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Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.

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INTRODUCCIÓN

La familia Paramphistomatidae está constituida por un amplio grupo de tremátodes con numerosas especies, los cuales viven como parásitos del rumen e intestino delgado de bovinos y otros rumiantes, dentro de estos se encuentra el género Cotylophoron, parásito que se encuentra en nuestro país como agente causal de enfermedad y pérdidas económicas en la ganadería.

La enfermedad causada por estos parásitos se denomina paranfistomosis, siendo una enfermedad de distribución mundial con áreas endémicas en todos los continentes, donde las infecciones intensas pueden provocar una gastroenteritis aguda acompañada de alta morbilidad y alguna mortalidad, especialmente en hospedadores jóvenes.

 

Descripción

Dentro de la clase Trematoda, la familia Paramphistomatidae alberga al género Cotylophoron spp, que en estado adulto son pequeños gusanos de 1 cm de longitud, de forma cónica o piriforme, normalmente de color rosado o verdoso, cuando son vistos en fresco adheridos a la mucosa del rumen y del retículo que vienen a representar los lugares definitivos de ubicación.

Carecen de cavidad orgánica, estando los órganos internos sostenidos por un tejido esponjoso formado por células ramificadas que se conoce como parénquima. Poseen órganos de fijación, representados por ventosas de estructura muscular, generalmente en número de dos, que le sirven para fijarse a las microvellosidades del rumen y retículo.

La alimentación de los paranfistomas adultos consta de material líquido y semilíquido que se encuentra en la región donde se ubican estos parásitos bien sea a nivel del rumen o retículo. También pueden absorber a través del tegumento aminoácidos y monosacáridos. La digestión parece ser extracelular y tiene lugar en la luz de los ciegos.

Tienen muy desarrollados el sistema muscular y los órganos reproductores. Son hermafroditas y en los individuos sexualmente maduros, los testículos y los ovarios funcionan al mismo tiempo, presentando fecundación cruzada entre dos individuos que se aparean.

 

Epidemiología

La enfermedad causada por estos parásitos, resulta en importantes pérdidas económicas en explotaciones de bovinos, búfalos, ovejas y cabras, pudiendo también infectar rumiantes salvajes. Se estima que más de 300 millones de bovinos y 250 millones de ovejas están expuestos a estos parásitos a nivel mundial, causando pérdidas económicas que superan los 3 billones de dólares por año. Las construcciones de reservas de aguas y sistemas de riego favorecen el establecimiento y distribución de estas patologías, al disponer de mayores áreas de propagación para los caracoles que actúan como hospedadores intermediarios.

Se señala que a pesar de que no existe relación entre la época del año y la incidencia de Cotylophoron cotylophorum, ya que esta se mantiene todo el año, los principales brotes ocurren durante la temporada seca, cuando los caracoles y las metacercarias se concentran cerca de las aguadas, donde también se mantienen reservas de pasto o por la realización de riegos durante esta temporada, sobre todo por inundación, que favorecen la diseminación de las formas infectantes.

Las primoinfestaciones y la edad proporcionan una cierta protección frente a las reinfestaciones y, de este modo, la forma aguda de la enfermedad solo suele observarse en los animales jóvenes, mientras que los animales mayores, que son capaces de soportar las exposiciones masivas a la forma parasitaria, contaminan los pastos con huevos.

 

Ciclo Biológico (Figura 1)

Los ciclos biológicos de los paranfistomas son en general, muy similares. Los huevos son de color claro, al contrario que los de la especie de Fasciola; son operculados y, en el momento de ser eliminados, se encuentran en los primeros estadios de la segmentación. El tiempo de desarrollo varía según la temperatura y la especie de que se trate, y es aproximadamente de 12 a 21 días. Los miracidios, una vez abandonados el huevo, nadan en el agua y penetran en el caracol acuático a través del neumostoma, y, posteriormente, por la pared posterior de la cavidad del manto. No obstante, también pueden penetrar, a veces, por la parte expuesta del caracol.

El ciclo biológico y la epidemiología de este parásito son similares a los tremátodos del hígado. Los hospedadores intermediarios son caracoles de los géneros Bulinus, Planorbis, Lymnaea, Pseudosuccinea, Fossaria y Glytanisus. Los gusanos adultos producen huevos que pasan a través de las heces hacia el pasto, dependiendo de las condiciones ambientales se alarge o acorta la incubación, de donde emergen las primeras larvas o miracidios, los cuales infectan a los caracoles; dentro de estos se lleva a cabo un nuevo desarrollo de larvas transformándose en esporocistos y redias. Posteriormente del caracol emergen las cercarias, que se desprenden de su cola y se enquistan en las hojas de los pastos o en la superficie del agua, donde se hacen infectantes, los rumiantes se infestan vía oral al consumir los mismos.

