueba está limitada por la baja frecuencia de aparición de la enfermedad. En Francia, diferentes test artificiales fueron puestos a punto para evaluar el comportamiento del girasol según el órgano (i.e hoja, pecíolo, tallo) inoculado (Bertrand & Tourvieille, 1987; Tourvieille et al., 1988). En la UIB, se determinó que las respuestas de los híbridos a inoculaciones foliares, en pecíolo y caulinares con P. helianthi eran independientes entre sí (Verschoor et al., 1998; García et al., 2000 ; Pereyra et al., 2008).

Foto 5: Picnidios de Phomopsis helianthi.