ARTÍCULOS TÉCNICOS - PORCICULTURA
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MICROORGANISMO
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PROBABLE EDAD DE DESTETE
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| Actinobacillus
pleuropneumoniae Biovariedad 1, NAD dependiente |
a) A 10 días o menores:
si el hato tiene baja o variable inmunidad: eliminado en todos los casos
hasta en un 90%. b) A 16 días: oportunidad de eliminación del 50%. c) De 18 a 20 días: oportunidad de eliminación del 5%. Será necesario tener una inmunidad de hato alta. |
| Mycoplasma hyopneumoniae | A 17 días |
| Haemophilus parasuis | A < 7 días |
| Pasteurella multocida | A < 7 días |
| Actinobacillus suis | A < 2 días |
| Streptococcus suis | Solo con cesarea |
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Microorganismo
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Edad inicial De detección
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Duracion de la Inmunidad
materna calostral (si/no: la inmunidad es protectiva)
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Edad cuando los signos
clínicos son observados
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Incu bación
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Reser- vorios
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Forma de transmisión
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| Actinobacillus pleuro pneumoniae Biovariedad 1, NAD dependiente |
<11 días | Con ELISA: 28 a 30 días Con neutralización de hemolisina/ F.C.: 20 a 21 días Con aglutinación: 20 a 26 días. (Si: probablemente no contra todos los serotipos) |
Todas las edades en general: crecimiento/ finalización | Hs. variable | Moscas Pajaros Roedores |
Aerosoles Contacto directo |
| Mycoplasma hyo pneumoniae | 14 días | 4 semanas (2 semanas) | 6 semanas o mas. Gral. 3 a 6 meses de edad |
10 a 16 días | Contacto directo Aerosoles |
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| Haemophilus parasuis | 7 días | 2 a 4 semanas (si) | 2 semanas a 4 meses | Contacto directo Aerosoles
Heces fecales |
||
| Pasteurella multocida | 20 días 21 días 7 a 10 |
(Probable mente) | Variable: dependiendo de la afección | Va riable | Conejos, perros, gatos, bovinos, aves, pavos, cabras, ovejas | Contacto directo Aerosoles |
| Actino bacillussuis | 2 días | ???????? | Todas las edades. Gral. Lactancia y recien destetados | Días | ??????? | Cerdos portadores |
| Sterpto coccus suis | Día 0 | (no) | Lactancia a finalización Gral: recien destetados | Hs. | Roedores moscas | Contacto directo Durante el nacimiento |
Modificado Amass, 1998.
Las pruebas serológicas y microbiológicas por lo tanto deben de poseer una buena
sensibilidad y especificidad, ya que en las granjas no se observa ningún problema
que pueda hacer pensar que la PCP o la neumonía enzootica, o la pasteurelosis
pulmonar o enfermedad de Glasser estan presentes. La serología por ejemplo debería
de utilizarse por lo tanto, entre otras, en las siguientes situaciones:
1. Confirmación de una infección crónica, previa evaluación de las lesiones pulmonares típicas.
2. Estudio de la cinética de anticuerpos en una granja infectada, para establecer programas de vacunación y/o medicación por vía oral (alimento/agua).
3. Identificación de maternidades infectadas en el caso de la compra de lechones para sistemas de tipo todo dentro, todo afuera. Este punto es importante, para la decisión de muestrear madres, se debe tener en cuenta que hay baja prevalencia, con títulos de anticuerpos bajos y por lo tanto se dificulta la interpretación (aquí la PCP deberá tratarse como una enfermedad de tipo individual, y muestrear a todas las marranas). En el caso de los lechones se deberan de muestrear antes y después del destete a partir de las 8 semanas de edad (dependiendo del sistema de SEW o MEW o convencional).
4. Verificación de la respuesta de anticuerpos frente a una vacunación (se debera de tomar en cuenta que tipo de inmunógeno se esta aplicando para interpretar los resultados serológicos con los diversos antígenos).
