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Principales puntos críticos en un centro de inseminación

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Dentro del proceso de producción de dosis seminales, en un centro de inseminación artificial porcina, son numerosos los puntos y factores en los que hemos de poner atención para lograr el éxito de la técnica y no comprometer la viabilidad de las dosis elaboradas.

Todos estos puntos podemos resumirlos en tres pilares fundamentales:

● Calidad del agua de laboratorio.

● Temperatura de trabajo y conservación de las dosis seminales.

● Bioseguridad, higiene y desinfección.

Agua de Laboratorio

La calidad del agua de laboratorio empleada constituye el primer punto a valorar.
Hemos de tener en cuenta que no cualquier tipo de agua es válido para permitir la supervivencia de las células espermáticas; pues estas necesitan unas condiciones específicas para su conservación óptima como son, por ejemplo, un pH entre 6.8 y 7.6, una osmolalidad de entre 280 y 330 miliosmoles/kg (aunque son capaces de resistir rangos mayores en el caso de la osmolalidad). Es por ello que se utiliza agua de laboratorio a la que se añade diluyente, para proporcionar a los espermatozoides el medio más adecuado a sus requerimientos fisiológicos; tanto fisico-químicos como nutricionales.

Nos encontramos de esta manera con que hay varios tipos de agua en función de su grado de destilación y pureza, todos susceptibles de ser utilizados en inseminación; a saber: TIPO I, TIPO II, y TIPO III.

De ellas el agua “ultrapura” es la TIPO I, pero apenas se emplea por ser de muy elevado coste su producción. Por eso las más utilizadas son las TIPO II y TIPO III.
Existen diversos sistemas de depuración de agua como la ósmosis inversa, destilación, desionización, etc. Según empleemos unos u otros, o combinaciones de ellos, obtendremos los distintos tipos de agua de laboratorio de mayor o menor pureza.

De todas formas, se emplee el tipo que se emplee, el agua de laboratorio debería cumplir unos mínimos recomendados en cuanto a sus propiedades y contenidos:

- Conductividad < 10 microsiemens/cm
- pH entre 5 y 8
- Dureza cálcica < 3 mg CaCo3 /l
- Presencia de bacterias < 50 ufc/ml

Un error bastante común a la hora de comprobar el grado de desionización de un agua de laboratorio es fijarse tan sólo en el pH. Esto, si bien es un método rápido y cómodo, no es fiable; pues a pesar de que es cierto que cuanto más pura sea un agua más se acercará su pH a la neutralidad (pH 7) hay que contar con que el agua capta CO2 del ambiente, lo que hace que su pH varíe mientras que se mantiene inmutable su carga iónica. Por ello hemos de medir la conductividad del agua para averiguar realmente su grado de desionización. Esto es, cuanto menor sea el valor obtenido para este parámetro menor será la capacidad del agua para conducir la electricidad, y por consiguiente menor la cantidad de iones en disolución; puesto que el agua pura no conduce la electricidad. Para hacernos una idea podemos comentar que la conductividad de un agua mineral común se encontraría en torno a los 300 µsiemens/cm.

Otro valor importante a considerar es el de la dureza cálcica, pues la presencia de Ca en el medio induce reacciones de capacitación en los espermatozoides; con lo que se acorta considerablemente el tiempo de vida útil de las dosis seminales, ya que los espermatozoides mueren poco tiempo después de capacitados.

Respecto a la carga bacteriana, obviamente esta ha de ser la menor posible para evitar posteriores problemas de contaminación en las dosis seminales.

En cuanto al origen del agua del laboratorio tenemos dos posibilidades, emplear agua destilada comercial envasada o producir nuestra propia agua de laboratorio.
En caso de optar por comprar el agua lo recomendable, ya que su calidad viene garantizada por el fabricante, sería adquirirla en envases pequeños, de no más de 5 litros, pues además de facilitar su manejo, esto nos asegura que se gasta cuanto antes evitando su contaminación una vez abierto el envase.

Si, por el contrario, decidimos producir nuestra propia agua a partir de agua corriente hemos de asegurarnos la máxima calidad posible del agua de partida (difícilmente conseguiremos agua de laboratorio de calidad si partimos de aguas fecales o excesivamente duras, por ejemplo). Lo ideal es utilizar agua potable de red tratada con cloro, lo que nos asegura una baja carga microbiana, a la que aplicaremos un adecuado proceso de purificación que elimine dicho cloro, pues es tóxico para el semen, y la mayor cantidad posible del resto de solutos. Fundamental en este punto es el mantenimiento en adecuadas condiciones de los equipos de ósmosis inversa, filtros, resinas, depósitos y cualesquiera elementos que intervengan en su producción para asegurar una óptima calidad del agua obtenida.