El ciclo biológico de los paranfistómidos es siempre indirecto y tiene en común la existencia de un primer hospedador intermediario molusco, en el interior del caracol se multiplica enormemente mediante reproducción asexual, lo que permite que un solo miracidio produzca un gran número de cercarias. Sin embargo, la metacercaria no se reproduce en el medio externo, mientras que el adulto se reproduce sexualmente en el hospedador definitivo.

 

Figura 1. Ciclo biológico de Cotylophoron spp.

 

Signos clínicos

La signología de la enfermedad está representada por trastornos intestinales, los cuales se caracterizan por diarreas profusas de olor fétido, pérdida del apetito, anorexia y pérdida de proteínas que pueden conducir a edema generalizado. La severidad de la enfermedad depende del grado de contaminación y condiciones ambientales que garanticen una presencia significativa de metacercarias.

La enfermedad ocurre cuando grandes cantidades de formas inmaduras de paranfistomas lesionan la mucosa del intestino delgado luego que se desenquistan, causando destrucción e inflamación del tejido. Los trastornos clínicos producidos por los parásitos adultos fijados a la mucosa de la panza son menores que los originados por las fases juveniles emigrantes, que pueden producir gastroenteritis combinadas con diarreas sanguinolentas.

Las lesiones producidas por Cotylophoron producen pérdida de albúmina plasmática, lo que conlleva a una hipoalbuminemia. Esta pérdida proteica unida a la reducción del apetito causa importantes consecuencias fisiopatológicas, entre ellas hidropericardio, hidrotórax, edema pulmonar, ascitis y edema submandibular, entre otros signos.

La pérdida de proteínas hacia el intestino junto con la pérdida del apetito parece ser la consecuencia fisiopatológica más importante. Histológicamente, produce inflamación catarral y hemorragia generalizada en el duodeno y yeyuno, con destrucción de las glándulas intestinales, degeneración de los nódulos linfáticos asociados y otros órganos durante la migración. Estas lesiones van acompañadas de anemia, hipoproteinemia, edema y emaciación.

 

Diagnóstico

El diagnóstico de la enfermedad está basado en el análisis de los antecedentes epidemiológicos de la localidad, signos clínicos de la enfermedad y coprología. En la presentación clínica de la enfermedad, además de la diarrea y la anorexia se encuentra que los animales beben agua frecuentemente, con el hocico sumergido durante largos períodos de tiempo, debido a la grave deshidratación y se observa disminución de la producción láctea en animales adultos. Epidemiológicamente, el hallazgo de hospedadores intermediarios en pastos y aguas es de sospecha.

En el diagnóstico deben descartarse patologías con similitud en los signos clínicos, tal como la paratuberculosis. La confirmación de la enfermedad puede realizarse a través de los hallazgos de lesiones características en la necropsia, así como por la presencia de gusanos inmaduros en los primeros metros del intestino delgado y de gusanos adultos en la mucosa del rumen y retículo. La coproparasitología tiene un valor limitado, ya que la signología de la enfermedad ocurre durante el período prepatente. Las técnicas que evidencian los huevos en las muestras de heces son las mismas técnicas de sedimentación empleadas para el diagnóstico de Fasciola hepatica.

El diagnóstico de los tremátodes que afectan  a los bovinos a nivel hepático y ruminal se realiza frecuentemente por medio de técnicas de flotación que emplean soluciones hipersaturadas de alta densidad  o a través de técnicas de sedimentación. Estas últimas se basan en la demostración de los huevos en el sedimento de una muestra de materia fecal. La mayor dificultad a vencer con este tipo de técnica es lograr eliminar la mayor cantidad posible de elementos normales de las heces, los cuales dificultan la observación de los huevos. Con ese fin se han propuesto dos alternativas: la primera consiste en controlar el tiempo de sedimentación en tubos de ensayo, mientras que la segunda se basa en el uso de tamices de diferentes tamaños.

La técnica de sedimentación tamizado es una técnica útil que permite observar la presencia de huevos pesados como los de Fasciola hepatica, Paramphistomun sp, Cotylophoron sp y quistes de protozoos como Buxtonella sulcata.

Debe hacerse la diferenciación de los huevos de Cotylophoron cotylophorum de los de Fasciola hepatica, a través del color de los mismos, que puede hacerse con la coloración del sedimento con azul de metileno o verde de malaquita, los cuales permiten una rápida visualización al crearse un contraste entre el color de los huevos y las fibras vegetales teñidas con el colorante. Los huevos de Fasciola debido al contacto con la bilis son de color marrón, mientras que los de Cotylophoron son claros.