5. Estudios serológicos tendientes a un programa de erradicación (Gottschalk, 1998)
XI.
SELECCIÓN DE LA MEJOR PRUEBA DIAGNOSTICA
Existen numerosos criterios que determinan cual es la mejor prueba de diagnóstico
para una situación dada e incluyen: COSTO, SENSIBILIDAD, ESPECIFICIDAD, RAPIDEZ
y DISPONIBILIDAD. Todos esos criterios pueden ser correlacionados a la situación
específica. (Zeman, 1997).
Los laboratorios dedicados al servicio de la industria porcina, que cuentan
con una buena infraestructura diagnóstica, como son los laboratorios de diagnostico
de los Estados Unidos (Zeman, 1997) y probablemente algunos de Salud Animal
de México (Valdivia et al, 1997) están enfocados básicamente entre otros, a
estos objetivos:
a) A identificar la causa precisa del brote agudo de la enfermedad (desde el
diagnóstico de la enfermedad hasta la elaboración de seroperfiles), lo cual
permite precisar los métodos de control, para ser rápidamente implementados;
permite colectar datos de la enfermedad, para establecer las estrategias de
los cambios de manejo, que permitirán prevenir el mismo problema, en el siguiente
ciclo de producción
b) A Identificar y eliminar a los animales expuestos conocidos (aplicando la
serología ampliamente) para erradicar ciertas enfermedades reguladas por el
Gobierno Federal (como es el caso de la Brucelosis)
Las reglas de oro para el Dr. Zeman (1997) y que muchos patólogos y microbiólogos
compartimos para el diagnóstico de una enfermedad clínica es:
1º. Identificar las lesiones patológicas que expliquen la aparición de los signos
clínicos.
2º. Identificar los patógenos o factores (traumas, toxinas, medio ambiente entre
otros) que son conocidos y que están produciendo estas lesiones.
La identificación en ambos casos es crítica, ya que actúan en forma sinérgica
para producir un diagnóstico definitivo. La investigación de las enfermedades
infecciosas, con solo la observación de las lesiones sin el soporte microbiológico,
restringe considerablemente las posibilidades del diagnóstico, así un diagnóstico
definitivo por solo las lesiones no puede ser posible.
EJEMPLO: Meningitis purulenta en cerdos de 2 semanas de edad: Meningitis bacteriana.
Para el diagnóstico definitivo es necesario realizar cultivos para identificar
a: Streptococcus suis, Haemophilus parasuis, Escherichia coli y otros patógenos.
Si fuera al contrario, la identificación de estos agentes (aún aplicando las
técnicas de PCR) y que no correspondieran a las lesiones patológicas encontradas,
es solo la identificación de potenciales patógenos que son ubicuos en la piara
y en las instalaciones (Zeman, 1997).
Si la razón de la prueba de diagnóstico es algo (herramienta diagnóstica) para
el diagnóstico clínico, muchas veces es muy importante clarificar la meta precisa
de la prueba. Si se desea determinar el ambiente limpio de una enfermedad dada,
varios factores deben ser considerados en la prueba diagnóstica, como serían:
SENSIBILIDAD, ESPECIFICIDAD, NIVEL DE PREVALENCIA ESPERADA y NIVEL DE CONFIANZA
SATISFACTORIA.
a) Sensibilidad: Es la habilidad de una prueba para detectar a TODOS los verdaderos
positivos.
b) Especificidad: Es la habilidad de una prueba para detectar SOLO a los verdaderos
positivos.