Es recomendable para verificar dicha calidad del agua resultante el realizar análisis periódicos de esta, tanto fisico-químicos como microbiológicos.



Temperatura

En el apartado concerniente a la temperatura hemos de señalar que hay dos momentos claramente diferenciados a los que corresponden respectivamente otros dos rangos de temperatura también distintos:

1- Recogida/procesado y envasado → 35-37ºC.
2- Conservación de las dosis seminales → 15-17ºC.

1- Todo el material que entre en contacto con el semen debe estar atemperado previamente a 35-37ºC para evitar problemas de aglutinación y disminución de la calidad seminal, por ejemplo durante la recogida, o errores de apreciación como pueden ser bajas motilidades aparentes por estar los portaobjetos demasiado fríos o calientes a la hora de la valoración, etc. Para ello es importante que todos los aparatos y sistemas se hallen en correcto estado de funcionamiento y calibración.

2- Por encima de 21ºC pueden producirse alteraciones de la membrana citoplasmática de los espermatozoides.
Por debajo de 14ºC aumenta mucho el riesgo de shock por frío de las células espermáticas. Hay que señalar que los espermatozoides porcinos son particularmente sensibles al frío en comparación con los de otras especies animales debido a la especial composición de su membrana en lo que a la proporción de fosfolípidos, ácidos grasos saturados e insaturados, y colesterol se refiere. Esta es una de las razones que explican la dificultad que se encuentra a la hora de llevar a cabo la criopreservación de espermatozoides de cerdo y las menores fertilidad y prolificidad obtenidas al inseminar con semen descongelado respecto al semen refrigerado.

Es así mismo muy importante verificar que la temperatura permanece constante durante la conservación, pues tan perjudiciales son las altas o bajas temperaturas como las fluctuaciones bruscas de esta para los espermatozoides. Los cambios operados en la fluidez de la membrana de forma reiterada dan como consecuencia un “desgaste” de la misma con la consiguiente disminución del periodo de vida útil de las dosis seminales. Para monitorizar dicha temperatura tenemos a nuestra disposición un amplio abanico de posibilidades como son la utilización de termómetros de máximas y mínimas; o, si se quiere mayor precisión, se pueden emplear elementos electrónicos de medición y registro (“datalogger”) o incluso el uso de cámaras de conservación con alarma incorporada que avisan cuando la temperatura interior supera determinado rango prefijado, bien sea por exceso o por defecto.




Bioseguridad, Higiene y Desinfección

El elaborar y mantener las dosis seminales con la menor carga bacteriana posible es otro de los aspectos fundamentales para producir y distribuir un semen de calidad.

Lo primero es proteger nuestro centro de inseminación de la entrada de potenciales patógenos; para lo cual hemos de observar una serie de medidas de bioseguridad. De todas formas, y dado que el objetivo de este artículo se centra en el trabajo dentro del propio centro, no profundizaremos demasiado en este campo, limitándonos a citar las normas básicas de bioseguridad que deberían seguirse en cualquier centro de inseminación para evitar la entrada de agentes infecciosos que pudieran tanto afectar a la salud de los verracos como ser transmitidos vía semen:

  Centro alejado de otras explotaciones u otros posibles focos de contagio
(carreteras, mataderos, etc).
  Vallado de todo el perímetro (impedir el acceso de personas o animales salvajes
y/o domésticos).
Vados y arcos de desinfección.
  Restricción y registro de visitas.
 Cuarentena obligatoria y alejada del centro para todos los nuevos animales.

Pero centrándonos en el propio centro de inseminación y la actividad diaria que en el se desarrolla podemos determinar que los principales puntos de riesgo que pueden actuar como focos de origen de contaminación bacteriana son:

■ Fecal.
■ Pelo, piel, prepucio del verraco.
■ Humanos, portadores de determinada flora cutánea.
■ Agua de boca; esta ha de estar tratada con cloro.
■ Agua destilada.
■ Vegetales (cama y/o comida).
■ Aire, sistemas de ventilación.
■ Patologías del verraco; orquitis, cistitis, uretritis, etc.
■ Materiales y maquinaria del laboratorio.

