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Autor: Alberto Gimeno - Consultor técnico de SPECIAL NUTRIENTS, NC, 1394 Coral Way, Miami, Florida, 33145 USA.
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INTRODUCCION
Las micotoxinas son metabolitos secundarios generalmente tóxicos y producidos
por algunas especies fúngicas. Las micotoxinas comportan toda una serie
de problemas toxicológicos y síndromes en los animales de los
que destacamos, hepototoxicos, teratógenos, nefrotóxicos, estrogénicos,
neurotóxicos, hemorrágicos, cardíacos, gastrénterivos,
musculares, dermatológicos y respiratorios, destacando en especial el
efecto inmunosupresivo que algunas de ellas tienen.
En comparación con las aves, cerdos, conejos, vacas, terneros y novillos,
los estudios de micotoxicidad realizados en corderos, ovejas y cabras son aún
escasos. Presentamos en este pequeño articulo los efectos de algunas
micotoxinas en los pequeños rumiantes.
1.- AFLATOXINAS
1.1.- Una concentración de 2,5 ppm (mg/Kg) de aflatoxina
en la dieta suministrada a corderos durante 35 días (1) provocó
una substancial reducción del consumo de pienso, ganancia de peso vivo
diaria y relación ganancia de peso vivo/alimento consumido, comparativamente
con el grupo control, incluso después de un periodo de 32 días
de detoxificación (consumo de alimento no contaminado) el consumo de
pienso diario continuaba bajo.
La aflatoxicosis elevó la actividad de la aspartato-amino transferasa
y la gamma-glutamil transferasa al igual que las concentraciones de proteína
total y colesterol en sangre. Por el contrario hubo una reducción en
la fosfatasa alcalina, glucosa colinesterasa, albúmina, fósforo
inorgánico, hierro y su capacidad de fijación. Hematocritos, leucocitos
y tiempo de protombina en sangre estaban elevados. La aflatoxina fue dada a
través de dos piensos, uno de ellos tenia como principal fuente proteica
la harina de soja y el otro la harina de pescado.
Ninguna de esas fuentes proteicas alivio los efectos tóxicos provocados
por la aflatoxina.
Semejantes efectos en cuanto a toxicidad y problemas de desarrollo fueron observados
por otros autores (2,3) con una misma contaminación suministrada a corderos
durante 21 días. Los problemas ya fueron significativos a partir de los
14 días del consumo del alimento contaminado. A los 21 días fue
encontrado también un aumento de la concentración de fibrinogeno
probablemente debida a la inflamación pulmonar que afectaba a los animales
intoxicados (2).
A los 14 días de consumo de alimento contaminado los corderos presentaban
un peso del hígado más bajo y uno más alto de los riñones
y bazo comparativamente con el grupo control. El contaje de eritrocitros era
elevado al igual que los niveles de globulinas. Durante los 8 días siguientes
que duró el periodo de detoxificación (suministro de alimento
no contaminado), los valores hematológicos volvieron a los niveles normales,
sin embargo los parámetros bioquímicos permanecieron invariables
(3).
1.2.- Corderos que consumieron durante 37 días alimento
contaminado con aflatoxinas en concentraciones de 2 ppm (4), fueron afectados
por problemas de inmunosupresión de forma que falló la vacunación
contra Brucella melitensis efectuada 17 días después
de estar a comer el pienso contaminado. Los efectos inmunosupresores que puede
provocar una aflatoxicosis son también indicados por otros autores (5)
con concentraciones de contaminación en pienso del mismo orden.
2.- OCRATOXINAS
2.1.- Es de destacar que en ovejas la ocratoxina A se hidroliza
a ocratoxina alfa (no toxica), así pues en el suministro de ocratoxina
A de 0,5 mg/Kg de peso vivo (6) a través de heno, a través de
una mezcla de 100% de cereales y a través de una mezcla de 30% de cereales
y 70% de heno, la hidrólisis de la micotoxina fue en un nivel más
elevado (cinco veces más) y más rápida con heno (0,6 horas)
con el cual el pH del fluido ruminal fue de 7,1, que con la mezcla de 100% cereales
(3,6 horas) con el cual el pH del fluido ruminal fue de 5,7, que con la mezcla
de 30% de cereales y 70% de heno (1,3 horas) con la cual el pH del fluido ruminal
fue de 6,5
Probablemente esta diferencia fue debida a la diferente flora ruminal que se
crea según el tipo de alimento consumido, el cual tiene una influencia
significativa en la tasa de hidrólisis de la ocratoxina A.
