Evaluación de la calidad en pollita ligera al día de edad

La recepción de pollita en crianza es una de las etapas cruciales en el arranque de la producción, por tal motivo es importante adoptar sistemas de medición que nos den un panorama de la calidad presente en la pollita, como parte de un programa de mejoramiento continuo. Para realizar dichas mediciones existen varios métodos disponibles estandarizados, uno de ellos es la técnica del Dr. Héctor Cervantes, el cual diseño una fórmula para medir la calidad del pollito(a) que fuera comparable y repetible en diferentes empresas, la cual tomó en cuenta tres puntos principales: Estado Físico, Condición Microbiológica y la condición serológica. Dicha técnica arroja una calificación física y bacteriológica las cuales son promediadas para dar una calificación final, donde 70 es considerada una calificación pobre hasta un rango de 100 como excelente.

 

Evaluar múltiples lotes de pollita de forma aleatoria haciendo uso de la técnica de Cervantes con el fin de medir el estado físico, microbiológico y serológicos de dichos lotes.

 

 

Las aves fueron evaluadas bajo la siguiente escala (Cervantes et al., 1994).

 

Haciendo referencia a lo publicado por el Dr. Cervantes es importante implementar la evaluación de la pollita, tomando en cuenta todos los aspectos involucrados como lo físico, bacteriológico y serológico. De tal manera que el sistema sea implementado como parte de control de calidad y mejora continua, por medio de un seguimiento programado y repetitivo de los lotes recibidos en las crianzas. La técnica está diseñada para detectar importantes puntos de oportunidad que pueden ser controlados por medio del manejo, tanto en la vacunación como nutrición de las reproductoras, manejo de procedimientos en las incubadoras como control de temperatura y humedad, así como, un manejo minucioso de las aves en campo en los primeros 14 días de vida.

Uno de los problemas más comunes reportados en la evaluación física fue el mal cierre de ombligo, de acuerdo con el Dr. Ruíz, los problemas de ombligo mal cicatrizados se producen a nivel de incubación cuando sobre pasamos los 99.5°F o 37°C, esto se presenta entre el día 20-21 de desarrollo, las altas temperaturas aceleran el cierre del ombligo, dejando afuera un remanente del mismo observándose un botón negro, facilitando la entrada de agentes bacterianos al nacimiento. Estos problemas se atendieron homologando la temperatura en la incubadora eliminando los puntos calientes, observándose un control adecuado del problema en el grupo B.

Otro de los problemas con porcentaje alto en la evaluación fue la presencia de tarsos rojos, esto se presenta más en reproductoras jóvenes entre las 25 a 30 semanas de edad, cuando el enrojecimiento es moderado puede desaparecer entre el primer y tercer día de edad, sin embargo cuando existe erosión hemorrágica en el tarso el ave se postra y tiene problemas para caminar. El principal problema que causa el enrojecimiento es la perdida de humedad del huevo entre un 12 al 14%, produciendo gran cantidad de albumina presente al momento que el pollito termina la respiración alantoidea y comienza la respiración pulmonar entre los 18-18.5 días de incubación, cuando el pollito se posiciona para perforar la cámara de aire, encuentra gran cantidad de albumina, esto hace que la pollita se desespere y comienza a apoyarse en los tarsos así como el musculo de la eclosión para salir del cascarón.

 

Los resultados a las avaluaciones muestran como principal problema físico la presencia de mal cierre de ombligo, tarsos rojos y deshidratación. Aunado a un problema de contaminación bacteriana, sin embargo el uso de sistemas de medición como la técnica de Cervantes puede ser de gran utilidad para detectar y controlar dichos puntos de oportunidad encontrados en las reproductoras, incubadoras y crianzas.

Cuando las aves eclosionan en condiciones normales la abertura del cascarón es pareja y homogénea, una de las señales que indican perdida de humedad es cuando observamos la apertura del el cascarón en zig- zag. Este problema se fue solucionado estabilizando la temperatura del bulbo húmedo a 83°F en la incubadora. Otro de los parámetros que se atendió fue la deshidratación el cual es un problema causado por dejar demasiado tiempo la pollita en la nacedora o al mezclar claves de reproductoras jóvenes con claves de reproductoras viejas, ya que las jóvenes nacen dentro de las 486 horas y otras nacen entre las 504 horas considerado lo normal. Esto se atendió evitando la mezcla de claves a lo medida de lo posible, haciendo un buen proceso de ventana de nacimiento homologando los nacimientos y acortando el tiempo de estancia a 6 horas. 

La presencia de cloaca empastada es causada por altas temperaturas desde nacedora, salas de espera y transporte, reflejándose como un tapón de heces en la cloaca. Dicho padecimiento se controló al hacer mediciones de temperaturas internas de la pollita manteniéndolas a 101-104°F o 39.41°C. También formo parte importante del control la limpieza y desinfección de las instalaciones en incubadora y granja haciendo uso de desinfectantes compuestos de última generación conformados con glutaraldehído, cuaternarios de amonio, isopropanol y agentes adherentes.

De acuerdo con la literatura citada los promedios serológicos muestran una adecuada inmunidad materna conferida a la progenie de los agentes evaluados. Sin embargo existe la presencia de Mg y Ms lo cual implica un manejo en el control del mismo.

 

• Cervantes, H.M., 1993. A New Formula for Chick Quality. Proc. Southeastern Poultry and Egg Association Hatchery- Breeder Flock Management Clinic, July 20-21, Atlanta Hilton Hotel, Atlanta, Georgia.
• Cervantes, H.M., 1993. A New Formula for Chick Quality. Broiler Industry, September: 20-27.
• Cervantes, H.M., 1994. Nueva Fórmula Para Definir la Calidad del Pollito. Industria Avícola, Mayo: 10-16.
• Cervantes, H.M., 1994. Quantifying Chick Quality. Zootecnica International, July: 20-31.
• Tona, K., F. Bamelis, B. De Ketaleare, V. Bruggeman, V,M.B. Moraes, J. Buyse, O. Onagbesan, y E. Decuypere, 2003. Effects of egg storage time on spread of hatch, chick quality and chick juvenile growth. Poult. Sci., 82: 736-741.
• Ruíz P. 2015. Experiencias profesionales en incubación. Asesor Técnico.