 

Tratamiento

Los desparasitantes empleados contra la Fasciola hepática resultan ineficaces en el control de Cotylophoron cotylophorum. El rafoxanide, droga de relativa efectividad, puede ser obtenido en nuestro país, lo cual sugiere la atención de los organismos y empresas competentes, para la introducción en el país de otras drogas capaces de contribuir al combate de esta patología.

El rafoxanide interfiere en la formación de compuestos de alta energía como ATP y ADP, además de que transporta cationes a través de la membrana e interfiere en la fosforilación oxidativa en la mitocondria del parásito. Se usa a la dosis de 7.5-10 mg/Kg de peso, por vía subcutánea. Se recomienda aplicarlo 3 semanas después para eliminar a los parásitos que posiblemente escaparon al primer tratamiento. Otros autores recomiendan utilizarlo a dosis de 15 mg/Kg de peso.

Para el tratamiento de la paranfistomatosis se han utilizado productos como el resorantel, rafoxanida, Oxiclosamida, niclofolán y otros antihelmínticos, aunque su eficacia es variable frente a los estadios maduros e inmaduros. Por ejemplo, la niclosamida falló para curar completamente algunos animales infectados, mientras que la oxiclosamida ha obtenido una efectividad de 97.9% contra paranfistomas maduros.

 

Medidas de Control

Debe evitarse el pastoreo de animales jóvenes susceptibles, en áreas donde animales adultos crónicamente infestados pastorean, así como tratar de minimizar las condiciones favorables para la multiplicación de los hospedadores intermediarios, de igual modo tomar medidas como el control de las poblaciones de caracoles intermediarios mediante la aplicación de molusquicidas y eliminación de las pasturas o vegetación alrededor de las aguadas, aunque siendo recomendables, no resultan fáciles de implementarlas en nuestro medio.

Debido a que los vectores son caracoles acuáticos, las ovejas y vacas deben pastar en pastos altos; se deben drenar las zonas en las que haya agua estancada, o bien tratar los hábitats de los caracoles con molusquicidas, aunque el impacto al medio ambiente no justifica su uso. El drenaje de estanques y charcas constituye una medida de control permanente.

Este parásito tiene importantes repercusiones en nuestro medio en cuanto a difusión como a presentación clínica, en muchos casos asociado con otras patologías que pueden cursar con signos clínicos similares y desmejoramiento de la condición corporal. A continuación se presentan algunos datos de diagnóstico coprológico realizados en muestras provenientes de varios municipios del estado Barinas.

 

Cuadro 1. Cantidad de muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas por parroquia, municipio Antonio José de Sucre, Barinas. Año 2010. Laboratorio LABSERVI.


Cuadro 2. Cantidad de animales muestreados y positivos al parásito Cotylophoron cotylophorum en 6 fincas del sector Concha, municipio Pedraza, Barinas. Año 2010.


Cuadro 3. Cantidad de muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas, municipios Zamora, Pedraza y Andrés Eloy Blanco, Barinas. Año 2010. Laboratorio LABSERVI.

 

Cuadro 4. Porcentaje de prevalencia general y mensual del parásito Cotylophoron cotylophorum en 3 fincas del sector Los Ranchones, municipio Antonio José de Sucre, Barinas. Año 2011.

 

Cuadro 5. Cantidad de muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas por parroquia, municipio Antonio José de Sucre, Barinas. Año 2011. Laboratorio LABSERVI.


Cuadro 6. Muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas, municipios Zamora y Pedraza, Barinas. Año 2011. Laboratorio LABSERVI.

 

Cuadro 7. Cantidad de muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas por parroquia, municipio Antonio José de Sucre, Barinas. Enero- Junio 2012. Laboratorio LABSERVI.

 

Cuadro 8. Muestras positivas al parásito Cotylophoron cotylophorum y fincas muestreadas, municipios Zamora y Pedraza, Barinas. Enero- Junio 2012. Laboratorio LABSERVI.


Figura 2. Rebaño con mala condición corporal y diarrea.