Si la prueba es 100% sensible no presentaría falsos negativos (no falla para
detectar a los verdaderos positivos); si la prueba es 100% específica no presentaría
falsos positivos (no falla para detectar a los verdaderos negativos). Sin embargo,
la sensibilidad y la especificidad van de la mano, es decir cuando se afecta
uno también el otro. El efecto esperado es cuando aumenta la sensibilidad, puede
disminuir la especificidad o bien cuando aumenta la especificidad, puede disminuir
la sensibilidad. Si fuera 100% sensible y 100% específica se estaría frente
a una prueba perfecta. Desafortunadamente existen pocas pruebas perfectas en
el mundo, y se tiene que determinar un cierto nivel de aceptabilidad, como ocurre
con el PCR.
El nivel de aceptabilidad esta relacionado a la pregunta especifica que se intenta
responder. Si la decisión a tomar es la erradicación de una enfermedad dada,
la Normas Oficiales indican que la prueba debe de tener una alta sensibilidad,
para identificar a los infectados en forma individual. La prueba mas sensible
sería preferida, si la especificidad estuviera insignificantemente comprometida,
ya que durante la erradicación un falso positivo raro (verdaderamente negativo)
sería mejor para el proceso del mismo, que un falso negativo raro (verdaderamente
positivo), ya que estos animales falsos negativos estarían diseminando la enfermedad
en la demás población, y afectaría seriamente el proceso de erradicación (Zeman,
1997).
En general, la SENSIBILIDAD de una prueba es de suma importancia, cuando los
animales probados y resultaron positivos fueron los que produjeron la enfermedad
en la piara sana y limpia, y fueron los que causaron el brote. Así. la ESPECIFICIDAD
se convierte de suma importancia, cuando hay interés que un falso positivo no
ponga fin a la utilidad de un animal valioso (Zeman, 1997).
El costo de las pruebas de laboratorio en medicina veterinaria (sobretodo en
la producción animal: cerdos) es siempre un problema, en algunas ocasiones el
costo de $10.00 dólares por prueba, puede ser útil, sin embargo, el costo de
$25.00 dólares por prueba, afectaría seriamente la economía de la producción
animal. En otras ocasiones el costo de $50.00 dólares por prueba, puede ser
de gran utilidad por la prevención de pérdidas económicas.
Ahí es donde se tiene que tener muy claro, que pregunta específica se quiere
contestar con la prueba a utilizar y que a la vez sea económica. La popularidad
de la prueba afecta también el precio, una demanda de la prueba hace que el
laboratorio, se equipe y adquiera los reactivos necesarios para llevarla a cabo
y la hace menos cara. De ahí, que los laboratorios estén considerando el costo
de las nuevas pruebas y las estén comparando con el costo de las viejas pruebas,
y a la vez estén analizando las ventajas y desventajas de las mismas (Valdivia
et al., 1997; Zeman, 1997).
XII. TECNICAS DE BIOLOGIA MOLECULAR APLICADAS
AL DIAGNOSTICO MICROBIOLOGICO DE LAS ENFERMEDADES RESPIRATORIAS
La reacción en cadena de la polimerasa (PCR) es una técnica usada para amplificar
regiones específicas del ADN. Los principios de esta técnica fueron descritos
primeramente en 1971 pero no fue hasta los años 80s que la tecnica fue adaptada
y desarrollada completamente. En aquella época esta técnica constituyó una señal
muy importante de avance en la biología molecular ya que permitió la gran producción
de segmentos específicos del ADN. Esta técnica se basa en el hecho de que ciertas
secuencias de una región dada de la molécula del ADN son conocidas (Gingold,
1990).
Por lo tanto PCR se utiliza para amplificar la región entre dos secuencias conocidas.
El producto amplificado se puede detectar por diferentes métodos, variando en
sensibilidad, exactitud y viabilidad para el diagnostico de laboratorio, como
son: el corrimiento en gel de agarosa, Southern Blot, microtítulo en microplacas
y la detección directa de tiempo real de los productos en el tubo de PCR visualizado
por fluorescencia (Mathew, 1990. Higushi et al., 1993).