Así pues, una vez conocidos los posibles focos de contaminación, vamos a pasar a enumerar una serie de estrategias las cuales, incidiendo sobre dichos puntos, nos pueden ayudar a eliminar o reducir al máximo la presencia de bacterias en las dosis seminales:

  Utilizar material desechable.
  Cortar el pelo del prepucio frecuentemente.
Emplear la técnica del doble guante para llevar a cabo la extracción.
  Vaciar el divertículo prepucial antes de la extracción y limpiar la zona alrededor.
  NO RECOGER la fracción pre-espermática pues contiene gran cantidad de bacterias procedentes del tracto uretral.
  Durante la extracción mantener el pene del verraco horizontal y paralelo al suelo para evitar que por el escurran impurezas al vaso de recogida.
  Realizar la extracción de machos problemáticos al final para evitar contaminaciones cruzadas.
  Limpiar la sala de recogida tras cada jornada y la cuadra del verraco al menos una vez a la semana utilizando un producto desinfectante.
  Lavar el material reutilizable del laboratorio con un detergente neutro que no deje residuos, después aclararlo con agua destilada, y en caso de que el material lo permita, esterilizarlo por calor en la estufa (120ºC durante 2h. por ejemplo).
  Lavar el laboratorio diariamente (suelo y superficies) con detergentes que no dejen residuos.
  Hacer circular cada día solución jabonosa por los circuitos y gomas de máquinas y bombas peristálticas, aclarar con agua destilada y volver a hacer circular alcohol de 70º, aclarando con agua destilada antes de su nuevo uso.





Técnica del doble guante, con el de fuera se realiza la limpieza y con el de dentro la extracción; es importante mantener el pene del verraco paralelo al suelo.



Son fundamentales la limpieza del laboratorio y las máquinas como las líneas de envasado.


Especial relevancia, hasta el punto de convertirse en un punto rítico en si mismas, tienen las gomas y conductos de las máquinas como las líneas de envasado, bombas peristálticas en general y cualquier circuito por el que pase el semen o el diluyente. Esto obedece a que su luz interior constituye un lugar ideal para que las bacterias se acantonen, ya que se dan las condiciones idóneas de humedad y temperatura si estos sistemas no son correctamente desinfectados.

Se hace por tanto necesario resaltar la importancia que reviste la concienzuda limpieza y desinfección diaria de todo el material que entra en contacto con el semen y el diluyente, pues estos, dada su composición rica en nutrientes, se ofrecen como medios de cultivo idóneos para el desarrollo de microorganismos a pesar de la inclusión de antibióticos; a los cuales, por otra parte, cada vez es mayor el número de bacterias que presentan resistencias. No en vano, algunas de estas especies bacterianas aisladas e identificadas en cultivos de dosis seminales (es el caso por ejemplo de Serratia marcescens) son las mismas responsables de no pocos procesos nosocomiales en las unidades de cuidados intensivos de los hospitales; haciendo harto complicada la tarea de los médicos a la hora de hacerles frente dada su enorme capacidad para desarrollar resistencias, incluso a antibióticos de la más reciente aparición.

Conviene reseñar, por otra parte, que la inclusión de combinaciones antibióticas en la formulación de los diluyentes tiene como objetivo el inhibir la proliferación bacteriana para conservar el mayor tiempo posible la vida útil de las dosis seminales; no el eliminar su presencia de las mismas. Cuanto más potente y de mayor espectro sea esta combinación antibiótica, mejor desarrollará su función, pero ante la presencia de presiones de infección altas o aparición de cepas resistentes no queda más alternativa que potenciar las medidas de higiene y desinfección.



Gran presencia de bacilos en una dosis seminal                   Contaminación por cocos


Espermatozoide muerto con bacterias adheridas a su cabeza.

Bibliografía

-W. L. Flowers. Water Quality considerations for A.I. Dept of animal Science, North Carolina State University, Raleigh, NC.

-J. Gadea. Los diluyentes de inseminación artificial porcina. REVISIÓN. www.um.es/grupo-fisiovet

-K.E. Waterhouse, P. M. De Angelis, T. Haugan, H. Paulenz, P. O. Hofmo, W. Farstad. Effects of in vitro storage time and semen-extender on membrane quality of boar sperm assesed by flow cytometry. Teriogenology (2004) Dec;62(9):1638-51.

-Real Decreto 324/2000, de 3 de marzo, por el que establecen normas básicas de ordenación de explotaciones porcinas.