Los mismos autores (7) efectúan estudios de disponibilidad de la ocratoxina
A en el rumen de ovejas y llegan a la misma conclusión que anteriormente.
Todo esto se pone aún más de manifiesto por los autores (8) que
suministraron a ovejas durante 28 días alimentos con 70% de pienso concentrado
y 30% de heno contaminados con 2 y 5 ppm de ocratoxina A. Al cabo de 1,2,3 y
4 semanas de prueba fueron encontradas significativas concentraciones de ocratoxina
A en suero, heces y orina. Parece ser pues que los microorganismos del rumen
y del intestino no fueron capaces de degradar totalmente la micotoxina. Se destaca
nuevamente la influencia que tiene el tipo de alimento suministrado, en la hidrólisis
de esta micotoxina. Por otro lado, 2 y 5 ppm de ocratoxina A no provocaron problemas
de ingesta ni de digestibilidad de nutrientes y solo con 20 ppm de la micotoxina
se consiguió provocar estos problemas.
2,2.- Una dosis de 1 mg de ocratoxina A/Kg de peso vivo suministrada
a ovejas preñadas, provocó la muerte a las 12 y 24 horas de la
administración. En la necropsia se encontraron hígados friables
y pulmones congestionados y edematosos. Los fetos no tenían lesiones.
Las ovejas presentaban toda una serie de alteraciones histopatológicas
(9).
2.3.- En cabras fueron suministradas diferentes dosis diarias
de ocratoxina A correspondientes a 1,2 y 3 mg/Kg de peso vivo. Las que recibieron
la dosis más elevada murieron al sexto día de la administración.
Antes de la muerte se produjo una diarrea líquida que provocó
la deshidratación del animal. Las cabras que recibieron las dosis de
micotoxina más bajas durante 14 días permanecieron clínicamente
normales y sin lesiones visibles (9).
3.- VARIAS MICOTOXINAS.
3.1.- En ovejas, el fluido ruminal no tiene efecto en la metabolización
de la aflatoxina y de la vomitoxina, sin embargo la flora protozoaria, bacteriana
y el fluido ruminal sí tienen efecto en el metabolismo de la ocratoxina,
zearalenona, toxina T-2 y diacetoxiscirpenol transformándose estas en
otros metabolitos (10). Hay que considerar que el fluido del rumen es una primera
línea de defensa contra ciertas micotoxinas.
3.2.- TOXINA T-2.
3.2.1.- Ingestas de toxina T-2 en corderos del orden de
0,3 y 0,6 mg/Kg de peso vivo/día, provocaron significativos problemas
inmunológicos (11), poniendo de manifiesto la potente acción
inmunosupresiva de las toxinas tricotecenas.
4- MICOTOXINAS STACHYBOTRYS (VERRUCAROL, VERRUCARIN, RORIDIN, SATRATOXIN
F, G y H).
4.1.- En ovejas que ingirieron paja de cereales contaminada
con micotoxinas stachybotrys, se desarrollaron, entre otros, graves problemas
de enteritis hemorrágica, rinitis, ulceraciones gastrointestinales, diarreas,
congestión pulmonar y edemas, alteraciones histopatológicas, muertes
y sobre todo significativos problemas inmunosupresivos (12).
5.- RESIDUOS DE MICOTOXINAS EN EL ORGANISMO ANIMAL.
5.1.- En corderos que fueron intoxicados con una dieta contaminada
con un total de aflatoxinas de 2,5 ppm (mg/Kg) durante 21 días fueron
encontrados como concentraciones más significativas , unas 1,94 ppb (microgramos/Kg)
de aflatoxina B1 en hígado y 5,45 ppb de aflatoxina M1 en los riñones.
Fueron también detectadas aflatoxinas y sus metabolitos en orina y heces.
Estos residuos en orina y heces pueden ser útiles como biomarcadores
de intoxicación (13), aconsejamos consultar el trabajo completo de estos
autores.
6.- BIBLIOGRAFIA.
(1) Edrington,T.S., Harvey,R.B., and Kubena,L.F. (1994) Effect of aflatoxin
in growing lambs fed ruminally degradable or scape protein sources. J.Anim.Sci.,
72(5) : 1274-1281.
(2) Fernández,A., Ramos,J.J., Sáez,T., Sanz,M.C., and Verde,M.T.
(1995) Changes in the coagulation profile of lambs intoxicated with aflatoxin
in their feed. Vet.Res., 26(3):180-184.
(3) Fernández,A., Ramos,J.J., Sanz.M., Sáez,T., and Ferrnandez
de Luco,D. (1996) J.Appl.Toxicol., 16(1): 85-91.