La técnica de PCR se puede utilizar para identificar microorganismos causantes
de enfermedad y de suma importancia en medicina en donde es necesario un diagnostico
rápido. Hoy en dia el PCR no se puede considerar como substituto de la bacteriología
clásica. PCR es de inferior sensibilidad a los métodos clásicos cuando las bacterias
tienen crecimiento rápido, no obstante tiene muchas ventajas al detectar microorganismos
de crecimiento lento o cuando la detección se lleva a cabo en muestras contaminadas.
Una de las ventajas más evidentes de la técnica de PCR es la rapidez de los
resultados y de que se pueden trabajar muchas muestras. Con la bacteriología
tradicional se necesita un mínimo de 2 días para alcanzar una diagnostico rápido.
Pero en el caso del PCR, solamente algunas horas son necesarias. Por lo tanto
las bacterias de lento crecimiento, o bacterias no cultivables, virus, así como
hongos, son los mejores candidatos para ser detectados por PCR (Calsamiglia.
1999; Calsamiglia et al., 1999).
Como ventajas del PCR es la variedad de aplicaciones, y tradicionalmente se
ha utilizado como una herramienta de díagnóstico para detectar ciertos microorganismos
especificos en muestras clínicas. El PCR también puede utilizarse para realizar
estudios epidemiológicos y llevar a cabo una vigilancia epidemiologica en las
granjas animales. Otra importante aportacion del PCR es que permite la deteccion
de los animales que son portadores de cierta enfermedad (Calsamiglia, 1999;
Mendoza et al., 1999) .
Como desventajas del PCR. La detección de falsos negativos: Si los iniciadores
no son específicos, si la concentración de los componentes no estan estandarizados
y las condiciones de la reacción no estan claras podrían obtenerse resultados
falsos negativos. Con respecto a los resultados falsos positivos: Si los iniciadores
son homólogos a las secuencias pero no al gen blanco o si los productos y soluciones
estan contaminadas con reacciones anteriores, entonces se podrian presentarse
falsos positivos (Calsamiglia, 1999). Por lo que el PCR detecta ADN pero no
la distingue entre los microorganismos vivos y muertos, ni tampoco detecta sensibilidad
a antibióticos.
Muchas técnicas basadas en PCR han sido descritas y se han aplicado en la medicina
veterinaría. El diagnostico rutinario para algunos laboratorios de enfocan a
los siguientes microorganismos. Pasteurella multocida se detecta toxina positiva
DNT (+); Mycoplasma hyopneumoniae (nested-PCR); Streptococcus suis y Haemophilus
parasuis (rep-PCR) y PRRSv (Taqman). Éstos son los agentes principalmente implicados
en el Complejo de la Enfermedad Respiratoria de los Porcinos (PRDC). Este síndrome
es cada vez mas importante la causa de una baja productividad de los cerdos,
caracterizado por un crecimiento lento, la baja eficacia alimenticia, anorexia,
tos y el disnea, donde están implicados los microorganismos antes de mencionados
(Calsamiglia, 1999; Calsamiglia et al., 1999; Dee, 1996; Lichtensteiger et al.,
1996).
Dentro de este complejo PRDC se encuentra mas frecuentemente diagnosticado al
Mycoplasma hyopneumoniae (Dee, 1996). El estudio de la neumonía causada por
Mycoplasma hyopneumoniae ha sido obstaculizada por métodos inadecuados de diagnóstico.
Muchas de las pruebas actualmente disponibles son relativamente insensibles
o no específicas, demasiado costosas o difícil para realizar un diagnóstico
rutinario. El nested-PCR ha permitido un diagnóstico rápido y actualmente en
la Universidad de Minnesota se lleva como diagnóstico de rutina. La extracción
del DNA se lleva a cabo de los hisopos nasales que llegan de la muestra de los
cerdos (Calsamiglia et al., 1999).
