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Autor: Hernández, E; Borrell, J; Díaz Romero, J. L.; Gimeno, G. Biovet S.A.
Fecha de Publicación: 04/10/2002
INTRODUCCIÓN
Actinobacillus suis fue descrito por primera vez por Zimmermann (1964) como germen
productor de septicemia en el ganado porcino. Más tarde, Fontaine (1987)
identifica al Actinobacillus suis como responsable de procesos septicémicos,
infecciones articulares, renales y cardíacas.
Miniats (1988) y Sandford (1990) aislan con cierta frecuencia, entre 1985-1989
Actinobacillus suis en procesos patológicos que presentan lesiones epiteliales
similares a la erisipela.
En 1997 se le reconoce (SAC Veterinary services) como causante de septicemia en
lechones de una semana de vida, así como de lesiones en la piel y hemorragias
internas.
La descripción más aproximada de la etiología producida por
Actinobacillus suis la realizaron Smith, Thompson y Done (1993) bajo la denominación
Síndrome Dermatitis-Nefropatía Porcina.
Respecto a las características del cultivo, Phillips, J.E (1975) indica
que el cultivo y conservación de Actinobacillus suis es difícil
por la escasa viabilidad de las cepas y porque los cultivos líquidos mueren
en quince días a 4ºC.
El presente estudio es una aportación al conocimiento de la situación
serológica frente a Actinobacillus suis de la población porcina
estudiada en España y en Perú en diferentes periodos de tiempo.
MATERIAL Y MÉTODOS
Características morfológicas y bioquímicas de Actinobacillus
suis:
Actinobacillus suis es una bacteria ovoide, ocasionalmente filamentosa, sus
colonias son mucoides y producen hemólisis completa. Los cultivos en
caldo son turbios y viscosos hasta las 18 horas y después producen precipitado,
clarificándose el medio.
Produce ácido pero no gas en presencia de glucosa y lactosa. No fermenta
el manitol, rannosa, sacarosa y arabinosa. Produce ácido sulfúrico
y nitritos.
Preparación del antígeno:
El antígeno se ha preparado siguiendo la técnica descrita por
Mittal, K.R (1987) para Haemophilus pleuroneumoniae pero utilizando como medio
de cultivo agar infusión cerebro-corazón. La técnica de
aglutinación en tubo es la misma descrita por Mittal, K.R (1987) para
Haemophilus pleuroneumoniae pero limitando la dilución del suero problema
al intervalo 1:5 hasta 1:160.
En el estudio realizado en España, los sueros a estudiar corresponden
a sangre de porcino reproductor de cebo, en cambio en el de Perú, los
sueros a ensayar corresponden a cerdos de edad aproximada de 5 meses habiendo
en los lotes cerdos híbridos de sexo hembra, machos castrados y algunos
machos enteros de acuerdo con el plan vacunal de la granja.
RESULTADOS
Los resultados se muestran en la siguiente tabla:
|
Datos generales |
De las muestras |
Resultados de aglutinación
|
|
País |
Periodo
|
Nº de muestras estudiadas |
Nº muestras negativas |
Nº muestras sospechosas(1/80)
|
Nº muestras positivas(1/160) |
|
negativas |
(1/40) |
|
España |
1988-1994 |
900 |
44.2% |
38.3% |
8.4% |
9.1% |
|
Perú |
2003 |
474 |
40.71% |
16.45% |
13% |
30% |
Tabla de resultados serológicos.
Interpretación de los resultados:
Se consideran animales sanos las muestras que han dado negativas y los animales
que han sido vacunados o han tenido contacto inicial con la enfermedad pero no
han desarrollado la enfermedad, es decir, con serotipo 1/40. Se consideran animales
sospechosos los seroptipo 1/80 que corresponden a animales que han desarrollado
enfermedad y por último los animales positivos con serotipo 1/160 corresponden
a animales enfermos con lesiones observables.
Los resultados indican que no existen grande diferencias en el porcentaje de animales
negativos entre los dos países. En cambio si que se han encontrado diferencias
en relación los serotipos 1/40, 1/80 y principalmente en el seroptipo 1/160.
En este caso el porcentaje de animales enfermos con lesiones observables es 3
veces más elevado en Perú que en España.
Específicamente en Perú los porcentajes más elevados se distribuyen
entre los animales negativos y los que presentan la enfermedad en cambio en España
los porcentajes más elevados se distribuyen entre los animales negativos
y los que han tenido contacto o han sido vacunados.
CONCLUSIONES
Debido a las importantes pérdidas económicas originadas por la presencia
de Actinobacillus suis se hace necesario la realización de estudios que
determinen el grado de presencia de dicho germen en cada país.
Asimismo el conocimiento de estos datos será fundamental para poder informar
a los porcinocultores y definir la mejor manera de combatirla así como
la toma de decisiones más adecuadas.
BIBLIOGRAFÍA
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inmunológica. Anales curso 1994-1995 Real Academia de las Ciencias Veterinarias.
Madrid, noviembre 1994.
DÍAZ ROMERO, J.L (2003). Tesis Doctoral. Perú
MC INNES, J.I (1986). Restriction Enedonucleasa fingerprinting of porcine Haemophylus
and Actinobacilus spp. Proceeding 9th. Congress I.P.V.S. Barcelona p. 251.
MINIATS, O.P (1988). Actinobacillus suis septicaemia in an SPF-swine herb.
A case report. Procceding 10th . Congress I.P.V.S. Río de Janeiro.
MINIATS, O.P (1989). Actinobacillus suis septicaemia in nature swine, two outbreakers
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MITTAL, K.R (1987). An evaluation of agglutination and coagulation techniques
for serotyping of H. pleuropneumoniae. Am. J. Vet. Res. 48 (2) 219-222.
ODIN, M (1993). Actinobacillus suis in swine Southwestern Quebec. Candian Veterinary
Journal 34, (10), 634.
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SANFORD, S.E (1990). Actinobacillus suis infection in pigs in Southwestern
Ontario. Canadian Veterinary Journal 31 (6) 443-447.
ZIMMERMANN, T (1964). Untersuchungen uber die Actinobazillose des Scahweines.
Deut Tieraertl Wochenschr, (71) 457-461.
Autor: Hernández, E; Borrell, J; Díaz Romero, J. L.; Gimeno, G. Biovet S.A.
Fecha de Publicación: 04/10/2002
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