Figura 3. Cotylophoron cotylophorum adherido a la mucosa del rumen


Figura 4. Parásitos adultos vistos en fresco


Figura 5. Lesiones producidas por las larvas desenquistadas en la mucosa del duodeno


Figura 6. Corte histológico de paranfistomas inmaduros invadiendo la mucosa del duodeno




 
Autor/es
Barinas, Venezuela
Médico Veterinario. Especialista
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Jose Alfredo Paramo Garcia
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salamanca gto, Guanajuato, México
Gerente
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
22/10/2014 | saludos cren ustedes que el gamnado gordo al momento de la matanza tenga fasiola hepática bueno no se que sea la fasiolña hepática pero e matado algunos y me han saluido no todos perola mayaria con tumores uno con un tumor grande yen elñ hígado y el otro como quisted o ronchas blancas en el hígado y quisioera saber que enfermedad es y con que puedo conbartirla
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Wilfredo Cepero Rodriguez
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la habana, La Habana, Cuba
Dr. en Ciencias Veterinarias
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
22/10/2014 | Estimado Jose Alfredo, ante todo un afectuoso saludo,

Para el caso que nos plantea, antes de emitir un resultado de las lesiones que refiere, le recomiendo que realice envios a un laboratori, de muestras de organos enteros afectados o las lesiones que usted dice, de forma integra sin abrir, y lo mas rapido que pueda o bien conservadas en refrigeracion y no en conjelacion y pida que les se realicen el estudios de anatomia patologica y enviar ademas, muestras de sangre con anticuagulante y sin anticuagulante para hacer investigaciones serologicas y hematologicas, tambien debe de remitir muestras de Heces fecales para completar el estudio. Ya en el laboratorio distribuiran las muestras a cada uno de las secciones o departamentos donde seran investigadas cada una de ellas.