Por otro lado las cepas de Pasteurella multocida toxigénicas y no toxigenicas
no pueden ser detectadas por la morfología o por las reacciones bioquímicas
estándares. La viabilidad de usar PCR para la detección exacta y rápida de Pasteurella
multocida toxigénica de hisopos nasales fue investigada pero los resultados
no fueron concluyentes (Leinchtensteiger, et al., 1996). Sin embargo otro estudio
en la Universidad de Minnesota mostro que de cultivos purificados, se podian
detectar cepas de Pasteurella multocida DNT (+), esta técnica fue muy sensible
y puede ser comparada con ELISA y con el cultivo celular (Amigot, et.al., 1998).
La infección de los lechones con el virus del Sindrome Reproductivo y Respiratorio
Porcino (PRRSv) se asocia al aumento de las enfermedades respiratorias, con
tasa de crecimiento bajo, y elevada mortalidad. El PRRS esta siendo apararentemente
controlado con el uso de vacunas de vacunas vivas (MLV) o con manejo (Dee y
Philips, 1997). Es importante determinar cuando la infección ocurre en la vida
de los cerdos, por lo que que el PCR (Taqman) se ha utilizado como una prueba
de díagnóstico para detectar el ácido nucleico viral del PRRS. Esta técnica
se puede llevar a cabo en suero, semen, o tejido para detectar el RNA o la ADN
viral (Molitor, 1997). En este estudio los resultados de la prueba de PCR indicaron
que la serología no solamente puede ser adecuada para definir el status de PRRSv
en un hato . Este caso sugiere que las técnicas moleculares puedan ser útiles
conjuntamente con la serología. Observaciones de muestras clínicas, y el analisis
de los datos de la producción determinaron correctamente el status de PRRSv
en el hato y asi definir y establecer claramente el período en la vida del lechón
durante la cual son infectados. Una vez que se recoja y se evalúe esta información,
las estrategias óptimas de la intervención se pueden determinar para el hato
(Dee y Philips, 1997, Zimmerman, et.al., 1998).
En el caso de Streptococcus suis. y de Haemophilus parasuis la técnica de rep-PCR
ha mostrado resultados muy útiles para el estudio de la epidemiología en las
piaras. La técnica rep-PCR identifica cepas individuales, aún del mismo serotipo
(Torremorrell, 1999). Hemos demostrado que la mayoría de los brotes de la enfermedad
en granjas son debidos a una sola cepa. También esta técnica nos ha permitido
observar la transmisión de estas cepas entre granjas (Mendoza et al., 1999).
XIII. SISTEMA RÁPIDO PARA EL DIAGNOSTICO
SEROLOGICO DE App- Hps-Pm-Mh DENOMINADO NEUMOTESTMR . (Marca Registrada UNAM).
(Ciprián, et al. 1999)
1. METODOS DE DIAGNOSTICO DE LAS ENFERMEDADES RESPIRATORIAS BACTERIANAS EN MÉXICO.
El diagnóstico definitivo de las enfermedades respiratorias del cerdo, en las
que se incluyen; Pleuroneumonía Contagiosa Porcina, PCP; Neumonía Enzoótica,
NE; Pasteurelosis Pulmonar, PP y Enfermedad de Glasser, EG, deben ser oportunos
y rápidos y es esencial para identificar a Mycoplasma hyopneumoniae y a los
diferentes serotipos y tipos prevalentes de Actinobacillus pleuropneumoniae;
Pasteurella multocida y Haemophilus parasuis prevalentes en las zahúrdas y en
las granjas, así como en las diferentes zonas porcícolas del país, ya que permite
utilizar y/ó elaborar los biológicos/reactivos adecuados para el diagnóstico,
así como los biológicos para la inmunización de los animales susceptibles. En
México, así como en los países latinoamericanos, el diagnóstico de las enfermedades
respiratorias bacterinas lo llevan a cabo de la siguiente manera:
a) Observación de los signos clínicos en el cerdo y en los de la zahúrda, este
método no es confiable, ya que solo los signos clínicos que se presentan en
cursos agudos de las afecciones respiratorias, permiten identificar a la PCP,
quizás a la EG, mientras que en los casos crónicos de la misma PCP y EG, además
de la NE y PP pasan inadvertidos, y solo se reflejan en los parámetros de la
Ganancia Diaria de Peso (GDP) y Conversión Alimenticia (CA).