(4) Fernández,A., Hernandez,M., Sanz,M.C., Verde,M.T., and Ramos,J.J.
(1997) Serological serum protein fraction and responses to Brucella melitensis
in lambs fed aflatoxins. Vet.Hum.Toxicol., 39(3): 137-140.
(5) Fernández,A., Hernandez,M., Verde,M.T., and Sanz,M. (2000) Effect
of aflatoxin on performance, hematology, and clinical immunology in lambs. Can.
J.Vet.Res., 64(1): 53-58.
(6) Xiao,H., Marquardt, R.R., Frohlich,A.A., Phillips,G.D and Vitti,T.G. (1991)
Effect of a hay and a grain diet on the rate of hydrolisis of ochratoxin A in
the rumen of sheep. J.Anim.Sci., 69(9) : 3706-3714.
(7) Xiao,H., Marquardt, R.R., Frohlich,A.A., Phillips,G.D and Vitti,T.G. (1991)
Effect of a hay and a grain diet on the bioavailability of ochratoxin A in the
rumen of sheep. J.Anim.Sci., 69(9) : 3715-3723.
(8) Hohler,D., Sudekum,K.H., Wolffram,S., Frohlich,A.A., and Marquardt,R.R.
(1999) Metabolism and excretion of ochratoxin A fed to sheep. J.Anim.Sci. 77(5)
: 1217-1223.
(9) Carlton,W.W., and Krogh,P. (1979) “Ochratoxins” in Conference
on Mycotoxins in Animal Feeds and Grains Related to Animal Health. W.Shimoda
(Ed.). PB-300 300. Sponsored by Bureu of Veterinary Medicine. Food and Drug
Administration. Rockville,MD, June 8, report FDA/BVM-79/139, pp.165-287.
(10) Kiessling,K.H., Pettersson,H., Sandholm,K., and Olsen,M. (1984) Metabolism
of aflatoxin, ochratoxin, zearalenone, and three trichotecenes by intact rumen
fluid, rumen protozoa and rumen bacteria. Appl.Environ. Microbiol., 47(5) :
1070-1073.
(11) Friend,SC., Hancock,D.S., Schiefer,H.B., and Babiuk,L.A. (1983) Experimental
T-2 toxicosis in sheep. Can.J.Comp.Med. 47(3): 291-297.
(12) Mirocha,C.J.(980) “Rubratoxin, Sterigmatocystin, and Stachybotrys
Mycotoxins” in Conference on Mycotoxins in Animal Feeds and Grain Related
to Animal Health, W.Shimoda (Ed.), PB 80?221773. Food and Drug Administration,
Rockville,MD, June 13, report FDA/BVM?80/132, pp.209-232..
(13) Fernández,A., Bélio,R., Ramos,J.J., Sanz,M., and Sáez.T.
(1997) Aflatoxins and their Metabolites in the tissues, faeces and urine from
lambs feeding on an aflatoxin-contaminated diet. J.Sci.Food Agric., 74, 161-168.
- Año de publicación, 2004 -
Autor: Alberto Gimeno - Consultor técnico de SPECIAL NUTRIENTS, NC, 1394 Coral Way, Miami, Florida, 33145 USA.
ivan petatan Ingeniero Agronomo Especialista En Zootecnia Mexico - México
Es muy interesante conocer acerca de este tema. Yo trabajo mi tesis buscando un control biológico que ayude a disminuir problemas de este tipo en el campo de la zootecnia, y me gustaría saber si tiene alguna información de las micotoxinas que se producen por stenocarpella maydis (=diplodia maydis).
Respuesta Chequeada por Engormix.com
25/07/2006
ALBERTO GIMENO Consultor Técnico En Nutrición Animal Y Micotoxicología Lisboa - Portugal
Alberto Gimeno - Tel: + 351-21-7607473 - Fax: + 351-21-7607473
Apreciado Ing. Ivan, no tengo información al respecto. Sin embargo, si va a www.google.com, y en la búsqueda escribe micotoxinas producidas por stenocarpella maydis, encontrará bastante información al respecto.
Un saludo.
Gimeno
Respuesta Chequeada por Engormix.com
26/07/2006
ivan petatan Ingeniero Agronomo Especialista En Zootecnia Mexico - México
Ok, antes que nada le agradezco su respuesta. Sin embargo, algunos de los artículos que encontré en internet no logro conseguirlos, y algunos otros ya los tengo. Es por esto que creí conveniente buscar información con personas que ya hayan trabajado con el tema de micotoxinas, y pues google no me sirvió. Gracias, y seguiré intentando.
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