-J. Gadea. El uso de semen porcino congelado. Mundo Ganadero. 169: 60-62 (2004).

-T. Cremades, J. Roca, H. Rodríguez Martínez, T. Abaigar, J. M. Vázquez, E. A. Martínez. Kinematic changes during the cryopreservation of boar spermatozoa.
J Androl (2005) Sept-Oct; 26(5):610-8.

-G. C. Althouse, C. E. Kuster, S. G. Clark, R. M. Weisiger. Field investigations of bacterial contaminants and their effects on extended porcine semen. Theriogenology (2000) 1167-76.

-G. C. Althouse, K. G. Lu. Bacteriospermia in extended porcine semen. Treiogenology (2005) 573-584.

-Directiva 90/429/CEE del consejo, de 26 de junio de 1990, por la que se fijan las normas de policía sanitaria aplicables a los intercambios intracomunitarios y a las importaciones de esperma de animales de la especie porcina.

-G. Almond, P. Poolperm. Semen contamination and choosing antibiotics. Prooceedings of the North Carolina Healthy Hogs Seminar.

-Hume E BH, Willcox M, Aparición de Serratia marcescens como un patógeno de superficie ocular. Archivos Sociedad Española de Oftalmología, oct. 2004, vol.79, no.10, p.475-481. ISSN 0365-6691.

-Famiglietti A., Quinteros M., Vázquez M. et al. Consenso sobre las pruebas de sensibilidad a los antimicrobianos en Enterobacteriaceae. Revista Argentina de Microbiología, ene/mar 2005, vol.37, no.1,p.57-66. ISSN 0325-7541.

 
Autor/es
Aragon, España
INSEMINACION / MAGAPOR SL
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Rafael Arlegui
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Ejea de los Caballeros, Zaragoza, España
Director
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
28/03/2008 | Hola a todos, respecto al tema de la contaminación bacteriana del semen, quisiera tratar ciertos puntos que a mi modo de ver, y bajo mi experiencia, pueden ser útiles. Lo primero sería determinar si dicha contaminación afecta a la calidad y viabilidad de las dosis seminales producidas. Lo siguiente sería establecer si dicha contaminación afecta a uno, varios verracos o es un problema generalizado en todas las dosis seminales producidas. Todo esto nos orientará a la hora de determinar el posible foco de contaminación, pues si es un problema generalizado esto nos puede hacer pensar en que el origen puede estar en algún momento del procesado y elaboración de las dosis en el laboratorio. Otro punto interesante sería intentar identificar el agente bacteriano presente así podemos encontrarnos bacterias como Serratia, mencionada en el artículo, que son típicas de centros de inseminación automatizados pues se acantonan en los conductos y gomas de las máquinas y con gran capacidad de resistencia a los desinfectantes. Este suele ser el mayor problema, cuando hay un punto de la cadena de producción donde se acantona una bacteria y por el pasan las dosis seminales producidas, esto puede ser una bomba peristáltica, un tubo de goma, un dosificador, etc. los cuales hay que dejar en perfecto estado de limpieza y desinfección tras cada jornada de trabajo.
En cuanto al desinfectante a emplear en el laboratorio, hay diversos tipos, lo principal es que no deje residuos y poder aclararlo bien, pueden ser de utilidad los desinfectantes fenólicos. Desinfectantes como la clorhexidina o amonios cuaternarios son de menor utilidad pues su espectro de acción se centra más en bacterias gram +, en tanto que la mayoría de bacterias patógenas para el semen que se aíslan en dosis seminales son gram -, en su mayoría enterobacterias.
Un saludo.
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Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
28/03/2008 | La dilución del semen se puede hacer de muchas formas pero quisiera saber al comparar dilución en bolsa desechable versus dilución en frasco de vidrio, cual método reporta los mejores resultados.?
Es factible la esterilización del frasco de vidrio en horno microondas o en horno eléctrico tradicional y cual sería el protocolo. ?
Y otra pregunta: Se convierte en punto crítico la colección de la fracción seguida a la lechosa de alta concentración, es decir, aquella que se observa, levemente lechosa con gránulos pequeños de tapioca.
Y Finalmente, los lavados prepuciales a los machos con solución de oxitetraciclina por cuantos días estaría actuando en el prepucio?
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Marco Antonio Jacho López
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Taradell, Cataluna, España
Médico Veterinario Zootecnista
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
29/03/2008 | Sobre la primera pregunta te comento que es mejor que todo el material utilizado sea desechable. No tengo experiencia en esterilización bajo estos sistemas que tu comentas.
Sobre la segunda, recolectar la fase post espermática puede ser un punto critico dependiendo el sistema de dilución y el procesado de la dosis. Si únicamente se realiza dilución e inseminación con semen fresco o conservación de 3 a 7 dias no tiene porque ser un problema, pero si se desea hacer congelación Si por la presencia de material contaminante y espermatozoides viejos que hay en las fases pre y post espermática que pueden alterar la integridad del producto como tal.
Sobre la tercera, acostumbro a hacer lavados exclusivamente con suero fisiológico o agua limpia no porque puedan afectar el eyaculado ,porque los diluyentes conservadores ya tienen antibióticos y no afectan a los espermatozoides, es simplemente porque a lo largo de mi experiencia he podido comprobar que a este nivel poco es lo que funcionan. Mas bien son un gasto innecesario de dinero.