b) Observación de las lesiones a la necropsia de los animales muertos de los
casos agudos o durante la inspección de las canales, en los centros de abasto
de los casos crónicos. Para el estudio patológico se requiere de los servicios
de un Médico Veterinario especialista en Patología, y aunque algunas lesiones
son propias de la PCP se pueden confundir con EG, no así con NE y PP, sin embargo
no podemos identificar a los serotipos prevalentes en las zahúrdas de una misma
granja.
c) Aislamiento, identificación y tipificación de los microorganismos presentes
en los pulmones de los cerdos con problemas agudos o bien crónicos. Este proceso
tarda de 48 a 72 horas en el mejor de los casos, como seria con Actinobacillus
pleuropneumoniae y Pasteurella multocida; pero es lento en el caso de Haemophilus
parasuis, y mas lento para Mycoplasma hyopneumoniae. Para realizar estas técnicas
es necesario contar con un laboratorio bien establecido, en donde además de
contar con los reactivos, medios de cultivo y antisueros conocidos, se requiere
del personal calificado, y en México existen pocos laboratorios que brindan
este servicio.
d) El diagnóstico serológico se lleva a cabo en los cerdos vivos de las granjas
o en los cerdos en los centros de abasto. El método serológico es uno de los
mas adecuados, ya que se puede realizar en los animales vivos con y sin signos
clínicos, no requiere del sacrificio de los cerdos, es mas rápido y nos permite
hacer perfiles de la enfermedad, identificando el punto de infección en la granja,
además permite identificar los serotipos prevalentes. Para el diagnóstico serológico
de la PCP, NE, se encuentran algunas pruebas tales como; aglutinación, aglutinación
con partículas de latex, aglutinación lenta en tubo; aglutinación lenta en tubo
con 2-mercaptoetanol, hemoaglutinación indirecta, fijación de complemento y
ELISA entre otras. Pocas de estas pruebas se realizan en México, y las que se
utilizan son mas para estudios de investigación que para diagnóstico, debido
principalmente a la falta de infraestructura, equipo, y personal capacitado,
que solo los laboratorios de las Universidades e Institutos cuentan (Ciprián
et al., 1990).
La problemática acerca de la PCP, PP, NE y EG expuesta anteriormente motivo
a los autores (Ciprián et al., 1988; Colmenares et al., 1992; Mendoza et al.,
1992 y Torres et al., 1992) de este trabajo al desarrollo de un paquete tecnológico
diseñado para elaborar a nivel industrial KITS de diagnóstico serológico de
la PCP, PP, NE y EG; empleando tecnología sencilla y de bajo costo; paquete
tecnológico denominado NEUMOTESTmr App; -Pm; -Mh; -Hps (mr: marca registrada
por la UNAM), que permitirá conocer la situación de la granja con respecto a
la enfermedad, permitirá conocer mediante los perfiles serológicos los puntos
de infección o las ventanas inmunológicas y así poder establecer las medidas
de control necesarias.
2. RESUMEN DE LA INVENCION.
El paquete tecnológico NEUMOTESTmr App; -Pm; -Mh; -Hps (mr: marca registrada
por la UNAM), consiste en un método rápido que no requiere equipo de laboratorio,
se realiza en unos minutos y solo requiere de pocos mililitros de suero del
animal a estudiar, por lo que no se necesita de personal calificado. El método
rápido es un ensayo de diagnóstico serológico por medio de una prueba de aglutinación
directa en placa, que ofrece la única oportunidad de distinguir directamente
en la propia granja, si un cerdo ha sido infectado o si el cerdo está sano.