Esas lesiones que usted refiere, sobre todo las del higado pueden ser abscesos hepaticos, por varias causas, linfomas (que son tumores) y otro tipo de infeccion que puede estar asociada a la infestacion por varios tipos de parasitos, no se debe dejar de pensar en la tuberculosis, por eso es necesario una inspeccion clinica de los animales y mirar y palpar todos los ganglios externos, debe de pedir asistencia veterinaria sino puede realizar usted mismo estas observaciones.
Le aconsejo que siempre que vea lesines en los organos de sus animales y mas si son para el consumo sea conciente y envielas al laboratorio, asi puede evitar la contaminacion a presonas que consuman esas carnes, perdidas economicas y tendria un resultado correcto, asi como mejorara la salud de sus animales.
otras preguntas que desee realizar estare a su dispocicion.
saludos
Dr. Wilfredo
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Jaime Garrido Ribas
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Socopo, Barinas, Venezuela
Médico Veterinario. Especialista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
30/10/2014 | Como menciona Georgett, en ocasiones se pueden confundir los huevos de Fasciola con los de Cotylophoron, por eso es que se utiliza un colorante como contraste, particularmente utilizo el azul de metileno, el cual ofrece un excelente contraste, puesto que los huevos de Fasciola tienden a observarse de color amarillo dorado a marrón, mientras los huevos de Cotylophoron se observan transparentes. Las diferencias morfológicas de ambos huevos son poco marcadas, pero a medida que vamos afinando el ojo al microscopio, mejoramos el diagnóstico. En el libro de diagnóstico helmintológico de Thienenpont, se pueden ver las diferencias que ambos presentan. Gracias por tu aporte.
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Lisbeth Campos Arenas
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Barrancabermeja, Santander, Colombia
medico veterinario zootecnista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
30/10/2014 | Dr Jaime muy interesante su aporte y con lugol parasitologico que tal para diferenciarlos? tuve el caso de unos camuros de clima calido que salieron con uno huevos muy similares a los de fasiola pero no concordaba con el tipo de clima investigando e indagando encontre Paramphistomun muy paresido tambien a la fasiola
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Jaime Garrido Ribas
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Socopo, Barinas, Venezuela
Médico Veterinario. Especialista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
09/11/2014 | Estimada Lisbeth: Como he comentado otras veces, utilizo para contraste azul de metileno, con muy buenos resultados. Es muy importante e interesante lo que usted hizo: realizó una investigación epidemiológica, ya que lo que estaba observando a microscopio no le parecía Fasciola y además por el tipo de clima no se convenció, y se puso a buscar y encontró que era Paramphistomun. Excelente su aporte. Saludos.
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Juan Carlos Londoño Estrada
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La Dorada, Caldas, Colombia
MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
13/11/2014 | Soy un veterinario de campo inquieto con el tema de este parásito, no conocia este foro del Cotylophorum, acabo de leerlo, y quiero antes que nada felicitar al Dr. Jaime Garrido Ribas por este articulo que mezcla la ciencia con las aplicaciones practicas de campo, es excelente en su redacción y contenido; y para mi grata sorpresa encuentro que el ultimo comentario es de la colega Lisbeth Campos, de una zona o área similar a donde yo vivo que es la Dorada (Caldas), ambos pertenecemos al Magdalena Medio, y me llama la atención su espíritu investigativo porque los profesionales en general, tenemos la tendencia a rutinizarnos, a no ir mas allá de lo cotidiano, a no investigar. El Cotilophorum solo lo mencionan los libros, pero no la casuistica de campo; conozco el caso del Dr. Berrio, prestigioso profesional MVZ al servicio del ICA (Instituto Colombiano Agropecuario) que diagnostico hace cerca de 20 años la presencia de este parásito en el valle del Cauca (Tulua). Hace poco el Dr. German Parra, prestigioso veterinario de campo y muy estudioso que ha estado vinculado a clínicas ambulatorias de la Universidad del Tolima y de la universidad de la salle, realizo una necropsia a un bovino Brahman en una finca cercana y encontró dicho parásito. También me entere por el comentario de un colega, de la presencia del parásito en Fusagasuga, Cundinamarca Colombia, ciudad de clima cafetero, ubicada en la ladera de la cordillera oriental, a 1.500 M.SN.M. aproximadamente.
Para comenzar debemos concientizarnos de que el parásito existe en el trópico, este reconocimiento debe hacerlo la academia, los laboratorios de Diagnostico Veterinario Estatales y particulares, y con un adecuado sistema de diagnostico y diferenciación con Fasciola hepática a nivel de laboratorio de diagnostico, los profesionales de campo tendremos las herramientas para poder reportar su presencia a nivel de hato.
Los que saben que existe el Cotilophorum lo asocian con la presencia de caracoles (Genero Limnea) que para Colombia corresponde a trópico alto, y sin embargo los laboratorios no lo reportan, confunden los huevos con fasciola, y en trópico bajo (clima cálido) creo yo que lo ignoran (ese tipo de huevo corresponde a fasciola). nos queda un largo camino por recorrer para demostrar la presencia de este parásito.
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Jaime Garrido Ribas
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Socopo, Barinas, Venezuela
Médico Veterinario. Especialista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
16/11/2014 | Excelente comentario del doctor Juan Carlos Londoño Estrada. Con respecto a la conciencia que debemos tener respecto a la presencia de los tremátodes Cotylophoron y Fasciola, es bueno comentar que la enfermedad que no se piensa es la que no existe. Me explico: si no investigamos a fondo los casos clínicos que se nos presentan y pensamos que es otra enfermedad distinta a la que está afectando a los animales, seguiremos creyendo que es esa y no otra enfermedad la que nos ocasiona las pérdidas. De allí la importancia de revisar a fondo cuando se nos presente algún caso complicado en una finca.
Cordiales saludos.
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Pedro Arenas Florez
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Cusco, Cusco, Perú
ingeniero zootecnista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
18/11/2014 | saludos Dr. Garrido, que interesante su articulo sobre el parásito cotylophorum uno se confunde con la fasiola hepatica no conocía es parásito, escribe es un productor de ovinos del sur de Perú
he tenido signos clinicos como UD. menciona, hidro pericardio, ascitis, edema sub-mandibular, tendré mucho en cuenta desde ahora en el tratamiento de parásitos.
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Jaime Garrido Ribas
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Socopo, Barinas, Venezuela
Médico Veterinario. Especialista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
19/11/2014 | Ingeniero Arenas, saludos cordiales. En casos como el suyo, la recomendación principal sería realizar diagnóstico coprológico de rebaño, para conocer con más exactitud cual o cuales son los parásitos que afectan a los animales en las distintas épocas del año y establecer así un programa de control más eficaz, basado en el manejo de los animales y el uso de desparasitantes adecuados. Agradecido por sus aportes.
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Perez Cruz Eden
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Tlaxcala, Tlaxcala, México
Médico Veterinario Zootecnista
Re: Cotylophoron cotylophorum: revisión de aspectos generales como medida inicial para implementar programas de control.
19/11/2014 | En cuanto a lo mencionado por todos, les comento que estoy deacuerdo que son muy necesarios los métodos de Diagnostico para cada explotación ganadera y para elegir el tratamiento adecuado.

Pero algo importante que influye en el éxito de los tratamientos, es la falta de adiestramiento de personal encargado del ganado: es decir, utilización de principio activo de baja calidad, dosis inadecuadas, uso rutinario del medicamento (sin calendario de desparasitacion), almacenamiento inadecuado, la falta de tratamiento de praderas o potreros en la erradicación del hospedero intermediario, etc.

Todo conlleva a que hayan resistencias a los desparasitantes.

Garcias_ al Doctor Jaime G. por darnos a conocer su trabajo, y que inspira a aplicar un plan de diagnostico en nuestra labor ya que la mayor parte la asemos atravez de la signologia.
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