espero que mis comentarios te ayuden.
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Luis Eduardo Chaparro P.
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Duitama, Boyaca, Colombia
Ing. Zootecnista
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
31/03/2008 | Ahora la la pregunta que me asalta de la respuesta recibida de MARCO ANTONIO (De paso muchas gracias), es por que la fracción pos espermática habría de tener alto grado de contaminación? O tal vez será que los pocos residuos de tapioca tienden a disminuir la vida del semen diluido? GRACIAS NUEVAMENTE A TODOS.
Samira Duque responde también pero no aparece los aportes de ella, si es posible favor enviarlos nuevamente
LUIS EDUARDO CHAPARRO ING. ZOOTECNISTA
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Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
03/04/2008 | Un saludo a todos los compañeros, felicidades a Rafael por el artículo, muy interesante y divulgativo, claro y conciso, un buen trabajo.

Quisiera añadir una nota diferente en la discusión, ya que estoy totalmente de acuerdo en maximizar la higiene durante la colecta y en el laboratorio, para prevenir la fuente de gérmenes, y en prevenir cualquier posible desarrollo posterior a la dilución, mediante higiene, un correcto mantenimiento de la cadena de frío, y por supuesto, una buena combinación de atb, pero donde discreparía, es el peligro de caer en la hiperhigiene aplicada en el verraco o en su jaula.

Hace años en nuestros CIAs desinfectábamos la fosa de colecta a diario, cortabamos los pelos del prepucio y aplicábamos lavados antisépticos frecuentes, lo que origina una selección de gérmenes altamente resistentes de difícil control mediante atb. Ahora duchamos a los verracos solo si están sucios, limpiamos la zona prepucial con papel siempre, con agua destilada si necesario, pero dejamos crecer una flora bacteriana necesaria en los animales y en el colectivo del CIA.

También recalcar que cada entrada de animales jóvenes representa una nueva entrada de nuevas cepas, con lo que los problemas bacterianos muchas veces coinciden con el periodo necesario para su estabilización otra vez.Espero este comentario sirva para algo, un saludo.