NEUMOTESTmr App; -Pm; -Mh; -Hps (mr: marca registrada por la UNAM), es una prueba
de aglutinación en placa destinada a identificar directamente anticuerpos (de
la clase IgG de alta afinidad) capsulares de Actinobacillus pleuropneumoniae
(serotipos 1 al 12); anticuerpos (clase IgG) LPS de Pasteurella multocida y
anticuerpos (clase IgG) capsulares de Haemophilus parasuis y anticuerpos IgG
contra Mycoplasma hyopneumoniae presentes en el suero de cerdos de cualquier
edad.
El paquete tecnológico consiste en un estuche portatil diseñado para diagnosticar
cerdos infectados con Pasteurella multocida (Pasteurelosis Pulmonar, PP); Mycoplasma
hyopneumoniae (Neumonía Enzoótica, NE); Actinobacillus pleuropneumoniae (Pleuroneumonía
Contagiosa Porcina, PCP) y Haemophilus parasuis (Enfermedad de Glasser, EG).
El sistema rápido de diagnóstico serológico se realiza mediante las pruebas
de aglutinación o de aglutinación en latex que permite hacerlo en la misma explotación
porcina y además de que distingue en los casos de Pasteurella multocida (Pasteurelosis
Pulmonar, PP); Actinobacillus pleuropneumoniae (Pleuroneumonía Contagiosa Porcina,
PCP) y Haemophilus parasuis (Enfermedad de Glasser, EG), si los cerdos están
infectados y en el caso de Mycoplasma hyopneumoniae (Neumonía Enzoótica, NE)
determinar los puntos de infección mediante el uso de perfiles serológicos.
El sistema de diagnótico serológico es un estuche que contiene los antígenos,
para realización de las pruebas serológicas; estos antígenos varían desde de
Pasteurella multocida (tipos capsulares A y D comunes); Actinobacillus pleuropneumoniae
(serotipos capsulares: 1, 2, 3, 4,5a, 5b, 6, 7, 8, 9, 10, 11 ó 12); Haemophilus
parasuis (serotipos capsulares: de alta virulencia ++: 1, 5, 10, 12, 13 y 14;
o bien serotipos de relativa virulencia +: 2, 4 y 15); hasta el de Mycoplasma
hyopneumoniae.
El método para diagnosticar la pasteurelosis pulmonar, la pleuroneumonia, la
enfermedad de Glasser o la neumonía enzoótica comprende los pasos de preparar
un reactivo de aglutinación o de aglutinación en latex; de estabilizar el reactivo
utilizado, a temperatura ambiente en un tiempo corto; de depositar enseguida
el suero de muestra en una de las celdas de la placa de prueba; incorporar el
reactivo de aglutinación o de aglutinación en latex a la muestra y mezclar enseguida,
enseguida se someten los resultados a un método comparativo de interpretación
cualitativa, en donde la muestra celda de cerdos infectados presenta un aspecto
grumoso, en tanto que la celda de cerdos sanos ó vacunados (siempre y cuando
no sean recién vacunados, es decir después de 15 días posvacunación), aparecerán
sin grumos.
Otro de los objetivos de la invención es proporcionar un equipo y método en
donde los reactivos utilizados permiten que el diagnóstico de las enfermedades
respiratorias bacterianas sea de fácil operación y eficiente por no presentar
falsos negativos, permitiendo el manejo de los animales sanos de la granja cuando
se utiliza como prueba tamiz de monitoreo. Otro mas de los objetivos de la invención
es que solo se requiere de una mínima parte del suero para efectuar el diagnóstico
y por lo mismo se pueda aplicar a una granja completa, lo que permite evaluar
el status inmune de la granja valorando e interpretando los seroperfiles.
XIV. AGRADECIMIENTOS
Los autores agradecen al MVZ David Trujillo por la asesoría técnica en informática.
XV. REFERENCIAS
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