Sergi
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Rafael Arlegui
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Ejea de los Caballeros, Zaragoza, España
Director
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
03/04/2008 | Lo primero agradecer al amigo Barrabés su comentario por lo que al artículo se refiere. No puedo estar más de acuerdo con el en lo tocante a la desinfección excesiva de las cuadras y los animales. De hecho, en el artículo se hace referencia a la limpieza de la sala de extracción tras cada jornada (con un barrido o agua a presión es suficiente) y a la limpieza semanal de la cuadra del verraco con el empleo de alguna sustancia desinfectante. La limpieza es el paso previo a la desinfección, pero no son lo mismo. No debemos obsesionarnos con esa asepsia total o corremos el riesgo de producir, efectivamente, el efecto contrario algo parecido a lo que algunos denominan el síndrome de la granja limpia.
¿Alguien conoce lugar más aséptico que un quirófano o una sala de cuidados intensivos? ¿Cómo es posible entonces que bacterias como el género Serratia sean responsables de tantas infecciones nosocomiales? Pues por eso mismo, porque con toda esa desinfección se seleccionan, al ser más resistentes que el resto, y libres de competencia proliferan hasta niveles patogénicos bacterias que de otra forma y en competencia con otras no causarían problemas. Es muy similar a la generación de resistencias en el caso de los antibióticos, es una simple cuestión de selección.
Por eso en las verraqueras y salas de extracción hay que mantener una adecuada limpieza y desinfección periódica, por supuesto, pero sin obsesionarse con ellas, al igual que con la flora cutánea natural del verraco, la cual es fácilmente controlable con unas adecuadas medidas de higiene y los antibióticos contenidos en los diluyentes.
En cuanto al laboratorio, sobre todo si existen máquinas, todo el material que entre en contacto con el semen si es de un solo uso mejor, y si no lo es aquí si que hay que desinfectar a conciencia si es con calor en la estufa a 120ºC pues mejor.
Un buen desinfectante que no deja residuos y es completamente biodegradable es la combinación de peróxido de hidrógeno con ácido peracético. Poniendo atención sobre este último pues con el tiempo puede producir corrosión de diversos materiales si se emplea en las cuadras. Aunque esto se ve compensado por su eficacia contra el biofilm que puede producirse en el interior de las gomas y conductos de las máquinas donde se acantonan este tipo de bacterias (una de las fotos de contaminación seminal del artículo corresponde a una infección por Serratia marcescens aislada en una bomba dosificadora).
Un saludo
Rafa
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Mario Costa Mendelewski
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Santiago, Region Metropolitana, Chile
Médico Veterinario
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
03/04/2008 | Uno de los principales puntos criticos en la calidad seminal de cualquier especie es tambien la presencia de infecciones en el tracto reproductivo que generan un importante aumento de ROS, (especies de oxigeno reactivas), mediado por la respuesta celular. lo que afecta de manera determinate en la motilidad espermatica, degenarion y fragmentacion de ADN espermatico como tambein defectos de naciemientos relacionados con fragmentacion de cromosomas (todo tipo, delecciones, etc).

En resumen la salud del tracto reproductivo del macho y de la hembra asi como las condiciones higienicas de laboratorio van de la mano.

Dejo abierto el debate con respecto a uso de doble guante, ya que existen verracos que solo se les puede extraer semen a mano desnuda..
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Ramiro Antonio Espinoza Guarnizo
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Santo Domingo, Pichincha, Ecuador
Médico Veterinario Zootecnista
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
10/04/2008 | Sin descuidar lo mencionado por los compañeros participantes en este foro, un punto muy importante que hay que cuidar para mí es el que tiene que ver con el personal que se dedica al cuidado de los reproductores. Muchas veces buscamos la respuesta a un problema sin encontrar solución, porque pensamos que todo está en el cerdo, pero que nuestro personal sea paciente, esté contento con su trabajo, que no tenga problemas que distraigan su atención, y sobre todo que se encuentre motivo, es un punto a nuestro favor para llevar por buen camino a un centro de inseminación.
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Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
13/06/2008 | Primeramente felicitarlos por estos articulos que son muy ilustrativos y quien los lee se beneficiara de mucho para ganar experiencia en la vida profesional.
El uso de antibioticos para la desinfección del organo sexual masculino (verraco) no me parece el mas idoneo ya que estos pueden causar daños al animal. Debemos orientarnos a un manejo orgánico con agua hervida previamente se puede hacer el lavado o limpieza. Otro factor importante es la alimentación del cerdo ya que se obtendra semen de excelente calidad y que puede resistir al ataque de agentes patogenos. La persona que se encarge de la extracción del semen del cerdo debe estar diariamente con los animales ya que los cerdos se enseñan a un solo tipo de manejo al extraer el semen yasi la persona conoce el comportamiento del animal.
La limpieza del lugar donde se extrae el semen lavarlo luego de la práctica y finalmente adicionar al piso agua bien caliente para eliminar los causantes de posibles infecciones. Ojo el manejo orgánico debe ser ya utilizado para las diferentes prácticas pecuarias.
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Francisco Yáñez González
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Huauchinango, Puebla, México
Médico Veterinario Zootecnista
Re: Principales puntos críticos en un centro de inseminación
27/05/2012 | Es bueno el artículo; pero no se puede hablar de nada de esto si no se ha logrado un entrenamiento adecuado de los sementales, ese es el punto más critico, lo demás es más simple y teórico. Podemos decir mucho desde la teoría; pero muy poco desde la práctica...
Lo digo porque a un servidor le paso y el entrenamiento me retraso y complico, no podía seguri con lo demás y algo bien importante, en el entrenamiento no debemos apegarnos tanto a la higiene como si estuvieras diluyendo, la impreganción de una alfombra y dejarla ahí en el potro es lo mejor que puedo recomendarles en base a mi experiencia, lo demás no me resultó complicado,
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